-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Vibratome باجتزاء شبكية العين الفأر لإعداد الثقافات مبصرة
Vibratome باجتزاء شبكية العين الفأر لإعداد الثقافات مبصرة
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Vibratome Sectioning Mouse Retina to Prepare Photoreceptor Cultures

Vibratome باجتزاء شبكية العين الفأر لإعداد الثقافات مبصرة

Full Text
18,485 Views
11:22 min
December 22, 2014

DOI: 10.3791/51954-v

Emmanuelle Clérin1,4,5,6, Ying Yang1,4,5,6, Valérie Forster2,4,5,6, Valérie Fontaine3,4,5,6, José-Alain Sahel4,5,6, Thierry Léveillard1,4,5,6

1Department of Genetics,UMR_S 968, Institut de la Vision, 2Department of Visual Information,UMR_S 968, Institut de la Vision, 3Exploratory Team,UMR_S 968, Institut de la Vision, 4Sorbonne Universités, Paris 06,UMR_S 968, Institut de la Vision, 5INSERM, U968,Institut de la Vision, 6CNRS, UMR_7210,Institut de la Vision

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

الشبكية العصبية على فأرة الحاسوب الذين تتراوح أعمارهم بين 8 أيام هي على رأس 4٪ كتلة الجيلاتين. بعد عزل طبقة مبصرة (200 ميكرون) من خلال vibratome، هي المصنفة مبصرات بعد التفكك الميكانيكية والأنزيمية للثقافة. طبقة مستقبلة للضوء يمكن استخدامها لالجزيئية، التحاليل البيوكيميائية أو الزرع.

الهدف العام من هذا الإجراء هو عزل طبقة المستقبلات الضوئية للفأر. للزراعة ، تتمثل الخطوة الأولى في الحصول على شبكية مسطحة كاملة وإغلاقها على كتلة الجيلاتين. بعد ذلك ، يتم قطع طبقات الشبكية بنجاح من أجل عزل طبقة المستقبلات الضوئية.

الخطوة الأخيرة هي زرع خلايا مستقبلات ضوئية منقاة في الثقافة. في النهاية ، يتم تأكيد نقاء طبقة المستقبلات الضوئية عن طريق الفحص المجهري والتألق المناعي ، متبوعا باختبار عامل الجدوى المخروطي المشتق من القضيب. الميزة الرئيسية لهذه التقنية على الطرق الحالية مثل التشريح الدقيق بالليزر ، هي عزل طبقة المستقبلات الضوئية بثقة.

تمتد الآثار المترتبة على هذه التكنولوجيا إلى علاج تنكس الشبكية الوراثي. نظرا لأنه من الملائم جدا دراسة بيولوجيا المستقبلات الضوئية ، فقد قمنا في الأصل بتطوير هذه الطريقة لدراسة التفاعل الخلوي بين المستقبلات الضوئية القضيبية والباردة. أدى زرع مستقبلات ضوئية في عين المبكرة إلى تحديد جميع عوامل القابلية للحياة المشتقة.

يعد

العرض المرئي لهذه الأساليب أمرا بالغ الأهمية حيث يصعب أداء فرصة شبكية العين الجبلية المسطحة لأنها صعبة. قبل عزل شبكية العين ، قم بإعداد الاهتزاز. ابدأ بأطباق من محلول جيلاتين 20٪ يتم إخراجها من التخزين عند أربع درجات مئوية.

اقطع الجيلاتين بمشرط ، ثم اقلب شريحة الجيلاتين وألصقها على قرص الدعم الأسود للهزاز باستخدام قطرة من الغراء الفائق. بعد ذلك ، قم بتقسيم شفرة الحلاقة إلى نصفين وأدخل نصفا في الهزاز. ثم أدخل قرص الدعم الأسود على جهاز الهزاز وأدر المقبض الأسود إلى اليمين.

الآن ، قم بتأمين وعاء التثبيت على رأس الاهتزاز وقم بتغطية كتلة الجيلاتين بوسط مستقل CO2. قم بتشغيل الاهتزاز لاختبار الإعداد. قطع ثلاث شرائح 100 ميكرون حتى تصبح الشرائح ناعمة ويتم إنتاج شرائح مسطحة.

بعد حصاد العينين من الفأر والمستحضرات الأخرى ، قم بعزل شبكية العين. أولا ، استخدم إبرة قياس 18 لعمل ثقب على مستوى طرف العين. ثم لإزالة الجسم الهدبي ، أدخل مقصا مستقيما من خلال الفتحة وفي كرة العين ، وقم بقص الصلبة بعناية أسفل القزحية ، ثم على طول محيط الكرة

الأرضية.

بعد ذلك ، حافظ على الجزء الخلفي من العين مع شبكية العين متجاورة للصلبة وقم بإزالة القرنية والعدسة. باستخدام قبضتين دقيقتين ، قم بإزالة الجسم الزجاجي المتصل بشبكية العين دون الإضرار بالشبكية حتى يمكن وضع شبكية العين بشكل مسطح. قم بعمل أربع قطع شعاعية فيه.

الآن اقلب الكرة العينية وقشرها مثل البرتقال. بعد ذلك ، بعناية فائقة باستخدام مقص مستقيم ناعم. افصل الشبكية عن الصلبة والظهارة المصطبغة بالشبكية.

يجب أن يظل متصلا على مستوى العصب البصري باستخدام قبضة دقيقة ، وافصل الجسم الزجاجي المتبقي بدءا من المحيط ويتحرك نحو مركز شبكية العين. مع إزالة كل الجسم الزجاجي تماما ، سوف تتسطح شبكية العين. الآن انقل شبكية العين إلى طبق بتري بقطر 35 ملم.

تعتبر عملية إغلاق شبكية العين المسطحة في كتلة الجيلاتين حساسة وهي في الأساس الجانب الأكثر تحديا لتقسيم الأنسجة. أولا ، قم بإزالة 20 إلى 30 مل من الوسط من خزان الاهتزاز. ثانيا ، انقل شبكية العين إلى شريحة زجاجية باستخدام ماصة بلاستيكية عريضة التجويف وقم بتطبيق قطرة من CO2 وسط مستقل على الشريحة.

ثالثا ، انقل شبكية العين إلى شريحة جيلاتين مع توجيه مستقبلات ضوئية لأسفل. رابعا ، اربط شبكية العين بكتلة الجيلاتين. قم بحقن الجيلاتين الدافئ بنسبة 4٪ برفق على جانب واحد من الكتلة بين شبكية العين وكتلة الجيلاتين وطرد الجيلاتين على الجانب الآخر.

أخيرا ، قم بشفط الجيلاتين بماصة زجاجية وانتظر من سبع إلى 10 دقائق حتى يتم إغلاق شبكية العين في الكتلة. أضف الآن CO2 وسيطا مستقلا مرة أخرى إلى الخزان ، واغمر الكتلة والشفرة للتقسيم بدءا من أعلى كتلة الجيلاتين. قطع 100 ميكرون أقسام تسلسلية حتى تصل الشفرة إلى شبكية العين.

ثم باستخدام سرعة بطيئة جدا ، مثل واحد أو اثنين من قطع 100 إلى 120 ميكرون من الطبقة الداخلية لشبكية العين. اعتمادا على التطبيق ، يمكن التخلص من هذه الطبقة أو تخزينها في النيتروجين السائل ، مما يحافظ على السرعة بطيئة عند الواجهة بين الطبقة الداخلية والخارجية. خذ أقساما 15 ميكرون.

افحص هذه الأقسام تحت المجهر بحثا عن وجود الأوعية الدموية. عندما لا يكون هناك أي شيء ، يتم الوصول إلى شبكية العين الخارجية من خلال الطبقة الخارجية. قطع ببطء 200 أجزاء ميكرون.

انقل هذه الشرائح إلى طبق 35 ملم مع ثلاثة ملليلتر من البارد ، CO2 وسط مستقل محفوظ على الجليد. استمر في جمع جميع أقسام طبقة المستقبلات الضوئية من جميع شبكية العين ليتم تقسيمها إلى هذا الطبق. ابدأ بنقل المستقبلات الضوئية المقطعة إلى حاضنة 37 درجة مئوية لمدة 10 دقائق.

ثم باستخدام الملقط ، افصل برفق كل طبقة مستقبلات ضوئية عن الجيلاتين وانقلها إلى طبق جديد مملوء بثلاثة ملليلتر من محلول الرنين في درجة حرارة الغرفة. بمجرد عزل جميع المستقبلات الضوئية من الجيلاتين ، امزج وحدتين من غراء مع 25 ميكرولتر من محلول المنشط في أنبوب بولي بروبيلين معقم سعة خمسة ملليلتر واحتضانه لمدة 30 دقيقة. لتنشيط غراء أثناء هذه الحضانة ، قم بتقطيع شرائح طبقة المستقبلات الضوئية إلى قطعتين مربعتين وليس أصغر بكثير.

انقل هذه القطع إلى أنبوب خمسة ملليلتر مع 1.5 مل من محلول الرنين. ثم استنشق الرنين واستبدلها للغسيل الثاني. انتظر حتى تستقر جميع الشرائح عن طريق الجاذبية والترسيب ، ثم قم بإزالة كل محلول الرنين المتبقي من الأنبوب.

بعد ذلك ، أضف 475 ميكرولترا من محلول الجرس إلى الأنبوب الذي يحتوي على غراء المنشط واخلطه. انقل هذا الخليط إلى الأنبوب الذي يحتوي على الشرائح واحتضنه لمدة 20 دقيقة. بعد 20 دقيقة ، أوقف هضم غراء عن طريق إضافة مليلتر واحد من 10٪ FCS في DMEM.

ثم أضف 25 وحدة من D Ns.One لهضم الحمض النووي من الخلايا المستقبلة للضوء التي ماتت بعناية ، وقم بتجانس المعلق بسحب العينة لحنك الخلايا المستقبلة للضوء. قم بتدوير الأنبوب عند 115 جي ثانية لمدة ست دقائق في درجة حرارة الغرفة ، وتخلص من المادة الطافية وأعد تعليق الخلايا في DMEM المكملة باستخدام ماصة سعة مليلتر واحد. كرر هذا ، قم بالدوران وتعليق إعادة التحرير. مرة.

الآن من العين المحصودة ، يجب أن تكون خلية واحدة إلى 1.5 مليون خلية جاهزة للبذر. قم بزرعها في 100،000 خلية لكل سنتيمتر مربع وزرعها لمدة خمسة أيام قبل التطبيقات النهائية باستخدام الطرق الموصوفة ، تم صنع مزارع الخلايا المستقبلة للضوء من الفئران البرية في اليوم الثامن بعد الولادة. بدون FCS ، تم تثبيت الخلايا وتلطيخها من أجل مقاومة الصف أو علامة سابقة مضادة للترهل.

كان عدد أقل من الخلايا إيجابيا للصف المضاد لأن SAG يسبق تعبير ROE. تم تحضير المستقبلات الضوئية أيضا من الفئران البالغة من العمر 35 يوما لفحص التعبير عن mRNA ، وترهل RO والمخروط الذي ينقل GA اثنين. تعبر هذه الجينات بشكل بارز في المستقبلات الضوئية مقارنة بالدماغ كله.

يتم التعبير عن G NAT اثنين على وجه التحديد بواسطة المخاريط. تم فحص التعبير البروتيني ل RO و g. NAT اثنين في المستقبلات الضوئية من خلال مقارنة خلايا طبقة المستقبلات الضوئية مع خلايا طبقة الشبكية الداخلية.

تم ذلك بالنوع البري ومع الفئران المتحولة RD. لم تظهر الفئران الطافرة أي تعبير عن أي من البروتينين في اليوم 35. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية الحصول على طبقة مستقبلات ضوئية منقاة مناسبة.

يمكن إجراء هذه التقنية في حوالي خمس إلى ست ساعات لمدة أربع إلى ثماني شبكية إذا تم إجراؤها بشكل صحيح بعد هذا الإجراء. أيضا ، يمكن تنفيذ طرق مثل الدم الغربي من أجل الإجابة على سؤال إضافي مثل تعبير البروتين أثناء تنكس المستقبلات الضوئية بعد تطوره. مهدت هذه التقنية الطريق للباحث في مجال بيولوجيا الشبكية لدراسة النسخة والبروتين والتمثيل الغذائي للنماذج الحيوانية ذات الصلة.

Explore More Videos

الطب العدد 94 زراعة الخلايا المستقبلة للضوء الأولية ورثت تنكس الشبكية ورود المستمدة من المخروط الجدوى عامل S-مستضد شقة محمولة على شبكية العين الماوس زرع.

Related Videos

عضوي النمط ثقافة كاملة ، سمك الشبكية خنزيري الكبار

08:17

عضوي النمط ثقافة كاملة ، سمك الشبكية خنزيري الكبار

Related Videos

15.5K Views

قياس نشاط رابطة الدول المستقلة عناصر التنظيم في الشبكية بواسطة الماوس Electroporation يزدرع

07:38

قياس نشاط رابطة الدول المستقلة عناصر التنظيم في الشبكية بواسطة الماوس Electroporation يزدرع

Related Videos

14.9K Views

إنشاء مشبك رقعة كامل الخلية للتسجيل الفيزيولوجي الكهربي من شبكية العين المسطحة

04:05

إنشاء مشبك رقعة كامل الخلية للتسجيل الفيزيولوجي الكهربي من شبكية العين المسطحة

Related Videos

2.4K Views

بروتوكول الأمثل لإعداد Wholemount الشبكية للتصوير والمناعية

08:32

بروتوكول الأمثل لإعداد Wholemount الشبكية للتصوير والمناعية

Related Videos

24.3K Views

تسجيل الخفيفة أثار-الردود بعد المشبكي في الخلايا العصبية في الظلام تكييفها، الاستعدادات ماوس الشبكية شريحة عن طريق تقنيات المشبك التصحيح

10:30

تسجيل الخفيفة أثار-الردود بعد المشبكي في الخلايا العصبية في الظلام تكييفها، الاستعدادات ماوس الشبكية شريحة عن طريق تقنيات المشبك التصحيح

Related Videos

8.9K Views

التصوير كاليفورنيا 2+ حيوية في محطات المخروط مبصرة أكسون من شبكية العين الفأر

09:05

التصوير كاليفورنيا 2+ حيوية في محطات المخروط مبصرة أكسون من شبكية العين الفأر

Related Videos

11.3K Views

إعداد شرائح أفقية من الكبار شبكية العين الفأر للدراسات الكهربية

07:02

إعداد شرائح أفقية من الكبار شبكية العين الفأر للدراسات الكهربية

Related Videos

10.6K Views

انقسام الشبكية كتحضير مسطح محسن لدراسة الخلايا العصبية للطبقة النووية الداخلية في شبكية الفقاريات

07:53

انقسام الشبكية كتحضير مسطح محسن لدراسة الخلايا العصبية للطبقة النووية الداخلية في شبكية الفقاريات

Related Videos

5.6K Views

طريقة مبسطة لعزل وزراعة الخلايا الظهارية الصبغية للشبكية من الفئران البالغة

05:04

طريقة مبسطة لعزل وزراعة الخلايا الظهارية الصبغية للشبكية من الفئران البالغة

Related Videos

2.5K Views

التشريح بالتبريد والتلوين المناعي لشبكية العين في الفأر

06:30

التشريح بالتبريد والتلوين المناعي لشبكية العين في الفأر

Related Videos

2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code