-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
المحافظة على الكبد وظيفية الإنسان والاسترداد من قبل وسائل Subnormothermic آلة الإرواء
المحافظة على الكبد وظيفية الإنسان والاسترداد من قبل وسائل Subnormothermic آلة الإرواء
JoVE Journal
Medicine
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Functional Human Liver Preservation and Recovery by Means of Subnormothermic Machine Perfusion

المحافظة على الكبد وظيفية الإنسان والاسترداد من قبل وسائل Subnormothermic آلة الإرواء

Full Text
17,479 Views
08:54 min
April 27, 2015

DOI: 10.3791/52777-v

Bote G. Bruinsma*1, James H. Avruch*2, Pepijn D. Weeder1, Gautham V. Sridharan1, Basak E. Uygun1, Negin G. Karimian1, Robert J. Porte3, James F. Markmann2, Heidi Yeh2, Korkut Uygun1

1Center for Engineering in Medicine, Dept. of Surgery,Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 2Transplant Center, Dept. of Surgery,Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 3Section of Hepatobiliary Surgery and Liver Transplantation, Department of Surgery,University Medical Center Groningen, University of Groningen

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article describes a method for ex vivo machine perfusion of human liver grafts at a subnormothermic temperature of 21 °C. The technique allows for the preservation, recovery, and assessment of liver function.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Organ preservation
  • Machine perfusion techniques

Background

  • Machine perfusion is a technique used to preserve organs for transplantation.
  • Subnormothermic temperatures reduce metabolic demands during preservation.
  • Functional recovery of the liver can be assessed through this method.
  • Existing methods include cold and normothermic perfusion, which have limitations.

Purpose of Study

  • To demonstrate a method for preserving human liver grafts effectively.
  • To assess the viability and function of the liver during machine perfusion.
  • To provide a detailed procedural guide for researchers.

Methods Used

  • Preparation of the liver for connection to the perfusion device.
  • Priming the machine perfusion system and connecting the liver.
  • Monitoring liver function during perfusion at 21 °C.
  • Collecting samples for analysis of metabolic recovery.

Main Results

  • The liver becomes functionally active and produces bile during perfusion.
  • Samples collected can be analyzed to study metabolic recovery.
  • The technique allows for assessment of liver viability without high metabolic demands.
  • Demonstration of surgical techniques is beneficial for researchers.

Conclusions

  • Subnormothermic machine perfusion is a viable method for liver preservation.
  • This technique enhances the assessment of liver function.
  • It offers advantages over traditional preservation methods.

Frequently Asked Questions

What is subnormothermic machine perfusion?
It is a technique for preserving organs at temperatures lower than normal body temperature, allowing for functional recovery.
How does this method compare to traditional preservation techniques?
It allows for functional assessment of the liver without the high metabolic demands of normothermic perfusion.
What are the key steps in the perfusion process?
Key steps include liver preparation, machine priming, connection, and monitoring during perfusion.
What samples are collected during the procedure?
Samples of liver tissue and bile are collected for analysis of metabolic recovery.
Is prior surgical training necessary for this procedure?
Experience or demonstration is recommended for successful completion of the surgical aspects.
What temperature is maintained during the perfusion?
The perfusion is maintained at a subnormothermic temperature of 21 °C.

نحن تصف طريقة فيفو السابقين نضح الجهاز الطعوم الكبد الإنسان في درجة حرارة subnormothermic (21 ° C).

الهدف العام من هذا الإجراء هو إجراء آلة موضوعية دون الطبيعة ، نضح الكبد البشري للحفاظ على العضو وتعافيه وتقييمه. في بيئة البحث قبل السريرية ، يتم تحقيق ذلك عن طريق إعداد الكبد أولا للاتصال بالجهاز. في الخطوة الثانية ، يتم تحضير نظام التروية الآلي ، ويتم توصيل الكبد ، ويبدأ التروية في الخطوة النهائية.

سيصبح الكبد المتدفق بالآلة نشطا وظيفيا في حالة حرارية دون الطبيعة ، وينتج الصفراء. في النهاية ، يمكن تحليل العينات التي تم جمعها من الكبد أثناء الوفرة لدراسة الانتعاش الأيضي ووظيفة العضو. الميزة الرئيسية لهذه التقنية على طرق الحفظ الحالية مثل الوفرة الباردة والوفرة الحرارية الطبيعية ، هي أن وفرة الآلة غير الطبيعية تسمح بالتعافي الوظيفي وتقييم صلاحية الكبد ، مع عدم الحاجة إلى تلبية متطلبات التمثيل الغذائي العالية لتروية درجة حرارة الجسم.

تتطلب العديد من جوانب هذه التقنية خبرة أو عرضا توضيحيا لإكمالها بنجاح. على سبيل المثال ، يمكن أن يكون العرض التوضيحي لكيفية إجراء تحضير الطاولة الخلفية للكبد ، والذي يتضمن تشريح الوريد الشرياني وقناة الصمام ، مفيدا للباحثين الذين ليس لديهم تدريب جراحي مسبق عند استلام الكبد ، ضع وعاءا مملوءا بالثلج على سطح ملفوف معقم وقم بإزالة الكبد من صندوق النقل ، تركها مغمورة في الغالب في كيس محلول الحفظ البارد. بعد ذلك ، استخدم مقص بلسم Metzen للكشف عن الفروع المختلفة على طول إمداد الشرايين بالكبد من الشريان الأورطي إلى الشريان الكبدي المناسب.

ثم قم بتشريح باقي الشريان بعناية لمنع قطع أي أوعية تغذي الكبد دون قطع أو ربط الفروع التي ليس لها نهاية مرئية. عندما يتم عزل الشريان ، استخدم خيوط حريرية من الحجم صفر إلى أربع خيوط حريرية لربط جميع الفروع الشريانية التي لا تغذي الكبد. ربط وقطع الشرايين الطحالية والمعدة بالقرب من أصلها على جذع الاضطرابات الهضمية.

قطع رقعة الأبهر حول جذع الاضطرابات الهضمية. ثم استخدم قنية الشرايين الوفيرة لقنية جذع الاضطرابات الهضمية. الآن قم بتشريح الوريد البابي خاليا من الوريد ، وقم بربط أي فروع أو خياطة ثقوب في الوريد وقم بتعليته باستخدام قنية نضح الوريد البابي.

قم بإزالة أجزاء من الحجاب الحاجز من الوريد الأجوف فوق الكبدي دون قطع الوريد نفسه. ثم قم بقطع عينتين إلى ثلاثة ملم من الأنسجة المحيطية الكاملة من نهاية القناة الصفراوية المشتركة. يجب التعامل مع العينات بدقة.

قم

بتجميد عينة واحدة والنيتروجين السائل للتخزين عند سالب 80 درجة مئوية ، وقم بتخزين الأخرى في فورمين مخزن مؤقت بنسبة 10٪. ثم قم بتقطيع القناة الصفراوية المشتركة بقنية وعاء وقم بتوصيل أنبوب تصريف مصنوع من أنابيب ذات قطر صغير. بعد ذلك ، قم بربط القناة الكيسية بربطة عنق حريرية صفرية.

قم بتوصيل مجموعة الأنابيب المتدفقة بأكياس مثلجة باردة من محلول الرنين المرضع وقم بتجهيز الأنبوب لإزالة الهواء. اضبط منظم التدفق على أنبوب التدفق على قطرة بطيئة وقم بإغلاق الوريد البابي عند النقير لإزالة أي هواء في الوعاء. الآن املأ القنية في الوريد بمحلول دافق لإزالة الهواء من الوريد البابي ، مع الحرص على عدم رفع الكيس أكثر من 20 سم فوق ارتفاع الكبد لتجنب الضغط المفرط على الوريد.

ثم اغسل الكبد بما مجموعه لترين من محلول الرنين اللعاب على البارد ICEC. أثناء التدفق ، قم بإغلاق الوريد البابي لفترة وجيزة عند أدنى نقطة للتحقق من وجود تسريبات ، ثم كرر التدفق للشريان الكبدي مع لتر واحد من المحلول كما هو موضح للتو أثناء تنظيف الكبد ، قم بتجهيز نظام الوفرة بإضافة لترين من درجة حرارة الغرفة ثمانية غزيرة إلى وعاء العضو وابدأ تشغيل الجهاز لتجهيز الأنبوب. اضبط درجة الحرارة على 21 درجة مئوية.

ثم اضبط ضغطا قدره ثلاثة ملليمترات ، والزئبق على الوريد البابي و 30 ملم زئبق على الشريان الكبدي. افتح خزان غاز الكربوجين واضبطه على تدفق ثلاثة لترات في الدقيقة. بعد ذلك ، اسحب عينة من غازات الدم من منافذ عينة تدفق الوريد البابي والشريان الكبدي ، وقم بتشغيل العينات في آلة تحليل غازات الدم وفقا لتعليمات الشركة المصنعة لتأكيد الأكسجين الكافي ودرجة الحموضة.

استخدم بيكربونات الصوديوم أو كلوريد الهيدروجين لتصحيح الرقم الهيدروجيني حسب الضرورة. ثم قبل توصيل الكبد ، اجمع عينة سعة مليلتر واحد من البيرفو ثمانية كقياس مضروبا في الصفر وقم بتخزينها عند سالب 80 درجة مئوية. استخدم شفرة فولاذية ذات حافة واحدة لقطع خزعتين إسفيتين بحوالي 250 ملليغرام من الكبد في هذا الوقت أيضا.

قم

بتجميد عينة واحدة في النيتروجين السائل لتخزين سالب 80 درجة مئوية وتثبيت الأخرى في الفورمالين المخزن بنسبة 10٪. قبل البدء في الوفرة ، قم بوزن الكبد ، ثم انقل العضو إلى حجرة العضو بالجهاز وقم بإزالة الهواء من القنيات. أظهر للتو.

عندما يتم عمل القنيات ، قم بتوصيل الوريد البابي وتدفقات الشريان الكبدي بالقنيات المناسبة. ابدأ الوفرة تأكد من غمر الكبد بواسطة ثمانية ، تغطي أي أسطح جافة ، بما في ذلك أوعية التدفق بشاش معقم مبلل. لمنع الجفاف ، اترك الأنابيب الصفراوية تستنزف في حاوية التجميع.

الحرص على أن تكون فتحة استنزاف الصفراء على مستوى الكبد أو أقل للسماح للصفراء بالجري بحرية. بمجرد تسخين الكبد إلى 21 درجة مئوية ، استهدف معدلات التدفق عند 275 إلى 325 و 50 إلى 100 مل في الدقيقة لكل كيلوغرام للوريد البابي والشريان الكبدي على التوالي. أثناء التروية ، خذ عينات من أنسجة الكبد المنفخة والصفراء حسب الاقتضاء.

استمر في التروية لمدة ثلاث ساعات ، ومراقبة درجة الحموضة للضغط والأكسجين وضبط الرقم الهيدروجيني باستخدام بيكربونات الصوديوم حسب الضرورة. في نهاية التروية ، اجمع العينات النهائية ، وافصل الكبد وقم بإزالة قنية القناة الصفراوية. أخيرا ، اجمع عينتين من أنسجة القناة الصفراوية بعد الوفرة كما هو موضح للتو وتخلص من الكبد البشري.

اتباع الإرشادات المناسبة للتخلص من المخاطر البيولوجية. يبدأ التدفق منخفضا نتيجة لمقاومة أعلى في الكبد البارد باستخدام ضغط قدره ثلاثة ملليمترات ، والزئبق على الوريد البابي و 30 ملم زئبق على الشريان الكبدي. يمكن تحقيق التدفقات المستهدفة بشكل عام بمجرد ارتفاع درجة حرارة الكبد إلى 21 درجة مئوية بعد 60 دقيقة من التروية ، والقياس المتكرر للنفخ الثماني عن طريق تحليل غازات الدم ضروري للأغراض التجريبية وكذلك للحفاظ على ظروف التروية المناسبة.

على سبيل المثال ، يجب أن يكون الضغط الجزئي للأكسجين المذاب أكبر من 700 ملم زئبق عند تدفق كل من الوريد البابي والشريان الكبدي. في حين أن ضغط الأكسجين الخارج المقاس في الوريد الأجوف يجب أن ينخفض بشكل عام مع التروية الأطول التي تعكس زيادة امتصاص الأكسجين. يمكن أيضا قياس الترانساميناسات الكبدية في PERFU ثمانية ، على سبيل المثال.

لوحظت زيادة في الألانين أو الترانساميناز أو LT بشكل عام في أول 30 دقيقة من التروية مع زيادة طفيفة أخرى خلال بقية التروية. يكشف التقييم الإضافي لإنتاج TP في الكبد المنفوع آليا عن زيادة بمقدار 2.8 ضعفا في محتوى A TP في الكبد مما يعكس حالة الطاقة المستعادة. علاوة على ذلك ، يكشف التحليل النسيجي h و e عن عدم حدوث إصابات إضافية أثناء العملية.

يسمح اتباع هذا الإجراء بتحليل شامل للكبد المعزول مما يوفر رؤى فريدة في فسيولوجيا الكبد وعلم الأمراض. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية الحفاظ على الكبد البشري أثناء نضح الجهاز تحت الأرض لتسهيل تقييم وظيفته خارج الجسم.

Explore More Videos

الطب العدد 98 الكبد وزرع والحفاظ على الجهاز subnormothermic آلة التروية والسلامة

Related Videos

تقنية Subnormothermic فيفو السابقين الكبد الإرواء للتخزين، تقييم، وإصلاح الطعوم الكبد الهامشية

09:29

تقنية Subnormothermic فيفو السابقين الكبد الإرواء للتخزين، تقييم، وإصلاح الطعوم الكبد الهامشية

Related Videos

15.7K Views

خارج الموقع سوي الحرارة آلة الإرواء من الأكباد المانحة

12:13

خارج الموقع سوي الحرارة آلة الإرواء من الأكباد المانحة

Related Videos

12.3K Views

نموذج حيوانات صغيرة من نضح الكبد نورموثيرميك السابقين فيفو

08:32

نموذج حيوانات صغيرة من نضح الكبد نورموثيرميك السابقين فيفو

Related Videos

14.5K Views

نضح الكبد المعزول Normothermic الخنازير

07:32

نضح الكبد المعزول Normothermic الخنازير

Related Videos

1.5K Views

نورموذرميك خارج الجسم الحي آلة الكبد التروية في الماوس

13:14

نورموذرميك خارج الجسم الحي آلة الكبد التروية في الماوس

Related Videos

4.4K Views

الحفاظ على التبرع بالخنازير بعد الموت أثناء الدورة الدموية (DCD) الكبد عن طريق التروية وزراعة الكبد بتقويم العظام

05:25

الحفاظ على التبرع بالخنازير بعد الموت أثناء الدورة الدموية (DCD) الكبد عن طريق التروية وزراعة الكبد بتقويم العظام

Related Videos

1.1K Views

نظام نضح طبيعي مفتوح المصدر مصمم لعلماء الأبحاث

11:23

نظام نضح طبيعي مفتوح المصدر مصمم لعلماء الأبحاث

Related Videos

1.3K Views

التنفس التي تسيطر عليها تحفيز الكهربائية (BreEStim) لإدارة ألم الأعصاب والتشنج

11:34

التنفس التي تسيطر عليها تحفيز الكهربائية (BreEStim) لإدارة ألم الأعصاب والتشنج

Related Videos

23.7K Views

إجراءات الصافن عروق الإنسان فيفو السابقين الإرواء والتعزيز الخارجي

09:50

إجراءات الصافن عروق الإنسان فيفو السابقين الإرواء والتعزيز الخارجي

Related Videos

11.8K Views

معزولة كبدي الإرواء كعلاج للالانبثاث الكبد من العنبية الميلانوما

09:52

معزولة كبدي الإرواء كعلاج للالانبثاث الكبد من العنبية الميلانوما

Related Videos

14K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code