ديسمبر 24, 2015
تظهر الخصائص المناعية للخلايا الجذعية الوسيطة (MSC) ذات الصلة على نحو متزايد عن التطبيق السريري. باستخدام نظام المشاركة في ثقافة اللجان الدائمة والكريات البيض في الدم الطرفية ملطخة مسبقا مع صبغة الفلورسنت carboxyfluorescein succinimidyl استر (CFSE)، وصفنا التقييم في المختبر من MSC المناعة على انتشار المستجيب الكريات البيض ومجموعات سكانية فرعية محددة.
الهدف العام من هذه التجربة هو تقييم الخصائص المعدلة للمناعة للخلايا الجذعية الميزنكيمية البشرية أو msc. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في توضيح الآليات المشاركة في التعديل المناعي للخلايا الجذعية الميزنكيمية البشرية، وهي عملية قد تكون ذات أهمية علاجية. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي إمكانية تقييم كل من حدوث تكاثر الكريات البيضاء المؤثرة وعدد انقسامات الخلايا، مما يثبت أن الإجراء سيكون دقيقاً.
لعزل خلايا pbmc، يقوم فني من مختبري ببدء العملية بتخفيف 25 milliliters من عينة دم كامل مضاف إليها الهيبارين باستخدام 25 milliliters من PBS في أنبوب مخروطي سعة 50 milliliter. بعد ذلك، يتم إضافة 15 milliliters من phi, call pack density gradient إلى أنبوب جديد سعة 50 milliliter. ثم مع إمالة الأنبوب بزاوية، يتم وضع معلق الخلايا المخفف ببطء فوق تدرج الكثافة.
من خلال مراعاة ذلك، لن يحدث اختلاط بين الطبقات. وتعد عملية ترسيب الدم دون تعكير تدرج الكثافة إحدى أكثر الخطوات أهمية في هذه التجربة، وذلك لضمان الحصول على خلايا pbmc معزولة بدرجة نقاء عالية وبأدنى مستوى من التلوث بكريات الدم الحمراء.
الآن، افصل الخلايا عن طريق الطرد المركزي. يجب أن تظهر ثلاث طبقات متمايزة: طبقة البلازما العلوية، وطبقة تدرج الكثافة في قاع الأنبوب، وطبقة رقيقة من خلايا PBMC في المنتصف.
باستخدام ماصة PE، قم بإزالة الطبقة العلوية مع الحرص على عدم سحب طبقة الطور البيني. بعد ذلك، استخدم ماصة سعة 10 milliliter لنقل pbmc بعناية إلى أنبوب مخروطي سعة 50 milliliter. اخلط الخلايا مع 20 milliliters من PBS ثم قم بطردها مركزياً لإزالة أي آثار من تدرج الكثافة.
بعد ذلك، اغسل الراسب في 20 ملليلتر أخرى من PBS لإزالة الصفائح الدموية. أعد تعليق الراسب الثاني في وسط كريات الدم البيضاء الكامل بتركيز 1 × 10⁷ خلية لكل ملليلتر. لإعداد المزرعة المشتركة من الخلايا الجذعية الميزنشيمية وكريات الدم البيضاء، قم بتدفئة وسط الخلايا الجذعية الميزنشيمية الكامل مسبقاً إلى 37 درجة مئوية لمدة لا تزيد عن 30 دقيقة.
بعد ذلك، قم بستزراع 5 × 10⁴ من الخلايا الجذعية الميزنشيمية (MSC) لكل 1 مل من وسط MSC الكامل في كل بئر من أطباق ذات 24 بئرًا، واتركها لتلتصق طوال الليل عند 37 درجة مئوية، حتى تصل الخلايا إلى درجة تلاحم بنسبة 80%. وفي الصباح التالي، قم بشفط الوسط وأضف العدد المناسب من الخلايا أحادية النواة في الدم المحيطي (PBMCs) الموصومة بـ CFSE إلى الخلايا الجذعية الميزنشيمية (MSC) في 1 مل من وسط الكريات البيضاء الكامل. وبنسبة 1 إلى 10 من MSC إلى PBMC، قم بتنشيط الخلايا باستخدام 10 ميكروغرام من PHA لكل مل من وسط الكريات البيضاء الكامل.
بعد ذلك، وفي اليومين الثالث والخامس من الزراعة المشتركة، يتم نقل العدد المناسب من الزراعة المشتركة إلى أنابيب فاكس ذات قاع مستدير، وتقييم تكاثر الكريات البيضاء المسمى بـ CFSE عن طريق تحليل قياس التدفق الخلوي لإجراء مقايسة تثبيط الخلايا المؤثرة. ابدأ بإعداد زراعة مشتركة من M-S-C-P-B-M-C كما تم توضيحه للتو، باستخدام 2.5 × 10⁶ من p BMCs مزروعة بشكل مشترك مع 250,000 من MSCs، وذلك لضمان وجود عدد كافٍ من p BMCs في الزراعة المشتركة مع MSC لغرض اختيار المجموعة الفرعية.
بعد مرور 48 إلى 72 ساعة عند 37 درجة مئوية، اختر كريات الدم البيضاء ذات القدرة التعديلية المناعية والمحفزة بواسطة MSC المطلوبة باستخدام الخرزات المغناطيسية المناسبة. بعد ذلك، أضف خلايا T الموجبة لـ CD4 الخيفية والموسومة بـ CFSE في 1 مل من وسط كريات الدم البيضاء الكامل لكل بئر بنسب تجريبية مختلفة. بعد ذلك، أضف الخرزات الدقيقة المقترنة بـ anti CD 3 28 بنسبة 1:1 (خرزة إلى خلية) لتحفيز خلايا T الموجبة لـ CD4.
في اليوم الثالث من الزراعة المشتركة، يتم تقييم تكاثر الخلايا التائية الموجبة لـ CD4 والموسومة بـ CFSE عن طريق قياس التدفق الخلوي. تُعد الخلايا الجذعية الوسيطة (MSCs) خلايا ملتصقة ذات مورفولوجيا مغزلية ليفية، بينما تكون الخلايا أحادية النواة في الدم المحيطي (PBMC) وكريات الدم البيضاء خلايا صغيرة مستديرة غير ملتصقة، مما يسمح بالتمييز الواضح بين هاتين المجموعتين من الخلايا. في الزراعة المشتركة، وعندما لا يكون هناك تكاثر، تظهر الخلايا الموسومة بـ CFSE كقمة واحدة ذات إيجابية عالية ووميض حاد عند تنشيط الخلايا.
يظهر التكاثر على هيئة عدة قمم أصغر مع فقدان وإزاحة جهة اليسار في شدة الفلورة عند حدوث تثبيط للتكاثر. فعلى سبيل المثال، في المزارع المشتركة للخلايا الجذعية الميزنكيمية (MSC)، يتناقص عدد القمم الصغيرة المتعددة مع زيادة مصاحبة في شدة الفلورة، وهو ما يتضح من إزاحة القمم إلى اليمين وزيادة حدة القمة الموجودة في أقصى اليمين، والتي تمثل الخلايا غير المنقسمة في مقايسة تثبيط الخلايا المؤثرة. ويمكن تقييم التأثير التثبيطي للخلايا الجذعية الميزنكيمية (MSC) على تكاثر الخلايا التائية الموجبة لـ CD4 بشكل أكبر بطريقة تعتمد على الجرعة.
بعد مشاهدة هذا الفيديو، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية تقييم التعديل المناعي للخلايا الجذعية الميزنكيمية البشرية. لا تنسَ أن العمل مع الخلايا البشرية قد يكون خطيراً وأنه يجب اتخاذ الاحتياطات دائماً.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تستقصي هذه الدراسة الخصائص المعدلة للمناعة للخلايا الجذعية الميزنكيمية (MSCs) البشرية باستخدام نظام زراعة مشتركة مع كرات الدم البيضاء في الدم المحيطي. ويركز التقييم على تكاثر كرات الدم البيضاء المؤثرة ومجموعات فرعية محددة، مما يسلط الضوء على الأهمية العلاجية المحتملة للخلايا الجذعية الميزنكيمية (MSCs).
يوفر تقييم الوظيفة التعديلية المناعية للخلايا الجذعية الميزنكيمية (MSC) عبر مقايسات تكاثر الكريات البيضاء القائمة على CFSE طريقة كمية وقابلة للتكرار لتقييم الإمكانات العلاجية في الأمراض المناعية. ويدعم هذا النهج التحقق من الهدف من خلال تمكين تقليل المخاطر الميكانيكية للكبح المناعي بوساطة MSC قبل الاستثمار في الدراسات قبل السريرية. كما أن قابلية هذا المقايسة للتكيف مع مجموعات فرعية محددة من الكريات البيضاء تعزز الثقة التنبؤية في اختيار المرشحين الرائدين لمسارات التعديل المناعي.
يُدمج مقايسة تكاثر الكريات البيضاء القائمة على CFSE ضمن سير عمل الاكتشاف المبكر كأداة فحص وظيفية لتعديل المناعة، مما يربط بين مراحل التحقق من الهدف وتحسين المركبات الرائدة للعلاجات القائمة على MSC.