Name: صيانة ذبابة الفاكهة عدد السكان قفص (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: تعلم بروتوكول صيانة قفص ذبابة الفاكهة لإنتاج كميات كبيرة من الأجنة واليرقات من Drosophila melanogaster. هذه الطريقة تسهل جمع المواد البيولوجية للتجارب الجزيئية والكيميائية الحيوية بكفاءة عالية.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

نشكر Yixian Zheng (معهد كارنيجي في واشنطن ، بالتيمور ، دكتوراه في الطب) على البروتوكول الأصلي والمساعدة في الإعداد الأولي وأعضاء مختبر Lei للقراءة النقدية للمخطوطة. تم تمويل هذا العمل من قبل برنامج البحوث الداخلية التابع للمعهد الوطني للسكري وأمراض الجهاز الهضمي والكلى.

1. بدء دورة: الأجنة البذر ملاحظة: تبدأ الدورة مع 1.5 غرام من المواد التي تم جمعها (خليط يتكون من الأجنة و / أو بعض الاولى يرقات العمر) من الدورة السابقة. سيتم وضع هذه المواد في وعاء من البلاستيك (انظر الجدول المواد / معدات معينة) مع الخميرة خليط فعال حتى مرحلة العذراء. سيتم إغلاق الحاوية بعد إدخال خليط البيولوجي للأجنة ويرقات مع غطاء لتجنب السماح لليرقات من الفرار. فمن الضروري لجعل ثقوب في غطاء من أجل السماح للدوران الهواء. لتجنب هروب اليرقات من خلال الثقوب، وتستخدم المقابس رغوة. وأخيرا، ينصح بارتداء القفازات ومعطف المختبر، وليس فقط في هذا القسم ولكن أيضا في البروتوكول كله، لتجنب الحصول على ملابس قذرة أو تلطيخ مع التبييض. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد الحاويات البلاستيكية. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل ثلاثة ثقوب مربعة بشفرة حلاقة في غطاء حاوية بلاستيكية لpproximately 2.2 سم. إضافة شريط (3/4 بوصة وسم الشريط) إلى أربع زوايا كل ثقب لضمان تناسب ضيق لشمعات الرغوة (50 × 55 مم، DXL)، ثم وضع المكونات رغوة واحدة في كل حفرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغطية داخل حاوية بلاستيكية مع غلاف بلاستيكي. خلال هذا الفيلم، إضافة طبقة من القطن لتغطية الجزء السفلي من الحاويات البلاستيكية. المسيل للدموع القطن مع أصابعك. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد الطعام ذبابة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 333 مل من الماء منزوع الأيونات في كوب 500 مل. مع التحريك الكأس مع شريط مغناطيسي، إضافة 167 ميكرولتر من حمض البروبيونيك و1.08 مل من حمض الفوسفوريك، من الحلول الأوراق المالية (99.96٪ و 85٪ على التوالي). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة ببطء 77.5 غراما من الخميرة الجافة النشطة، وتجنب كتل كبيرة. بعد حل الخميرة الجافة، إضافة 38.8 غرام من السكروز. ملاحظة: يجب أن يكون السكروز العنصر الأخير لتضاف لمباشرة بعد إضافة هذا المكون، وسوف يبدأ التخمر. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مباشرة بعد حل السكروز، صبالغذاء على القطن، والتأكد من تغطية القطن بالتساوي. إغلاق وعاء من البلاستيك مع غطاء لتجنب الذباب هرب داخل المختبر تلوث الغذاء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> و resuspend 1.5 غرام من الأجنة تحصد (لا dechorionated) من الدورة السابقة مع 5 مل من الايثانول 70٪. قطع في نصف اثنين من أوراق الترشيح وتوزيع خليط البيولوجي بالتساوي على 4 قطع باستخدام ملعقة أو الماصة نقل مع طرف واسعة (قطع إذا لزم الأمر). وضع أوراق الترشيح على رأس القطن غارقة وإغلاق الغطاء. وأخيرا، واحتضان الحاويات البلاستيكية في RT (24ºC) والرطوبة (35٪) حتى مرحلة الشرنقة. ملاحظة: يجب عدم وضع الحاويات البلاستيكية في غرفة رطبة، وإلا فإن هذا سوف يشجع نمو البكتيريا. </li></ol> 2. استمرار دورة: من الأجنة إلى الذباب. ملاحظة: هذا جزء من دورة يذهب من الأجنة وضعت في حاوية بلاستيكية في يوم 1 حتى وقت لاحق 9 أيام عندما الذباب الكبار ستخرجمن الشرانق. خلال هذه الأيام 8 لابد من عمل شيء لكن رصد تلك الأجنة التقدم بشكل صحيح إلى المراحل التالية من دورة حياة ذبابة الفاكهة حتى eclosion. إذا يرقات تبدأ الموت وتحول الأسود خلال هذا الوقت، تأكد من أن سدادات الرغوة ليست ضيقة جدا، وبشرط أن يكون جيد التهوية. هذه الفترة هي الوقت المناسب لتنظيف القفص السكان يطير من الدورة السابقة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أصبحت مراقبة الأجنة 1 شارع الطور اليرقات حوالي 24 ساعة بعد إيداع الإناث الكبار منهم إلى الطعام ذبابة (راجع الخطوة 3). واليرقات الناتجة تغذية من الطعام ذبابة أعدت في الخطوة 1 خلال 4 أيام، وتزايد وطرح الريش مرتين في الثانية 2 و 3 طور مرحلي الثالثة اليرقات. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنظيف القفص السكان الطاير. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع القفص في 4 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة على الأقل لإبطاء نشاط الذباب. إزالة الشبكة التي تغطي جانب واحد من القفص، ومع الحركة السريعة، وكأب الجانب مفتوحة مع البلاستيك واقية كبيرحقيبة. صب محتويات القفص في الكيس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مع حقيبة واقية لا يزال يغطي جانب واحد من القفص، وضع القفص عموديا أكثر من بالوعة مع الجانب حقيبة واقية أسفل. بعناية إزالة كيس من البلاستيك لمنع الذباب الهروب وتخلص منه في حاوية نفايات بيولوجية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعناية فتح الشباك العلوي بما فيه الكفاية لخلق ثقب صغير، وشطف داخل القفص مع الماء، والتي سوف يغسل الذباب في الحوض. ببطء زيادة حجم الثقب، والقضاء على كل الذباب داخل القفص. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنظيف القفص وكلا شبكات بالماء والصابون. في حين أن شبكات لا تزال رطبة تأمينها على جانبي القفص نظيفة وجافة، وأخيرا وضعت داخل ورقة المختبر معتاد على الثمالة، والتي سوف يمنع الفيلم من البلاستيك أعدت في الخطوة 1.1.2 من الالتصاق إلى القفص. الآن القفص جاهز للدورة المقبلة. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد أربعة أيام من الإعداد الأولي، ومراقبة تخدر تصبح خادرة اليرقات. وسوف تظل اليرقات في هذه المرحلة لمدة 4 أيام أخرى. وأشارأورينغ هذه المرحلة الشرانق سوف تغطي سطح القطن بأكمله داخل حاوية بلاستيكية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خلال مرحلة العذراء وقبل ظهور الذباب الأولى، فتح وعاء من البلاستيك ووضع الفيلم البلاستيكية التي تحتوي على القطن مع كل الشرانق على ورقة المختبر معتاد على الثمالة داخل القفص السكان نظيفة. إغلاق الشبكة مع عقدة مزدوجة وتنظيف الحاويات البلاستيكية وغطاء للدورة المقبلة. ملاحظة: شرانق الملصقة على غطاء ينبغي التخلص منها وتدميرها من قبل التعقيم أو تجميد قبل eclosion. </li></ol> الذباب 3. الكبار. ملاحظة: بعد 4 أيام من الشرنقة المرحلة الأولى الذباب ستخرج من الشرانق. ضمن 24-48 ساعة يجب أن eclosed كل الذباب. في هذا الجزء من دورة، من المهم أن توفر لهم الغذاء بهدف خلق البيئة المناسبة للتكاثر. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحضير دبس الصواني. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الجمع في 1 لتر قارورة 556.25 مل من H 2 O منزوع الأيونات، 90 مل من دبس السكر، و 22 غراما من أجار. الأوتوكلاف مع بقضيب لمدة 30 دقيقة، باردة وإضافة 9.25 مل من 10٪ Tegosept في 95٪ ETOH. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يسكب المزيج في صينية اللحم من 21 × 14.5 سم. تأكد من أن حجم ما يكفي لتغطية 15-17 الصواني. الانتظار 10-20 دقيقة لترسيخ وتغطية كل علبة مع فيلم من البلاستيك لتجنب جفاف. عدة قوارير من 1 L يمكن أن تكون مستعدة في نفس الوقت. تخزين الدبس صواني في 4 درجة مئوية ملفوفة في البلاستيك حتى المطلوبة. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة علبة الدبس مغطاة الخميرة الرطب داخل القفص مع الذباب الكبار. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قبل أن يضيف لوحة، ووضع القفص في 4 درجة مئوية في غرفة باردة لمدة 30 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة 200 مل من H 2 O منزوع الأيونات في كوب ويصب ببطء الخميرة الجافة مع التحريك بملعقة. إيقاف إضافة الخميرة الجافة عندما يصبح الخليط حوالي اتساق زبدة الفول السوداني لمنع الذباب يعلقوا في الغذاء. ملاحظة: من المهم عدم السماح الحل الغذائية ليصلب وإلا فإنه سيكون من الصعب جدا لتغطيةالدبس صينية واستخراج البيض أثناء عملية الحصاد (انظر القسم 4.3). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة فيلم من البلاستيك من علبة واحدة الدبس، وتغطي بطبقة من الخميرة الرطب مستعدة جديدة باستخدام ملعقة أو ملعقة. تأكد من أن يتم تغطية كامل سطح. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في حين القفص لا يزال في غرفة باردة، فتح الشباك وبعناية إضافة علبة دبس السكر مع الخميرة الرطب في قفص. إغلاق شبكة الإنترنت، ووضع القفص في RT. ملاحظة: قد يكون من المفيد لتغطية لوحة مع صينية اللحم فارغة أثناء الإدراج، ولكن تأكد من عدم منع وصول الذباب إلى علبة الدبس. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغيير لوحة الطعام كل 24-48 ساعة لتجنب الخميرة للحصول على جافة جدا. الذباب الكبار حساسة جدا للجفاف. </li></ol> 4. نهاية دورة: حصاد الأجنة ملاحظة: خصوبة أفضل ذبابة هي 3-5 أيام بعد eclosion. ولذلك، فإن الحصاد خلال هذه الفترة الحصول على أفضل عائد الجنين. مجموعات بعد المرجوة هي COMPLEتيد، ودورة قد انتهت. ينبغي التضحية الذباب والقفص تنظيفها كما هو محدد في الخطوة 2.2. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> عادة، بعد 2 أيام eclosion الطيران، وإدخال الدبس جديدة صينية مع الغذاء الرطب الطازج في قفص، كما هو موضح في القسم 3.2.5. لزيادة الغلة من البيض الترسيب، مع مساعدة من الأصابع، وجعل السطح من الخميرة الرطب غير منتظمة قدر الإمكان. إذا صينية الطعام القديمة موجودة في القفص، قبل أن يضيف لوحة جديدة، وإزالة بعناية وتخلص منه في حقيبة واقية. آخر نصيحة لزيادة العائد لإزالة طبقة من القطن لذلك سيتم وضع كل البيض في الطعام. الحفاظ على القفص في RT. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة الأجنة كنقاط صغيرة بيضاء. ملاحظة: البيض جاهزة للجمع. للصيانة الروتينية من القفص الطاير، 2 جمع اليوم هو الوقت الموصى به. ستحتوي هذه المجموعة في معظمها الأجنة وعدد قليل من 1 شارع الطور اليرقات. رؤية النتائج ممثل عن عوائد نموذجية من الأجنة حصادها لمختلف كولينقاط الوقت ction. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حصاد الأجنة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع القفص في غرفة باردة لمدة 30 دقيقة. في الوقت نفسه إعداد وعاء من البلاستيك والمواد الغذائية الطيران للدورة المقبلة كما هو موضح في القسم 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في صينية الأوتوكلاف 8 L إضافة الماء إلى ربع إجمالي الطاقة الإنتاجية ومن ثم إضافة 1 مل من 10٪ تريتون X-100. في حين القفص هو في غرفة باردة إزالة بعناية لوحة الدبس ووضعه داخل كيس واقية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة علبة من الكيس ويغرق بسرعة (لمنع الذباب من الهروب) في حل المنظفات في علبة التعقيم. إغلاق حقيبة واقية وضعت في حاوية واقية. والذباب لا يغرق في الماء الذي لا يحتوي على مواد التنظيف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام الفرشاة الكبيرة والمقطر مدفع المياه لغسل الأجنة والخميرة الخروج من دبس السكر. تجاهل لوحات ودبس السكر في مربع واقية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> صب حل بعناية من خلال مجموعة غربال ثلاثة (خشن غربال 30 على القمة، 40 في الوسط و 100 في الأسفل). غسل كتل سن المستوى مع بندقية الماء المقطر حتى لا تظل كتل. ملاحظة: الكبار الذباب وسيتم الاحتفاظ 3 طور مرحلي الثالثة اليرقات في غربال 30. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف الدرج الأوتوكلاف مع الماء المقطر وصب ماء الشطف من خلال مناخل. إزالة أعلى غربال وتكرار العملية إذا بقيت كتل الخميرة. ومعظم الحادي و1 و كل من اليرقات طور مرحلي 2 الثانية البقاء في غربال 40. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة غربال الثاني. مادة صفراء في (القاع) غربال الثالث هو خليط من الأجنة والصغيرة 1 شارع الطور اليرقات. استخدام مدفع الماء المقطر لنقل كل البيض إلى جانب واحد من غربال. جمعها مع ملعقة ووزن لهم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خلال هذه الدورات العائد جمع الأجنة / اليرقات يتراوح بين 7 و 13 غرام. استخدام سوى 1.5 غرام من هذه المواد لبدء دورة جديدة (المادة 1). استخدام ما تبقى من الأجنة لمزيد من المعالجة أو يمكن التخلص منها. </li></ol></li></ol> 5. وعلاوة على ذلكمعالجة ملاحظة: الأجنة لا تستخدم للاستمرار من السكان يمكن استخدامها على الفور لإجراء التجارب أو بدلا من ذلك يمكن تجميدها في -80 درجة مئوية. لكلا الخيارين، قد تحتاج إلى أولا dechorionated الأجنة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لdechorionation، وغسل الأجنة لمدة 2 دقيقة في 50٪ من محلول التبييض وشطف جيدا بالماء المقطر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تجميد الأجنة، أول الجافة عن طريق الضغط بقوة مع منشفة ورقية، ثم وزن وضعها، مع مساعدة من ملعقة، إلى 15 أو 50 مل أنبوب مخروطي الشكل. أخيرا غمر أنبوب مخروطي في السائل N 2 لبضع ثوان. </li></ol>

<ol><li>Lim, S. J., Boyle, P. J., Chinen, M., Dale, R. K., Lei, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genome-wide+localization+of+exosome+components+to+active+promoters+and+chromatin+insulators+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Genome-wide localization of exosome components to active promoters and chromatin insulators in Drosophila.</a> Nucleic Acids Res. 41, 2963-2980 (2013).</li>
<li>Ong, C. T., Van Bortle, K., Ramos, E., Corces, V. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Poly%28ADP-ribosyl%29ation+regulates+insulator+function+and+intrachromosomal+interactions+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Poly(ADP-ribosyl)ation regulates insulator function and intrachromosomal interactions in Drosophila.</a> Cell. 26, 148-159 (2013).</li>
<li>Gonzalez, I., Mateos-Langerak, J., Thomas, A., Cheutin, T., Cavalli, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+regulators+of+the+three-dimensional+polycomb+organization+by+a+microscopy-based+genome-wide+RNAi+screen%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell%22%5BJournal%5D)">Identification of regulators of the three-dimensional polycomb organization by a microscopy-based genome-wide RNAi screen.</a> Mol Cell. 8, 485-499 (2014).</li>
<li>Magbanua, J. P., Runneburger, E., Russell, S., White, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+variably+occupied+CTCF+binding+site+in+the+ultrabithorax+gene+in+the+Drosophila+bithorax+complex%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">A variably occupied CTCF binding site in the ultrabithorax gene in the Drosophila bithorax complex.</a> Mol Cell Biol. 35, 318-330 (2014).</li>
<li>Maksimenko, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+new+insulator+proteins%2C+Pita+and+ZIPIC%2C+target+CP190+to+chromatin%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">Two new insulator proteins, Pita and ZIPIC, target CP190 to chromatin.</a> Genome Res. 25, 89-99 (2015).</li>
<li>Lei, E. P., Corces, V. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference+machinery+influences+the+nuclear+organization+of+a+chromatin+insulator%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">RNA interference machinery influences the nuclear organization of a chromatin insulator.</a> Nat Genet. 38, 936-941 (2006).</li>
<li>Matzat, L. H., Dale, R. K., Moshkovich, N., Lei, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-specific+regulation+of+chromatin+insulator+function%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Tissue-specific regulation of chromatin insulator function.</a> PLoS Genet. 8, e1003069(2012).</li>
<li>King, M. R., Matzat, L. H., Dale, R. K., Lim, S. J., Lei, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+RNA-binding+protein+Rumpelstiltskin+antagonizes+gypsy+chromatin+insulator+function+in+a+tissue-specific+manner%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">The RNA-binding protein Rumpelstiltskin antagonizes gypsy chromatin insulator function in a tissue-specific manner.</a> J Cell Sci. 1, 2956-2966 (2014).</li>
<li>Sisson, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culturing+large+populations+of+drosophila+for+protein+biochemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Culturing large populations of drosophila for protein biochemistry.</a> Cold Spring Harb Protoc. , (2007).</li>
<li>Shaffer, C. D., Wuller, J. M., Elgin, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Raising+large+quantities+of+Drosophila+for+biochemical+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Raising large quantities of Drosophila for biochemical experiments.</a> Methods Cell Biol. 44, 99-108 (1994).</li>
<li>Roberts, D. B., Standen, G. N. The elements of Drosophila biology and genetics. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRoberts%2C+DB+%22Drosophila%3A+A+practical+approach%22">Drosophila: A practical approach</a>. Roberts, D. B. , Oxford University Press. Oxford. 1-53 (1998).</li>
<li>Ashburner, M., Roote, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+Drosophila%3A+The+laboratory+setup%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb+Protoc%22%5BJournal%5D)">Culture of Drosophila: The laboratory setup.</a> Cold Spring Harb Protoc. , (2007).</li>
<li>Dahlberg, O., Shilkova, O., Tang, M., Holmqvist, P. H., Fb Mannervik, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P-TEb%2C+The+super+elongation+complex+and+mediator+regulate+a+subset+of+non-paused+genes+during+early+Drosophila+embryo+development%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Genet%22%5BJournal%5D)">P-TEb, The super elongation complex and mediator regulate a subset of non-paused genes during early Drosophila embryo development.</a> PLOS Genet. 13, e1004971(2015).</li>
<li>Zhang, S. D., Odenwald, W. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Misexpression+of+the+white+%28w%29+gene+triggers+male-male+courtship+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Misexpression of the white (w) gene triggers male-male courtship in Drosophila.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 6, 5525-5529 (1995).</li>
<li>Chak, L. L., Mohammed, J., Lai, E. C., Tucker-Kellogg, G., Okamura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+deeply+conserved%2C+noncanonical+miRNA+hosted+by+ribosomal+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">A deeply conserved, noncanonical miRNA hosted by ribosomal DNA.</a> RNA. 21, 375-384 (2015).</li>
<li>Moshkovich, N., Lei, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HP1+recruitment+in+the+absence+of+argonaute+proteins+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+Genet%22%5BJournal%5D)">HP1 recruitment in the absence of argonaute proteins in Drosophila.</a> PLOS Genet. 12, e1000880(2010).</li>
<li>Drosophila RNAi Screening Center [Internet]. , Available from:
 <a target="_blank" href="http://www.flyrnai.org/DRSC-PRC.html">http://www.flyrnai.org/DRSC-PRC.html</a> (2015).</li>
<li>Pandey, U. B., Nichols, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+disease+models+in+Drosophila+melanogaster+and+the+role+of+the+fly+in+therapeutic+drug+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol+Rev%22%5BJournal%5D)">Human disease models in Drosophila melanogaster and the role of the fly in therapeutic drug discovery.</a> Pharmacol Rev. 63, 411-436 (2011).</li>
</ol>

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

يمكن أن تبدأ مع 1.5 غرام من مادة واحدة الحصول على العائد من الأجنة التي تم جمعها ما بين 7 و 13 غ لكل دورة. للحصول على هذا المبلغ من المواد التي لا بد من المحافظة على ظروف زراعة المناسبة لجميع مراحل دورة الطيران. أهم المعايير هي درجة الحرارة والرطوبة، والتي ينبغي أن تكون 24 درجة مئوية و 35٪ على التوالي. إذا كانت هذه المعلمتين لا يمكن ثابتة في البيئة الطبيعية للمختبر، ان احد الاحتمالات لوضع القفص يطير إلى حاضنة أو الغرفة البيئية. البروتوكولات الأخرى يوصى به 70٪ الرطوبة وأيضا 24 ساعة دورة ضوء الظلام مستمرة لزيادة الغلة من البيض المنتج 9،10. ولكن الحفاظ على الرطوبة حوالي 35٪ يتجنب التلوث الجرثومي، وبما أن الهدف من هذا البروتوكول هو فقط الحفاظ على قفص السكان، يتم الاحتفاظ الذباب في ضوء البيئة الطبيعية للمختبر. نقطة أخرى مهمة هي أن تبقي ديsturbances إلى الكبار الذباب عند أدنى مستوى ممكن. قد يكون من المستحسن أن تبقي القفص في مكان منفصل عن غرفة ذبابة لتجنب التلوث من غيرها من الذباب. لا ينصح زراعة من أعداد كبيرة من المعدلة وراثيا والذباب متحولة، لأنه من الصعب جدا للحفاظ على نقاء، وأنها يمكن أن تظهر وضوحا سلوك التزاوج الشاذ في أقفاص كبيرة من السكان 14. مشكلة واحدة محتملة في حين زرع ذبابة الفاكهة بكميات كبيرة هو وجود كائنات حية أخرى مثل العث و / أو العفن، والتي سوف تنافس على الغذاء، وبالتالي تقليل العائد من البيض المنتج. لتجنب هذا، من المهم جدا للحفاظ على جميع المعدات نظيفة، وغسل القفص والشباك ويطير صناديق بالماء والصابون، والتخلص من المواد المتاح (شمعات الرغوة) بعد كل دورة. للحد من العفن تنمو، تضاف البروبيونيك وحمض الفوسفوريك في الخميرة الرطب عند إعداد الطعام ذبابة في الخطوة1.2 وTegosept عند إعداد العسل الأسود صينية في الخطوة 3.1. ومن المفيد في بعض الأحيان إلى المواد مكان مثل مربع من البلاستيك أو غرابيل في -20 C عندما يكون الوقت قصير والمواد لا يمكن تنظيفها على الفور. تحدث دورة جمع كلها في 14-15 يوما تبدأ عندما يتم المصنف الأجنة في مربع الطاير وتنتهي مع اليوم جمع الماضي. خلال هذه الفترة من الزمن، فمن المستحسن لتنظيم جدول زمني من أجل أن نتذكر جميع الخطوات اللازمة لصيانة قفص الطيران السكان (الشكل 2)، مفصلة في قسم البروتوكول. من اليوم أن البيض المصنفة، حتى تظهر الذباب الكبار، فمن الضروري فقط لتفقد مربع من البلاستيك، وعندما يحدث التشرنق، لوضعها داخل القفص. بعد ذلك، والذباب يجب أن يكون الطعام كل 2-3 أيام حتى يتم المصنف الأجنة لدورة جديدة. في البروتوكول كله، وأطول يوم هو خلال جمع وزرع الأجنة لبدء دورة جديدة. اق علق في البروتوكول، وأفضل عائد البيض هو 3 - 5 أيام بعد eclosion الكبار، وأخيرا يتراجع في وقت لاحق 2 أيام. هذا يعطينا بعض المرونة لاختيار اليوم الذي سيتم تنفيذ حصاد البيض. إذا لأي سبب من الأسباب العائد من الأجنة التي تم جمعها أقل من المبلغ المطلوب بدءا (1.5 غرام)، واحد دائما يمكن إضافة العسل الأسود صينية جديدة وجمع المزيد من البيض في اليوم التالي. لمجموعات ثابتة، فمن المستحسن للحفاظ 2 أقفاص في موازاة ذلك، وإذا كانت هناك حاجة كميات أكبر من الأجنة، فمن غير الممكن أيضا استخدام أقفاص أكبر. في حالة القيام مجموعات زمنية قصيرة، طريقة واحدة لزيادة الغلة للاستفادة من انفجار وضع البيض في الصباح. هناك العديد من المزايا من جمع كميات كبيرة من مراحل النمو المختلفة. على سبيل المثال، تم استخدام الأجنة التي تم جمعها من أقفاص السكان بنجاح كبير في فحوصات مناعي 6-8، collectio الشاملوقد أثبتت ن من أنسجة اليرقات من اليرقات فصلها لتكون مصدرا جيدا للغاية بالنسبة 3C التجارب 4 والاستعدادات RNA 15، ولقد تم استخدام رؤوس من الذباب الكبار للتجارب رقاقة 16. وبالإضافة إلى ذلك، غالبا ما يحتاج الكبار إلى جعل مقتطفات الطيران لزراعة الأنسجة 17. واحدة من أكثر التطبيقات الواعدة من القفص هو توفير المواد لفحوصات عالية الإنتاجية التي تسمح للتحليل وفحص الجينات، النصوص والبروتينات والأيض ردا على التعرض لمسببات الأمراض، والجزيئات البيولوجية، والمواد الكيميائية والإشعاع المؤين. في هذه المقايسات على نطاق واسع مطلوب أعداد كبيرة من الأفراد، والقفص السكان ذبابة الموصوفة هنا يمكن أن تكون مفيدة جدا من أجل الحصول على كميات كبيرة من المواد خلال مراحل مختلفة من دورة حياة ذبابة الفاكهة لتحليل وفحص 18.

جعلت القدرة على الجمع بين النهج الوراثية والبيوكيميائية ذبابة الفاكهة كائن مناسبة خاصة بالنسبة للكيمياء الحيوية والبيولوجيا الجزيئية الدراسات 1-3. وغالبا ما تتطلب هذه الدراسات كميات كبيرة من المواد البيولوجية، ليس فقط من الذباب الكبار، ولكن أيضا من اليرقات 4، 5 الشرانق والأجنة 6-8. للحصول على كميات كبيرة من المواد، الباحثين الذباب مثقف باستخدام الحاويات الكبيرة المعروفة باسم يطير &quot;أقفاص السكان&quot;. تتكون هذه الأقفاص من اسطوانة مصنوعة من البلاستيك بواسطة شبكة من الجانبين مغطاة للسماح لإدخال المواد الغذائية داخل القفص دون الذباب الهرب. ويمكن لهذه الأقفاص تكون محلية الصنع 9-11 أو شراؤها من شركة (انظر الجدول المواد / معدات معينة). والميزة الرئيسية لاستخدام هذا النظام لزراعة أعداد كبيرة من الذباب هي أن دورة من ذبابة الفاكهة 12 يمكن التحكم في الطريقة التي تتطور كل الذباب في إعادةتزامن latively الطريقة. ويتحقق هذا التزامن عن طريق بذر أجنة جديدة، وتغذية اليرقات / الذباب والتضحية الذباب الكبار في أوقات محددة. باستخدام السكان ذبابة متزامنة مفيدة بشكل خاص للدراسات التنموية 13. بداية قفص السكان الجدد من عدد قليل من الذباب هي عملية تستغرق وقتا طويلا تتطلب العديد من الدورات من التضخيم 9-11. حتى باستخدام حاويات أكبر مثل زجاجات ثقافة ذبابة أو minicages، يمكن أن العملية برمتها تستمر لأشهر. لتجنب هذه تستغرق وقتا طويلا الخطوة، العديد من المختبرات ذبابة الفاكهة تحافظ بانتظام مثل هذه الأقفاص. ومن الأكثر ملاءمة لبدء قفص جديد ابتداء من جمع الأجنة من قفص السكان بالفعل. بشكل عام، فإن معظم معامل تحتفظ أقفاص السكان wildtype، مثل ولاية أوريغون R أو كانتون S. تقدم هذه المخطوطة بروتوكول مفصلة للحفاظ على أقفاص السكان الطاير.

<table><tbody><tr><td>باكتو أجار</td><td>بيكتون ديكنسون</td><td>214010</td><td></td></tr><tr><td>لفة قطن عملية كوريتي</td><td>كيندال</td><td>2287</td><td></td></tr><tr><td>الخميرة الجافة</td><td>Affymetrix</td><td>23540</td><td></td></tr><tr><td>ورق ترشيح</td><td>GE Healthcare Life Science</td><td>1001-085</td><td></td></tr><tr><td>سدادات أنبوب الرغوة</td><td>Jaece</td><td>L800-D2</td><td>50 مم قطر × 55 مم طول</td></tr><tr><td>قفص السكان الذبابة</td><td>فلاي ستاف</td><td>59-116</td><td>9 & برايم ؛ القطر × 14.4 &Prime; طول. يشمل شباك القفص.</td></tr><tr><td>صينية لحم</td><td>Genpak</td><td>1002S (#2S)</td> <td>8.25 × 5.75 × 0.5 بوصة</td></tr><tr><td>دبس</td><td>السكر الجدة & حاد; s</td><td></td><td></td></tr><tr><td>حاوية بلاستيكية</td><td>Rubbermaid</td><td>4022-00</td><td></td></tr><tr><td>فيلم بلاستيكي</td><td>سعيد</td><td></td><td></td></tr><tr><td>حمض الفوسفوريك</td><td>فيشر Scientific</td><td>S 93326</td><td>سامة. مقبض في الكيمياء هود</td></tr><tr><td>حمض البروبيونيك</td><td>فيشر العلمي</td><td>A258-500</td><td>سامة. مقبض في شفاط كيمياء</td></tr><tr><td>ستانلس ستيل&nbsp; غربال #100</td><td>VWR</td><td>57324-400</td><td></td></tr><tr><td>ستانلس ستيل&nbsp; غربال #40</td><td>VWR</td><td>57324-272</td><td></td></tr><tr><td>ستانلس ستيل&nbsp; غربال #30</td><td>VWR</td><td>57324-240</td><td></td></tr><tr><td>سكروز</td><td>MP</td><td>152584</td><td></td></tr><tr><td>TegaseptLab</td><td>FLY5501</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>العلميةتريتون-X100</td><td>فيشر العلمي</td><td>BP151-500</td><td></td></tr></tbody></table>

صيانة<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; عدد السكان قفص

Maintenance of a Drosophila melanogaster Population Cage

غالبا ما تكون <ال>jove_content كميات الكبيرة من الحمض النووي والحمض النووي الريبي والبروتينات والمكونات الخلوية الأخرى مطلوبة لتجارب الكيمياء الحيوية والبيولوجيا الجزيئية. تتيح دورة الحياة القصيرة لذبابة الفاكهة جمع كميات كبيرة من المواد من الأجنة واليرقات والشرانق والذباب البالغ ، بطريقة متزامنة وبتكلفة اقتصادية منخفضة. تتمثل إحدى الاستراتيجيات الرئيسية لنشر أعداد كبيرة من الذباب في استخدام قفص سكان الذباب. هذه الأداة المفيدة والشائعة في مجتمع Drososphila هي طريقة فعالة لإنتاج ملليغرام بانتظام إلى عشرات الجرامات من الأجنة ، اعتمادا على توحيد مرحلة النمو المطلوبة. في حين أن إعداد القفص السكاني يمكن أن يستغرق وقتا طويلا ، فإن الحفاظ على القفص على مدى أشهر يستغرق وقتا أقل بكثير ويتيح الجمع السريع للمواد البيولوجية في فترة قصيرة. تصف هذه الورقة بروتوكولا مفصلا ومرنا لصيانة قفص سكاني ذبابة الفاكهة السوداء ، بدءا من 1.5 غرام من المواد المحصودة من الدورة السابقة.

ويستند في الحفاظ على السكان قفص ذبابة على دورة حياة الذبابة. لذلك، بعد وضع خليط البيولوجي الأولي للأجنة ويرقات في وعاء من البلاستيك (الشكل 1A) البويضة الملقحة سوف تصبح اليرقات في ما لا يزيد عن 2 يوما، وسوف اليرقات تنمو لمدة 4 أيام، وتزامن نسبيا خلال مختلف مراحل اليرقات طور مرحلي ( انظر الشكل 1B). بعد اليرقات قد أكملت 3 طور مرحلي الثالثة مرحلة اليرقات فإنها تخدر تصبح خادرة وتغطية سطح القطن داخل الحاوية البلاستيكية مع بعض على السطح الداخلي للغطاء (الشكل 1C). وهذه الفترة التشرنق يذهب لمدة 4 أيام المقبلة حتى الانتهاء من الذباب عملية التحول. خلال هذه الفترة فمن المستحسن لنقل الذباب في قفص. وسوف يبدأ الذباب الكبار الأولى لeclose في يوم 9-10 بعدسوف بدء دورة (1D الشكل) ويوم 11 فقط منهم ظهرت من الشرانق. يتم الحصول على أفضل عائد من جمع الأجنة 3 - 5 أيام بعد eclosion (يوم 13 إلى 15) وينخفض ​​في نهاية المطاف في يوم 17 (7 أيام بعد eclosion). ولذلك، فمن المستحسن أن إضافة علبة الأخيرة من الأغذية الطازجة في يوم 13، وجمع البيض في يوم 15 (الشكل 1E وواو). وهذا سوف يسمح جمع أكبر عدد ممكن من الأجنة. إضافة يوم إضافي ثالث قبل أن يقلل من العائد من الأجنة التي تم جمعها جمع قد يؤدي إلى الغذاء يجري جافة جدا وبالتالي. ويبين الجدول 1 العائد من 6 مجموعات دورة متتالية، مع وجود مادة بدءا من 1.5 غرام في كل دورة، والشكل 2 هو الجدول الزمني الموصى بها لجمع دورة كاملة. المادة تحصد في يوم 260؛ فترات تتكون في معظمها من الأجنة. ولكن عدد قليل من اليرقات موجودة أيضا. لأغراض الصيانة القفص هذه اليرقات ليست مشكلة، حيث من المتوقع قدرا من asynchronicity. على الرغم من ذلك لبعض التجارب والكيمياء الحيوية، ونقاء من هذه الأجنة مهم جدا، ولكن في نفس الوقت من الضروري أيضا لجمع كميات كبيرة من البيض لتنفيذ هذه التجارب. لهذا السبب تم تنفيذ عدة مجموعات قصيرة متتالية في 1 ساعة و 3 ساعات، بعد إضافة بسرعة في RT لوحة جديدة مع الغذاء، لتوفير تقدير المحصول والنقاء التي يمكن الحصول عليها مع هذا الأسلوب (الجدول 2 والشكل 3) . بدأت مجموعات 1 ساعة على التوالي مع العائد المنخفض جدا (14.5 ملغ) ولكن بعد ذلك كميات من الأجنة زيادة في كل مرة يتم جمعها لكن في المرة الأخيرة. العائد المنخفض في البداية قد يكون راجعا إلى الذباب الذي أكد خلال عملية تغيير الطعام ولكن في وقت لاحق التأقلم. من ناحية أخرى، لا لاروقد لوحظت الدرهم في مجموعات متتابعة خمسة (الشكل 3A)، وتبين أن مجموعات أقصر العائد العالي النقاء. إذا لم تتم إزالة القطن من القفص، فإن احتمال أن اليرقات من نقاط وقت سابق تبقى وأدخل يتم زيادة وحة جديدة. حتى عندما تتم إزالة القطن، في بعض الأحيان اليرقات ويهيمون على وجوههم على جانب القفص ودخول المواد الغذائية خلال مجموعة. بالنسبة للمجموعات 3 ساعة على التوالي، تراوح العائد 840-1250 ملغ، أي حوالي 10 مرات أكثر من الغلات المنتجة في مجموعات ساعة 1. كان على نقاء هذه الأجنة قرب 100٪ (الشكل 3B). وقد لوحظت اليرقات في بعض الأحيان. تتطلب بعض الدراسات التنموية تزامن صارم جدا للأجنة التي تم جمعها. لزيادة نقاء التزامن، فمن المستحسن أن يتخلص من لوحة مجموعة الأولى لأنه إذا الظروف ليست مثالية، يمكن الإناث تحتفظ البيض أكثر نضجا وإيداعم عندما تتحسن الظروف، كما هو الحال مع إدخال لوحة جديدة. كما أنه من المهم أن نعرف أن أقدم الذباب الكبار (&gt; 6 أيام) تنتج أجنة أقل متزامنة. للتحقق من درجة من التزامن مع دقة عالية، ينصح تلطيخ دابي من الأجنة التي تم جمعها. <img alt="الشكل 1" src="/files/ftp_upload/53756/53756fig1.jpg" /> الشكل 1. دورة ذبابة الفاكهة الحياة في قفص السكان ذبابة. (A) بدء دورة البذر 1.5 غرام من الأجنة في وعاء صندوق من البلاستيك. كمرجع، في اللوحة السفلى، وطول ورقة الترشيح هو 8.5 سم. (ب) يرقات أن زراعة متزامنة نسبيا بعد 5 أيام من بدء الدورة. (C) في يوم 8، أكثر من الذباب هم في مرحلة الخادرة. انخفاض وحات في B (B &#39;) وC<html> (C &#39;) هي تكبير من المجالات المشار إليها في لوحات العليا. الذباب (D) الكبار ظهرت من الشرانق بعد 10 يوما بدء دورة. (E) الكبار الذباب داخل القفص السكان قبل البدء في عملية جمع الأجنة، في يوم 15. المادة صفراء على الطعام ذبابة على البيض المخصب. (F) الأجنة (وعدد قليل من اليرقات) التي تم جمعها في الجزء السفلي من منخل 100 خشن، بعد دورة قفص بأكملها. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53756/53756fig1large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a> <img alt="الشكل 2" src="/files/ftp_upload/53756/53756fig2.jpg" /> الشكل 2. كامل الجدول مجموعة دورة. ويبين الشكل 2 الجدول الزمني الموصى بها لجمع دورة كاملة.<html> ر = &quot;_ فارغة&quot;&gt; الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم. <img alt="الشكل (3)" src="/files/ftp_upload/53756/53756fig3.jpg" /> الشكل 3. الطهارة من 1 ساعة و 3 ساعة مجموعات متتالية. صورة الممثل من الأجنة التي تم جمعها في 1 ساعة (A) والموارد البشرية 3 (ب) بعد إضافة علبة جديدة من المواد الغذائية. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53756/53756fig3large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a> <table style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> عدد دورة </td><td> العائد (ز) </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 10.3 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 9.5 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 10.3 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 12.7 </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 10 </td></tr><tr><td> 6 </td><td> 7.1 </td></tr></tbody></table>ntent &quot;FO: المحافظة على together.within الصفحات =&quot; 1 &quot;&gt; الجدول 1. العائد من عدة مجموعات دورة يبين الجدول 1 العائد من 6 مجموعات دورة متتالية، مع وجود مادة بدءا من 1.5 غرام في كل دورة، وكان آخر. تمت إضافة علبة من الطعام في يوم 13 واجريت الحصاد في يوم 15. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> مجموعة # </td><td> طول جمع (ساعة) </td><td> العائد (ملغ) </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 1 </td><td> 14.5 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 1 </td><td> 21.6 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 1 </td><td> 56.1 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 1 </td><td> 160.1 </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 1 </td><td> 106.1 </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 3 </td><td> 960 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 3 </td><td> 840 </tد&gt; </tr><tr><td> 3 </td><td> 3 </td><td> 1250 </td></tr></tbody></table> الجدول 2. العائد من 1 ساعة و 3 ساعة مجموعات متتالية. ويبين الجدول 2 العائد من 5 مجموعات متتالية 1 ساعة بعد إضافة طعام جديد و3 مجموعات متتالية 3 ساعة بعد وضع لوحة الدبس جديدة.

تشير هذه المخطوطة إلى بروتوكول مفصل لزراعة ، على أساس منتظم ، مجموعة من ذبابة الفاكهة السوداء باستخدام قفص سكاني للذبابة.

Large quantities of DNA, RNA, proteins and other cellular components are often required for biochemistry and molecular biology experiments. The short life ...

نصف في هذه الورقة بروتوكولاً مفصلاً ومرناً للحفاظ على قفص لمجتمع من الذباب. وتعد هذه طريقة فعالة لإنتاج كميات تتراوح من ملليجرامات إلى عشرات الجرامات من الأجنة واليرقات والعرائس والذباب البالغ بشكل منتظم. يتم جمع الذباب الذي وصل للتو في هذه العملية للحصول على كميات كبيرة من DNA وRNA والبروتينات والمكونات المماثلة الأخرى المطلوبة لتجارب الكيمياء الحيوية والبيولوجيا الجزيئية.يمكن أن يستغرق إعداد أقفاص التكاثر وقتاً طويلاً. ومع ذلك، فإن الحفاظ على القفص لعدة أشهر يوفر الوقت ويتيح الجمع السريع للمواد البيولوجية في فترة زمنية قصيرة. للبدء، قم بتجهيز الحاوية البلاستيكية عن طريق قص ثلاثة مربعات بحجم 2-by-2 سنتيمتر في غطاء الحاوية البلاستيكية.أضف شريط تسمية بطول ثلاثة أرباع بوصة إلى الزوايا الأربع لكل فتحة لضمان إحكام تثبيت السدادات الرغوية. ثم ضع سدادة رغوية واحدة في كل فتحة. غطِّ الجزء الداخلي من الحاوية بغلاف بلاستيكي.فوق هذا الغشاء، أضف طبقة من القطن لتغطية قاع الحاوية البلاستيكية وقم بإزالة القطن الزائد. بعد ذلك، انتقل إلى تحضير غذاء الذباب بإضافة 333 milliliters من الماء منزوع الأيونات إلى دورق سعة 500ml. داخل خزانة استخلاص كيميائية، قم بتحريك المحلول باستخدام قضيب مغناطيسي وأضف 167 microliters من propionic acid و 1.08 milliliters من phosphoric acid من المحاليل الأصلية.أضف 77.5 grams من الخميرة الجافة النشطة ببطء، مع تجنب تكون تكتلات كبيرة. بعد إذابة الخميرة الجافة، أضف 38.8 grams من السكروز في النهاية. فور إذابة السكروز، صب الوسط الغذائي الطازج فوق القطن.تأكد من تغطية القطن بالتساوي، قبل إغلاق الحاوية البلاستيكية بالغطاء لمنع الذباب الفارّ من تلوث الغذاء. نقوم بتعليق 1.5 grams من أصعب أجنة id nondi coronated من الدورة السابقة. قص ورقتي ترشيح إلى نصفين ووزع الخليط البيولوجي بالتساوي على القطع الأربع باستخدام ملعقة مسطحة.ضع أوراق الترشيح فوق القطن المبلل وأغلق الغطاء. أخيراً، قم بتحضين الحاوية البلاستيكية حتى مرحلة العذراء. راقب الأجنة حتى تتحول إلى يرقات في الطور الأول.ستتغذى اليرقات الناتجة على خليط الخميرة، وتنمو وتنسلخ مرتين لتتحول إلى يرقات في الطور الثاني والثالث. وخلال فترة النمو، يتم تنظيف قفص مجموعة الذباب كما هو موضح بالتفصيل في البروتوكول النصي المرفق. وبعد أربعة أيام من الإعداد الأولي، يتم ملاحظة تحول اليرقات إلى خادرة.ستبقى اليرقات في هذه المرحلة لمدة أربعة أيام إضافية. وقبل ظهور أولى الذباب، افتح الحاوية البلاستيكية وضع الغشاء البلاستيكي الذي يحتوي على القطن مع جميع العذارى فوق ورق الترطيب المختبري داخل قفص المجتمع النظيف. قم بتشغيل خليط الدبس الذي تم تحضيره مسبقاً باستخدام قضيب تحريك لمدة 30 دقيقة.قم بتبريد الخليط وأضف محلول Tegosept إلى خليط الدبس. بعد ذلك، صب الخليط في صينية لحم مقاس 21x14.5 سنتيمتر. تأكد من أن الحجم كافٍ لتغطية 16 صينية.انتظر لمدة تصل إلى 20 دقيقة حتى يتصلب الدبس، وقم بتغطية كل صينية بغشاء بلاستيكي لتجنب الجفاف. ثم تُخزن الصواني عند درجة حرارة 4 degrees Celsius حتى وقت الاستخدام. أضف 200 milliliters من الماء منزوع الأيونات في دورق، واسكب الخميرة الجافة ببطء مع التقليب باستخدام ملعقة.توقف عن إضافة الخميرة الجافة عندما يصل الخليط إلى قوام زبدة الفول السوداني لمنع التصاق الذباب بالطعام. قم بإزالة الغشاء البلاستيكي من صينية دبس واحدة، ثم غطها بطبقة من الخميرة الرطبة المحضرة حديثاً باستخدام ملعقة أو ملعقة مسطحة. تأكد من تغطية السطح بالكامل.ضع القفص في غرفة التبريد عند درجة حرارة 4 °C لمدة تصل إلى 30 دقيقة لضمان توقف الذباب عن الطيران. وأثناء وجود القفص في غرفة التبريد، افتح الشبكة وأضف بعناية صينية الدبس التي تحتوي على الخميرة الرطبة إلى القفص. أغلق الشبكة ثم ضع القفص في درجة حرارة الغرفة.بعد يومين من الفقس، ضع صينية دبس جديدة تحتوي على غذاء رطب طازج داخل القفص. ولزيادة إنتاجية وضع البيض، اجعل سطح الخميرة الرطبة غير منتظم قدر الإمكان. حافظ على القفص في درجة حرارة الغرفة.عندما يمكن رؤية الأجنة كنقاط بيضاء صغيرة، تصبح جاهزة للجمع. ولحصد الأجنة، قم بتهدئة الذباب عن طريق وضع القفص في غرفة باردة لمدة تصل إلى 30 دقيقة. جهز الحاوية البلاستيكية وغذاء الذباب للدورة التالية.بعد ذلك، في صينية أوتوكلاف سعة ثمانية لترات، أضف الماء حتى ربع السعة الإجمالية وأضف 1 mL من Triton X-100 بتركيز 10%. وبينما يكون القفص في الغرفة الباردة، قم بإزالة لوحة المولاس بعناية وضعها داخل كيس النفايات البيولوجية الخطرة. أخرج الصينية من الكيس واغمرها بسرعة في محلول المنظف الموجود في صينية الأوتوكلاف، ثم أغلق كيس النفايات البيولوجية الخطرة وضع الكيس في حاوية النفايات البيولوجية الخطرة.استخدم مسدس مياه مقطرة لغسل الأجنة والخميرة وإزالتها من الدبس. تخلص من الأطباق والدبس في حاوية النفايات البيولوجية الخطرة. صب المحلول بعناية عبر مجموعة مناخل ثلاثية.اغسل التكتلات الموجودة في المستوى العلوي باستخدام مسدس المياه المقطرة حتى تختفي جميع التكتلات. اشطف صينية الموصدة (autoclave) بالماء المقطر، وصب مياه الشطف عبر المناخل. ثم قم بإزالة المنخل العلوي.سيبقى معظم يرقات الطور الأول وجميع يرقات الطور الثاني في المنخل 40. قم بإزالة المنخل الثاني. المادة الصفراء في المنخل الثالث هي مزيج من الأجنة ويرقات الطور الأول الصغيرة.استخدم مسدس المياه المقطرة لنقل جميع البيوض إلى جانب واحد من المنخل. ثم اجمعها باستخدام ملعقة مسطحة وقم بوزنها. استخدم 1.5 grams لبدء دورة جديدة.استخدم بقية الأجنة لمزيد من المعالجة أو تخلص منها. تم جمع ست دورات متتالية من مادة بداية وزنها 1.5 grams، وأنتجت متوسط 10 grams من الأجنة واليرقات لكل دورة.تظهر النتائج الخاصة بخمس عمليات جمع متتالية بعد ساعة واحدة من إضافة غذاء جديد، وثلاث عمليات جمع متتالية بعد ثلاث ساعات من وضع طبق دبس سكر جديد. بعد مشاهدة هذا الفيديو، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية تنظيم مستنبت، وهو مجتمع من ذباب Drosophila melanogaster، باستخدام قفص مجتمعات الذباب.

maintenance-of-a-drosophila-melanogaster-population-cage

Research

JoVE Journal

Biology

علم الأحياء

يستخدم العلماء بروتوكول ذبابة الفاكهة لقياس كيفية تأثير الظروف التجريبية المختلفة على طول عمر الذباب وتوليد منحنيات البقاء على قيد الحياة في عملية تحديد النتائج التجريبية. يتميز بروتوكول العينة بالاختبار الذي يتم تطبيقه لدراسة التأثيرات على طول العمر من التعرض لتركيزات متفاوتة من المواد الكيميائية المسببة لاضطراب الغدد الصماء ، أو EDCs ، مثل 17-α-ethinylestradiol (EE2).

بروتوكول العمر الافتراضي لذبابة الفاكهة السوداء: توليد منحنيات البقاء على قيد الحياة لتحديد الاختلافات في طول عمر الذبابة

ذبابة الفاكهة السوداء البطن هي مفيدة في دراسة التلاعب الجيني أو البيئية التي تؤثر على السلوكيات مثل النشاط الحركي العفوي. نحن هنا وصف البروتوكول الذي يستخدم شاشات الأشعة تحت الحمراء مع الحزم والبرامج وتحليل البيانات لقياس النشاط الحركي العفوي.

تحديد العفوي الحركي آخر في<em&gt; ذبابة الفاكهة السوداء البطن</em

من أجل تحديد الطفرات الجديدة التي تؤثر على الإحساس الميكانيكي ، قمنا بتصميم اختبار يقيس الاستجابة السلوكية للتحفيز اللمسي لشعيرات الذباب في المستنسخة الطافرة الناتجة عن طريقة MARCM. يسمح الجمع بين التقنيات بتحديد الطفرات الحساسة للميكانيكا التي قد تكون قاتلة.

النسخ في والسلوكية الفحص لMechanosensation من MARCM المستندة<em&gt; ذبابة الفاكهة السوداء البطن</em

تم توضيح طريقة لتربية ذبابة الفاكهة في ظل ظروف ممحوضة ومعروف المعايشات. وdechorionated يطير الأجنة في هيبوكلوريت الصوديوم، نقل جو معقم و مطهر لنظام غذائي العقيمة، وتربى في حاويات مغلقة. بتلقيح النظام الغذائي والأجنة مع البكتيريا يؤدي إلى الجمعيات معروف المعايشات، ويتم التأكد من وجود البكتيريا عن طريق طلاء كامل الجسم الخليط ذبابة الفاكهة.

تربية ذبابة الفاكهة<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; تحت ممحوضة ومعروف المعايشات شروط

ويصف هذا البروتوكول طرائق فضح شفويا وتصيب ذبابة الفاكهة المورفولوجية ميلانوجاستيr مع مسببات الأمراض البكتيرية، وقياس عدد تسليط البكتيريا المعدية عقب الإصابة بالقناة الهضمية. نحن كذلك وصف تأثير طفرات محصنة في بقاء يطير بعد العدوى البكتيرية عن طريق الفم.

شفوي من العدوى البكتيرية وإلقاء في melanogaster المورفولوجية

والهدف العام لهذه الإجراءات هو إنشاء وصيانة وتحديث عدد سكانها اريستاليس تيناكس الأسير في إعداد بحوث.

تربية والصيانة الطويلة الأجل من هوفيرفليس تيناكس اريستاليس "البحوث والدراسات"

وتمثل المواد الكيميائية المسببة لاضطرابات الغدد الصماء مشكلة خطيرة بالنسبة للكائنات الحية والبيئات الطبيعية. Drosophila الميلانوغاستر يمثل نموذجا مثاليا لدراسة آثار EDC في الجسم الحي. هنا، نقدم أساليب للتحقيق في اضطراب الغدد الصماء في Drosophila، ومعالجة آثار EDC على الخصوبة والخصوبة وتوقيت النمو، وعمر الذبابة.

طرق لاختبار اضطراب الغدد الصماء في الميلانوجاستر Drosophila

تم تصميم هذا البروتوكول لتقييم صلاحية دروسوفيلا في كل مرحلة من مراحل النمو، من الجنين إلى الكبار. ويمكن استخدام هذه الطريقة لتحديد ومقارنة صلاحية مختلف الأنماط الجينية أو ظروف النمو.

طريقة مباشرة وبسيطة لتقييم قدرة دروسوفيلا ميلانوغاسترعلى البقاء من الجنين إلى الكبار

نحن في هذه المقالة شرح كيفية تشريح الجهاز العصبي المركزي يرقات ذبابة الفاكهة من المركز الثالث طور مرحلي.

تشريح الجهاز العصبي المركزي اليرقات في Melanogaster ذبابة الفاكهة

دراسة السلوك الحركي المعقد...

عالية الدقة تعقب الفيديو للتنقل في الكبار ذبابة الفاكهة السوداء البطن

تعلم بروتوكول صيانة قفص ذبابة الفاكهة لإنتاج كميات كبيرة من الأجنة واليرقات من Drosophila melanogaster. هذه الطريقة تسهل جمع المواد البيولوجية للتجارب الجزيئية والكيميائية الحيوية بكفاءة عالية.

صيانة

استكشف المزيد من الفيديوهات