مايو 18, 2016
هنا، يتم وصف بروتوكول لموسم الحصاد وصيانة وعلاج الماوس organoids الأمعاء الصغيرة مع الممرض المرتبطة أنماط الجزيئية (PAMPs) والمستوحدة الليستيريا، وكذلك التركيز على التعبير الجيني وتقنيات التطبيع المناسبة للبروتين.
الهدف العام من هذا الإجراء هو قياس تأثيرات التحدي الممرض على عضوانيات الأمعاء الدقيقة، مع التركيز على تقنيات التسوية مقابل العدد الإجمالي للخلايا. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على أسئلة رئيسية في مجالات المناعة الفطرية والمخاطية من خلال توفير وسيلة لاستقصاء تفاعلات المضيف والممرض للبكتيريا مع الخلايا الظهارية المعوية في المختبر. ومن الضروري في هذا الإجراء استخدام طريقة التسوية مقابل العدد الإجمالي للخلايا، وهو أمر ضروري عند قياس البروتينات التي تفرزها العضوانيات عبر تقنيات مثل ELISA. لحصاد خبايا الأمعاء الدقيقة للفئران من أجل زراعة العضوانيات، ابدأ باستخدام شريحة زجاجية معقمة لكشط الزغابات بلطف من السطح اللمعي للأمعاء الدقيقة. بعد ذلك، استخدم مقص تشريح لقطع الأنسجة إلى شرائط بطول 1-2 سنتيمتر. وضع الشرائط في أنبوب مخروطي سعة 50 milliliter يحتوي على 10 milliliters من PBS بارد جداً. اخلط المحتويات عن طريق القلب اللطيف واترك محتويات الأنسجة تترسب في قاع الأنبوب. ثم، اشفط PBS واغسل الشرائط ثلاث مرات إضافية في 10 milliliters من PBS طازج، في كل مرة بنفس الطريقة. في نهاية الغسلة الأخيرة، ضع الأنبوب على الجليد لمدة عشر دقائق. بعد ذلك، استبدل PBS بـ 25 milliliters من PBS مدعم بـ 2 millimolar EDTA، في دلو ثلج على منصة هزازة لمدة 45 دقيقة. في نهاية الحضانة، اترك شرائط الأنسجة تترسب في قاع الأنبوب واستبدل PBS-EDTA بـ 10 milliliters من PBS مدعم بـ 10%FBS. رج الأنبوب بقوة يدوياً عشر مرات. ثم، اترك الأنسجة تترسب في قاع الأنبوب وانقل الطافي إلى أنبوب مخروطي سعة 15 milliliter موصوم بـ "الكسر 1". قم برج الأنسجة في PBS FBS خمس مرات إضافية، مع نقل الطافي إلى أنبوب كسر جديد في كل مرة. بعد الرج الأخير، قم بطرد مركزي لجميع العينات وأعد تعليق الرواسب في خمسة milliliters من DMEM/F12 المسخن مسبقاً بدون عوامل نمو مضافة. الآن، قم بتدوير العينات مرة أخرى واشفط أربعة milliliters من الطافي من كل أنبوب. أعد تعليق الرواسب في المليلتر الأخير المتبقي من الوسط واستخدم حصصاً مقدارها 20 microliter من كل كسر لمعاينة الخبايا والحطام على شرائح زجاجية. بعد تجميع الكسور المناسبة لتحقيق أعلى نسبة من الخبايا إلى الحطام، قم بطرد مركزي للكسور المجمعة واشفط كل الطافي باستثناء آخر 50-100 microliters. مع إبقاء الأنابيب على الجليد، أضف 1 milliliter من مصفوفة البروتين إلى الكسور المجمعة، مع السحب والدفع بالماصة ببطء لمنع إضافة فقاعات الهواء. ثم، أضف 50 microliters من معلق مصفوفة البروتين/الخبايا في منتصف كل بئر من 37
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تصف هذه المقالة بروتوكولاً لحصاد العضويات المعوية الصغيرة للفئران والحفاظ عليها ومعالجتها باستخدام الأنماط الجزيئية المرتبطة بالممرضات (PAMPs) وبكتيريا Listeria monocytogenes. كما تركز المقالة على التعبير الجيني وتقنيات التنميط الصحيحة لتحليل البروتين.
توفر العضوانيات المعوية للفئران المستخرجة خارج الجسم (Ex vivo mouse intestinal organoids) نظاماً ذا صلة فسيولوجية لاستقصاء التفاعلات بين المضيف والممرض وإشارات المناعة الفطرية في الأنسجة المخاطية. ويعالج تركيز البروتوكول على المعايرة مقابل العدد الإجمالي للخلايا تحدياً حرجاً في توليد بيانات كمية قابلة للتكرار من مستنبتات العضوانيات غير المتجانسة. وتدعم هذه القدرة الثقة التنبؤية في مراحل الاكتشاف المبكر والتحقق من الأهداف للبرامج العلاجية التي تركز على المناعة والميكروبيوم.
يتكامل هذا البروتوكول ضمن سلسلة عمليات الاكتشاف، بدءاً من اختبار الفرضيات الأولية وصولاً إلى تحديد المركبات الواعدة والتحقق قبل السريري لبرامج المناعة المخاطية وتفاعلات المضيف والميكروبات.