-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
السريع العصبية تمايز الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات لقياس نشاط الشبكة على المصفوفات الدق...
السريع العصبية تمايز الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات لقياس نشاط الشبكة على المصفوفات الدق...
JoVE Journal
Developmental Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Developmental Biology
Rapid Neuronal Differentiation of Induced Pluripotent Stem Cells for Measuring Network Activity on Micro-electrode Arrays

السريع العصبية تمايز الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات لقياس نشاط الشبكة على المصفوفات الدقيقة الكهربائي

Full Text
27,717 Views
09:20 min
January 8, 2017

DOI: 10.3791/54900-v

Monica Frega*1,2, Sebastianus H. C. van Gestel*3, Katrin Linda2,3, Jori van der Raadt3, Jason Keller1,2, Jon-Ruben Van Rhijn1,2, Dirk Schubert1,2, Cornelis A. Albers2,3,4, Nael Nadif Kasri1,2,3

1Department of Cognitive Neurosciences,Radboudumc, 2Donders Institute for Brain, Cognition and Behaviour,Radboud University, 3Department of Human Genetics,Radboudumc, 4Department of Molecular Developmental Biology,Radboud University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

نحن تعديل وتنفيذ بروتوكول نشرت سابقا تصف التمايز السريع، واستنساخه، وكفاءة الناجمة عن النشاط البشري الخلايا الجذعية المحفزة (hiPSCs) في العصبونات القشرية مثير 12. على وجه التحديد، لدينا التعديل يسمح للسيطرة على كثافة الخلايا العصبية واستخدامها في صفائف الكهربائي الصغير لقياس الخصائص الكهربية على مستوى الشبكة.

الهدف العام من بروتوكول التمايز العصبي هذا هو إنشاء شبكات عصبية من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان والتي تنمو على مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة بطريقة سريعة وخاضعة للرقابة. يمكن استخدام هذه الطريقة لمعالجة الأسئلة الرئيسية في مجالات علم الأعصاب. يمكن استخدامه لدراسة الآليات البيولوجية الكامنة وراء الاضطرابات العصبية ، ولكن يمكن استخدامه أيضا لمعالجة الأسئلة العصبية الحيوية الأساسية.

الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي التمايز السريع للخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات إلى خلايا عصبية بطريقة خاضعة للرقابة. في اليوم الأول ، قم بتسخين DMEM / F12 و CDS و E8 مع 1٪ بنسلين ستربتومايسين إلى درجة حرارة الغرفة. بعد ذلك ، أضف الدوكسيسيكلين إلى وسط E8 لعمل تركيز نهائي يبلغ أربعة ميكروغرام لكل مليلتر ثم أضف مثبط الصخور إلى الخليط.

استنشق الوسط المستهلك من RTTANGN2 hiPSCs الإيجابية وأضف ملليلتر واحد من CDS إلى الخلايا. بعد ذلك ، قم باحتضان الخلايا لمدة ثلاث إلى خمس دقائق في حاضنة رطبة بدرجة حرارة 37 درجة مئوية. تحت المجهر ، تحقق مما إذا كانت الخلايا تنفصل عن بعضها البعض.

ثم أضف ملليلترين من DMEM / F12 في البئر. قم بتعليق الخلايا برفق باستخدام ماصة سعة 1 ، 000 ميكرولتر ، ثم انقلها إلى أنبوب سعة 15 مل. بعد ذلك ، أضف سبعة ملليلتر من DMEM / F12 إلى تعليق الخلية ، وقم بتدوير الخلايا عند 200 × جم لمدة خمس دقائق.

بعد خمس دقائق ، استنشق المادة الطافية وأضف ملليلترين من وسط E8 المحضر. قم بفصل hiPSCs عن طريق وضع طرف ماصة سعة 1,000 ميكرولتر على جانب الأنبوب سعة 15 ملليلتر وإعادة تعليق الخلايا برفق. تحت المجهر ، تحقق مما إذا كانت الخلايا منفصلة.

ثم حدد عدد الخلايا لكل مليلتر باستخدام مقياس كثافة الدم. بالنسبة للبئر الستة MEAs ، قم بتخفيف الخلايا للحصول على تعليق خلوي 7.5 في 10 إلى الخلايا الخامسة لكل مليلتر. بالنسبة لزلات الغطاء ، قم بتخفيف الخلايا للحصول على تعليق خلوي أربعة أضعاف 10 إلى الخلايا الرابعة لكل مليلتر.

استنشق اللامينين المخفف من زلات الغطاء والبئر الستة MEAs. بالنسبة للبئر الستة MEAs ، قم بإضافة 100 ميكرولتر من تعليق الخلية إلى منطقة القطب النشط في كل بئر. ثم قم بلوحة الخلايا عن طريق إضافة 500 ميكرولتر من تعليق الخلية إلى كل بئر من لوحة 24 بئر.

بعد ذلك ، ضع ستة بئر MEAs أو صفيحة 24 بئر في حاضنة رطبة 37 درجة مئوية. بعد ساعتين ، أضف بعناية 500 ميكرولتر من وسط E8 المحضر إلى كل بئر من المتوسطات المتوسطة الستة للآبار. بعد ذلك ، ضع الآبار الستة MEAs طوال الليل في حاضنة رطبة بدرجة حرارة 37 درجة مئوية.

في اليوم الثالث ، قم بتسخين 0.05٪ Trypsin-EDTA إلى درجة حرارة الغرفة. DPBS دافئ و DMEM / F12 مع 1٪ بنسلين ستربتومايسين حتى 37 درجة مئوية. ثم استنشق الوسط المستهلك لثقافة الخلايا النجمية للفئران.

اغسل المزرعة بإضافة خمسة ملليلتر من DPBS وحركها برفق. بعد ذلك ، استنشق DPBS وأضف خمسة ملليلتر من 0.05٪ تريبسين-EDTA. حفي التربسين EDTA برفق.

ثم احتضان الخلايا في حاضنة رطبة بدرجة حرارة 37 درجة مئوية لمدة خمس إلى 10 دقائق. بعد ذلك ، تحقق تحت المجهر لفحص ما إذا كانت الخلايا منفصلة. افصل الخلايا الأخيرة عن طريق ضرب القارورة عدة مرات.

ثم أضف خمسة ملليلتر من DMEM / F12 إلى القارورة. حاول تقييم الخلايا برفق داخل القارورة باستخدام ماصة سعة 10 ملليلتر. بعد ذلك ، اجمع تعليق الخلية في أنبوب سعة 15 مل.

قم بتدوير الأنبوب عند 200 × جم لمدة ثماني دقائق. بعد ذلك ، استنشق الفوق ، وأعد تعليق الخلايا في مليلتر واحد من DMEM / F12. حدد عدد الخلايا لكل مليلتر باستخدام مقياس كثافة الدم.

بعد ذلك ، أضف 7.5 في 10 إلى الخلايا النجمية الرابعة إلى كل بئر من المتوسطات المتوسطة المتوسط الستة للآبار. وأضف اثنين في 10 إلى الخلايا النجمية الرابعة إلى كل بئر من صفيحة 24 بئر. احتضان الخلايا طوال الليل في حاضنة رطبة بزاوية 37 درجة مئوية.

احصل على البيانات عند تضخيم 1 ، 200 مرة ، وأخذ عينات من الإشارة عند 10 كيلو هرتز باستخدام بطاقة الحصول على بيانات MCS. سجل 20 دقيقة من النشاط الفيزيولوجي الكهربي للخلايا العصبية المشتقة من hiPSC المزروعة على المجالات المتعددة الأطراف. أثناء التسجيل ، حافظ على درجة الحرارة عند 37 درجة مئوية ، ومنع التبخر المتوسط وتغيرات الأس الهيدروجيني من خلال توفير تدفق بطيء مستمر للغاز المرطب إلى المناطق المتوسطة.

بعد ذلك ، قم بتحليل البيانات باستخدام حزمة برامج مخصصة. يوضح هذا الشكل تغيرات التعبير عن العلامات العصبية MAP2 في المشبك أثناء عملية التمايز ، مما يشير إلى نضوج الخلايا العصبية. يوضح هذا الرسم البياني أن تعبير synapsin يتم قياسه للخلايا الفردية التي زادت أثناء عملية التمايز.

المشابك التي يتم التعبير عنها في الخلايا بعد ثلاثة أسابيع من التمايز موضعية مع PSD-95 ، مما يشير إلى وجود نقاط الاشتباك العصبي الوظيفية. هنا ، تم إجراء مشبك رقعة الخلية بالكامل في نقاط زمنية مختلفة أثناء عملية التمايز لقياس النشاط الفيزيولوجي الكهربي للخلايا. كانت الخلايا قادرة على توليد إمكانات الفعل في نقاط زمنية مختلفة.

وتظهر النسبة المئوية للخلايا المتصاعدة التي زادت بمرور الوقت أن غالبية الخلايا قادرة على توليد إمكانات عمل ، حتى في المرحلة المبكرة من التمايز. تم استخدام مشبك التصحيح أيضا لقياس التيارات المثيرة بعد المشبكي التي تتلقاها الخلايا. زاد عدد المدخلات التي تتلقاها الخلايا أثناء عملية التمايز.

زاد كل من تردد وسعة التيارات المثيرة بعد المشبكي أثناء عملية التمايز. تم قياس النشاط الفيزيولوجي الكهربي للخلايا المتمايزة على مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة أثناء عملية التمايز. هنا ، زاد نشاط الشبكة العصبية أثناء عملية التمايز ، وأظهر أحداثا متزامنة بعد 23 يوما.

بمجرد إتقانها ، يمكن استخدام هذه التقنية لتمييز الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات إلى شبكات عصبية وظيفية في غضون ثلاثة إلى أربعة أسابيع. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر العمل المعقم ومعالجة الخلايا بلطف. بعد هذا الإجراء ، يمكن استخدام طرق أخرى مثل الاختبارات الدوائية لإنقاذ النمط الظاهري ، الذي لوحظ في خطوط خلايا المرضى.

بعد تطويرها ، مهدت هذه التقنية الطريق للباحثين في مجال علم الأعصاب لدراسة عيوب نشاط الشبكة رسميا في الاضطرابات العصبية. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية التفريق ، وتحفيز الخلايا الجذعية متعددة القدرات في الخلايا العصبية بطريقة سريعة وخاضعة للرقابة.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأحياء التنموي العدد 119 التي يسببها الخلايا الجذعية المحفزة تمايز الخلايا العصبية صفائف الكهربائي الصغير تنبيغ lentiviral والعزلة نجمية شبكة العصبية

Related Videos

كفاءة اشتقاق أسلاف الإنسان متعلق بالخلايا العصبية والخلايا العصبية من افرة القوة الخلايا الجذعية الجنينية البشرية التعريفي مع جزيء صغير

10:47

كفاءة اشتقاق أسلاف الإنسان متعلق بالخلايا العصبية والخلايا العصبية من افرة القوة الخلايا الجذعية الجنينية البشرية التعريفي مع جزيء صغير

Related Videos

15.7K Views

تمييز الخلايا الجذعية متعددة القدرات المستحثة من قبل الإنسان إلى خلايا عصبية على مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة

04:33

تمييز الخلايا الجذعية متعددة القدرات المستحثة من قبل الإنسان إلى خلايا عصبية على مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة

Related Videos

553 Views

قياس النشاط الفيزيولوجي الكهربي للشبكات العصبية باستخدام مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة

02:05

قياس النشاط الفيزيولوجي الكهربي للشبكات العصبية باستخدام مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة

Related Videos

460 Views

الكمي ثلاثي الأبعاد من شجيري العمود الفقري من الخلايا العصبية الهرمية المستمدة من صنع الإنسان المحفزة الخلايا الجذعية

10:18

الكمي ثلاثي الأبعاد من شجيري العمود الفقري من الخلايا العصبية الهرمية المستمدة من صنع الإنسان المحفزة الخلايا الجذعية

Related Videos

12.8K Views

بروتوكول لتمييز الخلايا الجذعية المحفزة البشرية المستحثة في الثقافات المختلطة من الخلايا العصبية والجلد للاختبار العصبي

09:02

بروتوكول لتمييز الخلايا الجذعية المحفزة البشرية المستحثة في الثقافات المختلطة من الخلايا العصبية والجلد للاختبار العصبي

Related Videos

24K Views

زيادة تعتمد على الوقت في استجابة الشبكة لتحفيز الثقافات خلية الخلايا العصبية على صفائف الدقيقة الكهربائي

10:45

زيادة تعتمد على الوقت في استجابة الشبكة لتحفيز الثقافات خلية الخلايا العصبية على صفائف الدقيقة الكهربائي

Related Videos

10.2K Views

إعادة طلاء الخلايا العصبية البشرية المتعددة القوى المستمدة من الخلايا الجذعية من أجل فحص المحتوى العالي من تكوين النيونيتوجينيووووووين ونضج المشبك

06:50

إعادة طلاء الخلايا العصبية البشرية المتعددة القوى المستمدة من الخلايا الجذعية من أجل فحص المحتوى العالي من تكوين النيونيتوجينيووووووين ونضج المشبك

Related Videos

9.9K Views

شبكات خلايا القلب المستمدة من iPSC البشرية على صفائف متعدد الأقطاب الكهربائية الصغيرة للتسجيلات المحتملة للعمل المتكرر

08:53

شبكات خلايا القلب المستمدة من iPSC البشرية على صفائف متعدد الأقطاب الكهربائية الصغيرة للتسجيلات المحتملة للعمل المتكرر

Related Videos

11.9K Views

إنشاء منصة فيزيولوجية كهربية لنمذجة ALS مع الخلايا النجمية والخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات الخاصة بالمنطقة

11:52

إنشاء منصة فيزيولوجية كهربية لنمذجة ALS مع الخلايا النجمية والخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات الخاصة بالمنطقة

Related Videos

2.6K Views

تحليل التدفق الخلوي لمعلمات الميتوكوندريا المتعددة في الخلايا الجذعية متعددة القدرات المستحثة بالإنسان ومشتقاتها العصبية والدبقية

06:09

تحليل التدفق الخلوي لمعلمات الميتوكوندريا المتعددة في الخلايا الجذعية متعددة القدرات المستحثة بالإنسان ومشتقاتها العصبية والدبقية

Related Videos

4.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code