التعبير الجيني هو العملية التي يتم فيها استخدام المعلومات الموجودة في الحمض النووي للخلية لصنع منتجات وظيفية. يتم تنظيم هذا الإجراء المنظم بعناية على عدة مراحل ، ويمكن أن يؤدي سوء التنظيم في كثير من الأحيان إلى أمراض مثل السرطان.
يقدم هذا الفيديو نظرة عامة على تاريخ أبحاث التعبير الجيني ، والأسئلة الرئيسية ، والأساليب في هذا المجال ، وكيفية تطبيق هذه التقنيات.
سنبدأ بمراجعة بعض الاكتشافات الرئيسية حول التعبير الجيني.
تم إنشاء أول نموذج مقنع لكيفية حمل الحمض النووي للمعلومات الجينية في عام 1953 ، عندما قام فرانسيس كريك وجيمس واتسون ، بمساعدة بيانات روزاليند فرانكلين ، بحل بنية الحمض النووي - وهو حلزون مزدوج مصنوع من سلسلتين خطيتين من قواعد النيوكليوتيدات مرتبة في تسلسل محدد ، ولكن متغير بلا حدود.
بعد خمس سنوات ، اقترح كريك فكرتين مهمتين من شأنهما أن تشكلا العمود الفقري لفهمنا للتعبير الجيني. اقترحت "فرضية التسلسل" الخاصة به أن تسلسل النيوكليوتيدات للحمض النووي يستخدم ، عبر وسيط RNA غير مستقر ، كرمز لتسلسل الأحماض الأمينية للبروتينات. في الوقت نفسه ، افترضت "عقيدته المركزية" التدفقات المختلفة للمعلومات الجينية التي يمكن أن تحدث ، وعلى وجه الخصوص ، رأت أنه لا يمكن نقل المعلومات من البروتين إلى الأحماض النووية.
في عام 1960 ، اقترح فرانسوا جاكوب وجاك مونود - من خلال عملهما على جينات استقلاب اللاكتوز في البكتيريا - نموذجا لتنظيم التعبير الجيني. واقترحوا أن التعبير عن "الجينات الهيكلية" ، التي تؤدي وظائف هيكلية أو إنزيمية ، يتم التحكم فيه بواسطة منتجات "الجينات التنظيمية" التي ترتبط بالمواقع التنظيمية المجاورة. نحن نعلم الآن أن الأنماط المتشابهة إلى حد كبير لتنظيم الجينات ، بوساطة بروتينات تسمى عوامل النسخ ، تحدث في جميع الكائنات الحية.
بعد عام ، في عام 1961 ، اكتشف جاكوب - جنبا إلى جنب مع سيدني برينر - رسول أو "m"-RNA باعتباره الوسيط غير المستقر بين الحمض النووي والبروتينات التي اقترحها كريك. في نفس العام ، بدأ برينر وكريك في كسر "الشفرة الجينية" ، التي تملي كيفية تشفير المعلومات الموجودة في الحمض النووي للبروتينات. قرروا أن كل ثلاثة توائم من النيوكليوتيدات المجاورة ، أو "الكودون" ، تحدد أحد الأحماض الأمينية العشرين التي تشكل البروتينات.
على مدى السنوات القليلة التالية ، استخدم الباحثون بقيادة مارشال نيرنبرغ وهار جوبيند خورانا وسيفيرو أوتشوا طرقا متعددة لتحديد الأحماض الأمينية المشفرة بواسطة جميع الكودون البالغ عددها 64 كودون. مع تكسير الشفرة الجينية ، واصل العلماء التحقيق في كيفية تنظيم التعبير الجيني.
جاء اكتشاف كبير في عام 1974 ، عندما أظهر روجر كورنبرغ وزملاؤه أن الحمض النووي في الخلايا حقيقية النواة ، مثل خلايا والنباتات ، "ملفوف" حول مجمعات من بروتينات الهيستون ، مما ينتج عنه هياكل تسمى الآن "النيوكليوسومات". نحن نعلم الآن أن التغييرات في بنية الكروماتين تلعب أدوارا مهمة في تنظيم الجينات.
جاء تطور آخر في عام 1977 ، عندما وجد شارب وريتش روبرتس أن تسلسل الحمض النووي المرسال لم يكن مكملا تماما لقوالب الحمض النووي المقابلة لهما. تتم إزالة بعض "المناطق المفقودة" ، التي تسمى الآن الإنترونات ، من بين إكسونات ترميز البروتين في نسخة الحمض النووي الريبي الناضجة في عملية تعرف باسم "الربط". بعد خمس سنوات ، أظهرت مجموعة البحث التابعة لرونالد إيفانز أن التضفير "البديل" لنفس النص يمكن أن ينتج متغيرات ، أو "أشكال إسوية" من نفس البروتين بوظائف مختلفة.
منذ التسعينيات ، توسع فهمنا لتعقيد شبكات تنظيم الجينات بشكل كبير مع اكتشاف إسكات الجينات بوساطة الحمض النووي الريبي. نحن نعلم الآن أن عدة عائلات مختلفة من الحمض النووي الريبي الصغير ، مع أعضاء يتراوح حجمهم بين 20 و 30 نيوكليوتيد ، تنظم التعبير الجيني بعدة طرق.
بعد مراجعة تاريخ أبحاث التعبير الجيني ، دعنا نلقي نظرة على بعض الأسئلة الرئيسية في هذا المجال.
أحد الموضوعات التي يتم التحقيق فيها هو كيفية تنظيم عوامل النسخ للجينات. لا يهتم العلماء فقط بتحديد التسلسلات الجينومية المرتبطة بعوامل النسخ ، ولكنهم يبحثون أيضا في كيفية تفاعل البروتينات التنظيمية مع بعضها البعض لدمج الإشارات وتنظيم التعبير الجيني.
يدرس باحثون آخرون التضفير البديل ، وكيف يتم تنظيم هذه العملية في سياقات بيولوجية مختلفة. بالإضافة إلى ذلك ، يحاول بعضهم تحديد ما إذا كانت الأشكال الإسوية للبروتين لها دائما وظائف مختلفة ومتميزة.
أخيرا ، يبحث العديد من الباحثين في آلية عمل الحمض النووي الريبي الصغير ، ويحاولون تحديد أهدافهم التنظيمية. هناك أيضا اهتمام متزايد بما إذا كان يمكن استخدام الحمض النووي الريبي الصغير ك "مؤشرات حيوية" لتشخيص الأمراض.
الآن ، دعونا نلقي نظرة على الأدوات التي يستخدمها الباحثون لتقييم التعبير الجيني.
الطريقة الشائعة هي النسخ العكسي ، أو "RT"-PCR ، والتي تحول الحمض النووي الريبي إلى حمض نووي تكميلي أو "c" قبل تعريضه للتضخيم. من خلال تضمين جزيئات الفلورسنت التي يتم دمجها في الحمض النووي أثناء تفاعل البوليميراز المتسلسل ، من الممكن استخدام هذه التقنية لقياس التعبير الجيني كميا ومراقبة النتائج في "الوقت الفعلي".
لتقييم التعبير عن آلاف الجينات في وقت واحد ، يمكن استخدام المصفوفات الدقيقة في نفس الوقت. هنا ، يتم "طباعة" تسلسل الحمض النووي على الشرائح ، والتي يتم تهجينها بعد ذلك إلى مجسات الفلورسنت المتولدة من عينة الحمض النووي الريبي. يمكن استخدام النمط الناتج من التألق لتحديد الجينات المعبر عنها.
هناك تقنية أخرى لتعريف التعبير الجيني وهي تسلسل النسخ ، أو كل الحمض النووي الريبي المعبر عنه في الخلية. هنا ، يخضع (كدنا) المتولد من عينات الحمض النووي الريبي لتسلسل عالي الإنتاجية. على عكس المصفوفات الدقيقة ، لا يتطلب تسلسل النسخ معلومات جينومية موجودة مسبقا ، ويمكن استخدامه لتحديد النصوص غير المعروفة أو الأشكال الإسوية الجينية الجديدة.
يمكن للباحثين أيضا تقييم مكان التعبير عن الجين بصريا باستخدام في الموقع التهجين. في هذه التقنية ، يتم تهجين الحمض النووي الريبي أولا باستخدام مجسات تكميلية ، والتي يمكن التعرف عليها بعد ذلك بواسطة الأجسام المضادة المترافقة بالإنزيم التي تنتج لونا مرئيا أو إشارة مضانة.
مقايسة المراسل هي تقنية أخرى يمكن أن توفر نظرة ثاقبة لتنظيم الجينات. يولد منتج الجين المراسل إشارة مثل اللون أو التألق. قد يندمج المراسل مباشرة في جين محل اهتمام ، أو يتم وضعه تحت سيطرة تسلسل تنظيمي ، مثل المحفز الذي يقود نسخ الجين ، أو عنصر محسن بعيد. يمكن أن تعمل إشارة المراسل بعد ذلك كقراءات لنشاط العنصر التنظيمي ، أو نمط التعبير عن الجين محل الاهتمام.
أخيرا ، يمكن استخدام ترسيب الكروماتين المناعي أو "ChIP" لتحديد المواقع الجينومية التي ترتبط بها عوامل النسخ عند تنظيم التعبير الجيني. هنا ، يتم عزل مجمعات البروتينات والحمض النووي الذي تربطه بواسطة الأجسام المضادة ، ويتم تحديد الحمض النووي المستهدف عن طريق تفاعل البوليميراز المتسلسل أو التسلسل.
بعد مسح طرق دراسة التعبير الجيني ، دعونا نلقي نظرة على بعض تطبيقاتها.
قد تظهر الخلايا داخل مجموعة سكانية اختلافات طفيفة في التعبير الجيني يمكن أن يكون لها عواقب بيولوجية. في هذه الدراسة ، وضع الباحثون الخلايا الجذعية الجنينية البشرية الفردية من نفس الثقافة في آبار منفصلة على طبق. باستخدام RT-PCR الكمي ، قرر العلماء أن تعبير Nanog - "علامة" للخلايا الجذعية - يختلف داخل العينة.
يبحث بعض الباحثين فيما إذا كانت الأشكال الإسوية المختلفة للبروتينات التنظيمية تعمل بشكل مختلف. هنا ، تم تطبيق ChIP على الخلايا المناعية البشرية لتحديد أهداف الربط للأشكال الإسوية "الطويلة" و "القصيرة" للبروتين. أظهرت نتائج التسلسل أن بعض أهداف الجينات لم يتم التعرف عليها إلا من خلال الشكل الإسوي القصير ، مما يشير إلى الاختلافات الوظيفية المحتملة.
أخيرا ، يمكن استخدام فحوصات المراسل لتقييم تنظيم الجينات بوساطة الحمض النووي الريبي الصغير ، مثل microRNAs. نظرا لأن microRNAs يمكن أن تمنع التعبير الجيني عن طريق الارتباط بمناطق 3 ¢ غير مترجمة من mRNAs ، فقد ربط العلماء هذه المنطقة من جينات مختلفة بمراسل لوسيفيراز ، وقدموا كل منها في الخلايا جنبا إلى جنب مع microRNA. ثم تم تحديد الأهداف الجينية للحمض النووي الريبي الصغير من خلال البحث عن الخلايا ذات إشارة التلألؤ المنخفضة.
لقد شاهدت للتو مقدمة JoVE للتعبير الجيني. لقد راجعنا النتائج الرئيسية في أبحاث التعبير الجيني ، والأسئلة والأساليب البارزة في هذا المجال ، وبعض التطبيقات الحالية. كما هو الحال دائما ، شكرا على المشاهدة!
التعبير الجيني هو العملية المعقدة حيث تستخدم الخلية معلوماتها الجينية لصنع منتجات وظيفية. يتم تنظيم هذه العملية على مراحل متعددة ، وأي سوء تنظيم يمكن…
التعبير الجيني هو العملية التي يتم فيها استخدام المعلومات الموجودة في الحمض النووي للخلية لصنع منتجات وظيفية. يتم تنظيم هذا الإجراء المنظم بعناية على عدة مراحل ، ويمكن أن يؤدي سوء التنظيم في كثير من الأحيان إلى أمراض مثل السرطان.
يقدم هذا الفيديو نظرة عامة على تاريخ أبحاث التعبير الجيني ، والأسئلة الرئيسية ، والأساليب في هذا المجال ، وكيفية تطبيق هذه التقنيات.
سنبدأ بمراجعة بعض الاكتشافات الرئيسية حول التعبير الجيني.
تم إنشاء أول نموذج مقنع لكيفية حمل الحمض النووي للمعلومات الجينية في عام 1953 ، عندما قام فرانسيس كريك وجيمس واتسون ، بمساعدة بيانات روزاليند فرانكلين ، بحل بنية الحمض النووي - وهو حلزون مزدوج مصنوع من سلسلتين خطيتين من قواعد النيوكليوتيدات مرتبة في تسلسل محدد ، ولكن متغير بلا حدود.
بعد خمس سنوات ، اقترح كريك فكرتين مهمتين من شأنهما أن تشكلا العمود الفقري لفهمنا للتعبير الجيني. اقترحت "فرضية التسلسل" الخاصة به أن تسلسل النيوكليوتيدات للحمض النووي يستخدم ، عبر وسيط RNA غير مستقر ، كرمز لتسلسل الأحماض الأمينية للبروتينات. في الوقت نفسه ، افترضت "عقيدته المركزية" التدفقات المختلفة للمعلومات الجينية التي يمكن أن تحدث ، وعلى وجه الخصوص ، رأت أنه لا يمكن نقل المعلومات من البروتين إلى الأحماض النووية.
في عام 1960 ، اقترح فرانسوا جاكوب وجاك مونود - من خلال عملهما على جينات استقلاب اللاكتوز في البكتيريا - نموذجا لتنظيم التعبير الجيني. واقترحوا أن التعبير عن "الجينات الهيكلية" ، التي تؤدي وظائف هيكلية أو إنزيمية ، يتم التحكم فيه بواسطة منتجات "الجينات التنظيمية" التي ترتبط بالمواقع التنظيمية المجاورة. نحن نعلم الآن أن الأنماط المتشابهة إلى حد كبير لتنظيم الجينات ، بوساطة بروتينات تسمى عوامل النسخ ، تحدث في جميع الكائنات الحية.
بعد عام ، في عام 1961 ، اكتشف جاكوب - جنبا إلى جنب مع سيدني برينر - رسول أو "m"-RNA باعتباره الوسيط غير المستقر بين الحمض النووي والبروتينات التي اقترحها كريك. في نفس العام ، بدأ برينر وكريك في كسر "الشفرة الجينية" ، التي تملي كيفية تشفير المعلومات الموجودة في الحمض النووي للبروتينات. قرروا أن كل ثلاثة توائم من النيوكليوتيدات المجاورة ، أو "الكودون" ، تحدد أحد الأحماض الأمينية العشرين التي تشكل البروتينات.
على مدى السنوات القليلة التالية ، استخدم الباحثون بقيادة مارشال نيرنبرغ وهار جوبيند خورانا وسيفيرو أوتشوا طرقا متعددة لتحديد الأحماض الأمينية المشفرة بواسطة جميع الكودون البالغ عددها 64 كودون. مع تكسير الشفرة الجينية ، واصل العلماء التحقيق في كيفية تنظيم التعبير الجيني.
جاء اكتشاف كبير في عام 1974 ، عندما أظهر روجر كورنبرغ وزملاؤه أن الحمض النووي في الخلايا حقيقية النواة ، مثل خلايا والنباتات ، "ملفوف" حول مجمعات من بروتينات الهيستون ، مما ينتج عنه هياكل تسمى الآن "النيوكليوسومات". نحن نعلم الآن أن التغييرات في بنية الكروماتين تلعب أدوارا مهمة في تنظيم الجينات.
جاء تطور آخر في عام 1977 ، عندما وجد شارب وريتش روبرتس أن تسلسل الحمض النووي المرسال لم يكن مكملا تماما لقوالب الحمض النووي المقابلة لهما. تتم إزالة بعض "المناطق المفقودة" ، التي تسمى الآن الإنترونات ، من بين إكسونات ترميز البروتين في نسخة الحمض النووي الريبي الناضجة في عملية تعرف باسم "الربط". بعد خمس سنوات ، أظهرت مجموعة البحث التابعة لرونالد إيفانز أن التضفير "البديل" لنفس النص يمكن أن ينتج متغيرات ، أو "أشكال إسوية" من نفس البروتين بوظائف مختلفة.
منذ التسعينيات ، توسع فهمنا لتعقيد شبكات تنظيم الجينات بشكل كبير مع اكتشاف إسكات الجينات بوساطة الحمض النووي الريبي. نحن نعلم الآن أن عدة عائلات مختلفة من الحمض النووي الريبي الصغير ، مع أعضاء يتراوح حجمهم بين 20 و 30 نيوكليوتيد ، تنظم التعبير الجيني بعدة طرق.
بعد مراجعة تاريخ أبحاث التعبير الجيني ، دعنا نلقي نظرة على بعض الأسئلة الرئيسية في هذا المجال.
أحد الموضوعات التي يتم التحقيق فيها هو كيفية تنظيم عوامل النسخ للجينات. لا يهتم العلماء فقط بتحديد التسلسلات الجينومية المرتبطة بعوامل النسخ ، ولكنهم يبحثون أيضا في كيفية تفاعل البروتينات التنظيمية مع بعضها البعض لدمج الإشارات وتنظيم التعبير الجيني.
يدرس باحثون آخرون التضفير البديل ، وكيف يتم تنظيم هذه العملية في سياقات بيولوجية مختلفة. بالإضافة إلى ذلك ، يحاول بعضهم تحديد ما إذا كانت الأشكال الإسوية للبروتين لها دائما وظائف مختلفة ومتميزة.
أخيرا ، يبحث العديد من الباحثين في آلية عمل الحمض النووي الريبي الصغير ، ويحاولون تحديد أهدافهم التنظيمية. هناك أيضا اهتمام متزايد بما إذا كان يمكن استخدام الحمض النووي الريبي الصغير ك "مؤشرات حيوية" لتشخيص الأمراض.
الآن ، دعونا نلقي نظرة على الأدوات التي يستخدمها الباحثون لتقييم التعبير الجيني.
الطريقة الشائعة هي النسخ العكسي ، أو "RT"-PCR ، والتي تحول الحمض النووي الريبي إلى حمض نووي تكميلي أو "c" قبل تعريضه للتضخيم. من خلال تضمين جزيئات الفلورسنت التي يتم دمجها في الحمض النووي أثناء تفاعل البوليميراز المتسلسل ، من الممكن استخدام هذه التقنية لقياس التعبير الجيني كميا ومراقبة النتائج في "الوقت الفعلي".
لتقييم التعبير عن آلاف الجينات في وقت واحد ، يمكن استخدام المصفوفات الدقيقة في نفس الوقت. هنا ، يتم "طباعة" تسلسل الحمض النووي على الشرائح ، والتي يتم تهجينها بعد ذلك إلى مجسات الفلورسنت المتولدة من عينة الحمض النووي الريبي. يمكن استخدام النمط الناتج من التألق لتحديد الجينات المعبر عنها.
هناك تقنية أخرى لتعريف التعبير الجيني وهي تسلسل النسخ ، أو كل الحمض النووي الريبي المعبر عنه في الخلية. هنا ، يخضع (كدنا) المتولد من عينات الحمض النووي الريبي لتسلسل عالي الإنتاجية. على عكس المصفوفات الدقيقة ، لا يتطلب تسلسل النسخ معلومات جينومية موجودة مسبقا ، ويمكن استخدامه لتحديد النصوص غير المعروفة أو الأشكال الإسوية الجينية الجديدة.
يمكن للباحثين أيضا تقييم مكان التعبير عن الجين بصريا باستخدام في الموقع التهجين. في هذه التقنية ، يتم تهجين الحمض النووي الريبي أولا باستخدام مجسات تكميلية ، والتي يمكن التعرف عليها بعد ذلك بواسطة الأجسام المضادة المترافقة بالإنزيم التي تنتج لونا مرئيا أو إشارة مضانة.
مقايسة المراسل هي تقنية أخرى يمكن أن توفر نظرة ثاقبة لتنظيم الجينات. يولد منتج الجين المراسل إشارة مثل اللون أو التألق. قد يندمج المراسل مباشرة في جين محل اهتمام ، أو يتم وضعه تحت سيطرة تسلسل تنظيمي ، مثل المحفز الذي يقود نسخ الجين ، أو عنصر محسن بعيد. يمكن أن تعمل إشارة المراسل بعد ذلك كقراءات لنشاط العنصر التنظيمي ، أو نمط التعبير عن الجين محل الاهتمام.
أخيرا ، يمكن استخدام ترسيب الكروماتين المناعي أو "ChIP" لتحديد المواقع الجينومية التي ترتبط بها عوامل النسخ عند تنظيم التعبير الجيني. هنا ، يتم عزل مجمعات البروتينات والحمض النووي الذي تربطه بواسطة الأجسام المضادة ، ويتم تحديد الحمض النووي المستهدف عن طريق تفاعل البوليميراز المتسلسل أو التسلسل.
بعد مسح طرق دراسة التعبير الجيني ، دعونا نلقي نظرة على بعض تطبيقاتها.
قد تظهر الخلايا داخل مجموعة سكانية اختلافات طفيفة في التعبير الجيني يمكن أن يكون لها عواقب بيولوجية. في هذه الدراسة ، وضع الباحثون الخلايا الجذعية الجنينية البشرية الفردية من نفس الثقافة في آبار منفصلة على طبق. باستخدام RT-PCR الكمي ، قرر العلماء أن تعبير Nanog - "علامة" للخلايا الجذعية - يختلف داخل العينة.
يبحث بعض الباحثين فيما إذا كانت الأشكال الإسوية المختلفة للبروتينات التنظيمية تعمل بشكل مختلف. هنا ، تم تطبيق ChIP على الخلايا المناعية البشرية لتحديد أهداف الربط للأشكال الإسوية "الطويلة" و "القصيرة" للبروتين. أظهرت نتائج التسلسل أن بعض أهداف الجينات لم يتم التعرف عليها إلا من خلال الشكل الإسوي القصير ، مما يشير إلى الاختلافات الوظيفية المحتملة.
أخيرا ، يمكن استخدام فحوصات المراسل لتقييم تنظيم الجينات بوساطة الحمض النووي الريبي الصغير ، مثل microRNAs. نظرا لأن microRNAs يمكن أن تمنع التعبير الجيني عن طريق الارتباط بمناطق 3 ¢ غير مترجمة من mRNAs ، فقد ربط العلماء هذه المنطقة من جينات مختلفة بمراسل لوسيفيراز ، وقدموا كل منها في الخلايا جنبا إلى جنب مع microRNA. ثم تم تحديد الأهداف الجينية للحمض النووي الريبي الصغير من خلال البحث عن الخلايا ذات إشارة التلألؤ المنخفضة.
لقد شاهدت للتو مقدمة JoVE للتعبير الجيني. لقد راجعنا النتائج الرئيسية في أبحاث التعبير الجيني ، والأسئلة والأساليب البارزة في هذا المجال ، وبعض التطبيقات الحالية. كما هو الحال دائما ، شكرا على المشاهدة!
التعبير الجيني هو العملية التي يتم فيها استخدام المعلومات الموجودة في الحمض النووي للخلية لصنع منتجات وظيفية. يتم تنظيم هذا الإجراء المنظم بعناية على عدة مراحل ، ويمكن أن يؤدي سوء التنظيم في كثير من الأحيان إلى أمراض مثل السرطان.
يقدم هذا الفيديو نظرة عامة على تاريخ أبحاث التعبير الجيني ، والأسئلة الرئيسية ، والأساليب في هذا المجال ، وكيفية تطبيق هذه التقنيات.
سنبدأ بمراجعة بعض الاكتشافات الرئيسية حول التعبير الجيني.
تم إنشاء أول نموذج مقنع لكيفية حمل الحمض النووي للمعلومات الجينية في عام 1953 ، عندما قام فرانسيس كريك وجيمس واتسون ، بمساعدة بيانات روزاليند فرانكلين ، بحل بنية الحمض النووي - وهو حلزون مزدوج مصنوع من سلسلتين خطيتين من قواعد النيوكليوتيدات مرتبة في تسلسل محدد ، ولكن متغير بلا حدود.
بعد خمس سنوات ، اقترح كريك فكرتين مهمتين من شأنهما أن تشكلا العمود الفقري لفهمنا للتعبير الجيني. اقترحت "فرضية التسلسل" الخاصة به أن تسلسل النيوكليوتيدات للحمض النووي يستخدم ، عبر وسيط RNA غير مستقر ، كرمز لتسلسل الأحماض الأمينية للبروتينات. في الوقت نفسه ، افترضت "عقيدته المركزية" التدفقات المختلفة للمعلومات الجينية التي يمكن أن تحدث ، وعلى وجه الخصوص ، رأت أنه لا يمكن نقل المعلومات من البروتين إلى الأحماض النووية.
في عام 1960 ، اقترح فرانسوا جاكوب وجاك مونود - من خلال عملهما على جينات استقلاب اللاكتوز في البكتيريا - نموذجا لتنظيم التعبير الجيني. واقترحوا أن التعبير عن "الجينات الهيكلية" ، التي تؤدي وظائف هيكلية أو إنزيمية ، يتم التحكم فيه بواسطة منتجات "الجينات التنظيمية" التي ترتبط بالمواقع التنظيمية المجاورة. نحن نعلم الآن أن الأنماط المتشابهة إلى حد كبير لتنظيم الجينات ، بوساطة بروتينات تسمى عوامل النسخ ، تحدث في جميع الكائنات الحية.
بعد عام ، في عام 1961 ، اكتشف جاكوب - جنبا إلى جنب مع سيدني برينر - رسول أو "m"-RNA باعتباره الوسيط غير المستقر بين الحمض النووي والبروتينات التي اقترحها كريك. في نفس العام ، بدأ برينر وكريك في كسر "الشفرة الجينية" ، التي تملي كيفية تشفير المعلومات الموجودة في الحمض النووي للبروتينات. قرروا أن كل ثلاثة توائم من النيوكليوتيدات المجاورة ، أو "الكودون" ، تحدد أحد الأحماض الأمينية العشرين التي تشكل البروتينات.
على مدى السنوات القليلة التالية ، استخدم الباحثون بقيادة مارشال نيرنبرغ وهار جوبيند خورانا وسيفيرو أوتشوا طرقا متعددة لتحديد الأحماض الأمينية المشفرة بواسطة جميع الكودون البالغ عددها 64 كودون. مع تكسير الشفرة الجينية ، واصل العلماء التحقيق في كيفية تنظيم التعبير الجيني.
جاء اكتشاف كبير في عام 1974 ، عندما أظهر روجر كورنبرغ وزملاؤه أن الحمض النووي في الخلايا حقيقية النواة ، مثل خلايا والنباتات ، "ملفوف" حول مجمعات من بروتينات الهيستون ، مما ينتج عنه هياكل تسمى الآن "النيوكليوسومات". نحن نعلم الآن أن التغييرات في بنية الكروماتين تلعب أدوارا مهمة في تنظيم الجينات.
جاء تطور آخر في عام 1977 ، عندما وجد شارب وريتش روبرتس أن تسلسل الحمض النووي المرسال لم يكن مكملا تماما لقوالب الحمض النووي المقابلة لهما. تتم إزالة بعض "المناطق المفقودة" ، التي تسمى الآن الإنترونات ، من بين إكسونات ترميز البروتين في نسخة الحمض النووي الريبي الناضجة في عملية تعرف باسم "الربط". بعد خمس سنوات ، أظهرت مجموعة البحث التابعة لرونالد إيفانز أن التضفير "البديل" لنفس النص يمكن أن ينتج متغيرات ، أو "أشكال إسوية" من نفس البروتين بوظائف مختلفة.
منذ التسعينيات ، توسع فهمنا لتعقيد شبكات تنظيم الجينات بشكل كبير مع اكتشاف إسكات الجينات بوساطة الحمض النووي الريبي. نحن نعلم الآن أن عدة عائلات مختلفة من الحمض النووي الريبي الصغير ، مع أعضاء يتراوح حجمهم بين 20 و 30 نيوكليوتيد ، تنظم التعبير الجيني بعدة طرق.
بعد مراجعة تاريخ أبحاث التعبير الجيني ، دعنا نلقي نظرة على بعض الأسئلة الرئيسية في هذا المجال.
أحد الموضوعات التي يتم التحقيق فيها هو كيفية تنظيم عوامل النسخ للجينات. لا يهتم العلماء فقط بتحديد التسلسلات الجينومية المرتبطة بعوامل النسخ ، ولكنهم يبحثون أيضا في كيفية تفاعل البروتينات التنظيمية مع بعضها البعض لدمج الإشارات وتنظيم التعبير الجيني.
يدرس باحثون آخرون التضفير البديل ، وكيف يتم تنظيم هذه العملية في سياقات بيولوجية مختلفة. بالإضافة إلى ذلك ، يحاول بعضهم تحديد ما إذا كانت الأشكال الإسوية للبروتين لها دائما وظائف مختلفة ومتميزة.
أخيرا ، يبحث العديد من الباحثين في آلية عمل الحمض النووي الريبي الصغير ، ويحاولون تحديد أهدافهم التنظيمية. هناك أيضا اهتمام متزايد بما إذا كان يمكن استخدام الحمض النووي الريبي الصغير ك "مؤشرات حيوية" لتشخيص الأمراض.
الآن ، دعونا نلقي نظرة على الأدوات التي يستخدمها الباحثون لتقييم التعبير الجيني.
الطريقة الشائعة هي النسخ العكسي ، أو "RT"-PCR ، والتي تحول الحمض النووي الريبي إلى حمض نووي تكميلي أو "c" قبل تعريضه للتضخيم. من خلال تضمين جزيئات الفلورسنت التي يتم دمجها في الحمض النووي أثناء تفاعل البوليميراز المتسلسل ، من الممكن استخدام هذه التقنية لقياس التعبير الجيني كميا ومراقبة النتائج في "الوقت الفعلي".
لتقييم التعبير عن آلاف الجينات في وقت واحد ، يمكن استخدام المصفوفات الدقيقة في نفس الوقت. هنا ، يتم "طباعة" تسلسل الحمض النووي على الشرائح ، والتي يتم تهجينها بعد ذلك إلى مجسات الفلورسنت المتولدة من عينة الحمض النووي الريبي. يمكن استخدام النمط الناتج من التألق لتحديد الجينات المعبر عنها.
هناك تقنية أخرى لتعريف التعبير الجيني وهي تسلسل النسخ ، أو كل الحمض النووي الريبي المعبر عنه في الخلية. هنا ، يخضع (كدنا) المتولد من عينات الحمض النووي الريبي لتسلسل عالي الإنتاجية. على عكس المصفوفات الدقيقة ، لا يتطلب تسلسل النسخ معلومات جينومية موجودة مسبقا ، ويمكن استخدامه لتحديد النصوص غير المعروفة أو الأشكال الإسوية الجينية الجديدة.
يمكن للباحثين أيضا تقييم مكان التعبير عن الجين بصريا باستخدام في الموقع التهجين. في هذه التقنية ، يتم تهجين الحمض النووي الريبي أولا باستخدام مجسات تكميلية ، والتي يمكن التعرف عليها بعد ذلك بواسطة الأجسام المضادة المترافقة بالإنزيم التي تنتج لونا مرئيا أو إشارة مضانة.
مقايسة المراسل هي تقنية أخرى يمكن أن توفر نظرة ثاقبة لتنظيم الجينات. يولد منتج الجين المراسل إشارة مثل اللون أو التألق. قد يندمج المراسل مباشرة في جين محل اهتمام ، أو يتم وضعه تحت سيطرة تسلسل تنظيمي ، مثل المحفز الذي يقود نسخ الجين ، أو عنصر محسن بعيد. يمكن أن تعمل إشارة المراسل بعد ذلك كقراءات لنشاط العنصر التنظيمي ، أو نمط التعبير عن الجين محل الاهتمام.
أخيرا ، يمكن استخدام ترسيب الكروماتين المناعي أو "ChIP" لتحديد المواقع الجينومية التي ترتبط بها عوامل النسخ عند تنظيم التعبير الجيني. هنا ، يتم عزل مجمعات البروتينات والحمض النووي الذي تربطه بواسطة الأجسام المضادة ، ويتم تحديد الحمض النووي المستهدف عن طريق تفاعل البوليميراز المتسلسل أو التسلسل.
بعد مسح طرق دراسة التعبير الجيني ، دعونا نلقي نظرة على بعض تطبيقاتها.
قد تظهر الخلايا داخل مجموعة سكانية اختلافات طفيفة في التعبير الجيني يمكن أن يكون لها عواقب بيولوجية. في هذه الدراسة ، وضع الباحثون الخلايا الجذعية الجنينية البشرية الفردية من نفس الثقافة في آبار منفصلة على طبق. باستخدام RT-PCR الكمي ، قرر العلماء أن تعبير Nanog - "علامة" للخلايا الجذعية - يختلف داخل العينة.
يبحث بعض الباحثين فيما إذا كانت الأشكال الإسوية المختلفة للبروتينات التنظيمية تعمل بشكل مختلف. هنا ، تم تطبيق ChIP على الخلايا المناعية البشرية لتحديد أهداف الربط للأشكال الإسوية "الطويلة" و "القصيرة" للبروتين. أظهرت نتائج التسلسل أن بعض أهداف الجينات لم يتم التعرف عليها إلا من خلال الشكل الإسوي القصير ، مما يشير إلى الاختلافات الوظيفية المحتملة.
أخيرا ، يمكن استخدام فحوصات المراسل لتقييم تنظيم الجينات بوساطة الحمض النووي الريبي الصغير ، مثل microRNAs. نظرا لأن microRNAs يمكن أن تمنع التعبير الجيني عن طريق الارتباط بمناطق 3 ¢ غير مترجمة من mRNAs ، فقد ربط العلماء هذه المنطقة من جينات مختلفة بمراسل لوسيفيراز ، وقدموا كل منها في الخلايا جنبا إلى جنب مع microRNA. ثم تم تحديد الأهداف الجينية للحمض النووي الريبي الصغير من خلال البحث عن الخلايا ذات إشارة التلألؤ المنخفضة.
لقد شاهدت للتو مقدمة JoVE للتعبير الجيني. لقد راجعنا النتائج الرئيسية في أبحاث التعبير الجيني ، والأسئلة والأساليب البارزة في هذا المجال ، وبعض التطبيقات الحالية. كما هو الحال دائما ، شكرا على المشاهدة!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What is the central dogma of gene expression?
Francis Crick's central dogma hypothesizes the different flows of genetic information that can occur in cells. It holds that information cannot be transferred from protein back to nucleic acids. This principle, established in 1958, forms a backbone of understanding how genetic information flows from DNA through RNA to proteins, establishing the directional nature of genetic information transfer.
Q2: How do transcription factors regulate gene expression?
Transcription factors are regulatory proteins that bind to adjacent regulatory sites to control the expression of structural genes. Scientists investigate how these regulatory proteins interact with one another to integrate signals and regulate gene expression. Understanding transcription factor binding sites and protein interactions helps reveal mechanisms of gene regulation across all organisms.
Q3: What role do introns and exons play in gene expression?
Introns are non-coding sequences removed from RNA transcripts during splicing, while exons are protein-coding regions that remain in mature RNA. Alternative splicing of the same transcript can produce variants called isoforms with different functions. This process, discovered in 1977, adds complexity to how a single gene can generate multiple protein products.
Q4: How does reverse transcription PCR measure gene expression?
Reverse transcription PCR, or RT-PCR, converts RNA into complementary DNA before amplification. By including fluorescent molecules during PCR, researchers can quantitatively measure gene expression and observe results in real-time using detection and quantification of nucleic acids by real time pcr techniques. This method allows scientists to assess expression levels of specific genes in samples.
Q5: What advantages does transcriptome sequencing offer over microarrays?
Transcriptome sequencing sequences all expressed RNAs in a cell by subjecting cDNA to high-throughput sequencing. Unlike microarrays, this technique does not require preexisting genomic information and can identify unknown transcripts or novel gene isoforms. This flexibility makes transcriptome sequencing valuable for discovering new genes and variants.
Q6: How can chromatin immunoprecipitation identify gene regulation sites?
Chromatin immunoprecipitation, or ChIP, isolates protein-DNA complexes using antibodies and identifies target DNA by PCR or sequencing. This technique reveals genomic sites where transcription factors bind when regulating gene expression. ChIP has been applied to study functional differences between protein isoforms and their distinct gene targets.
Q7: How do small RNAs regulate gene expression?
Small RNAs, including families with members 20-30 nucleotides in size, regulate gene expression through multiple mechanisms. MicroRNAs can inhibit gene expression by binding to the 3' untranslated regions of mRNAs. Researchers investigate small RNA mechanisms and identify their regulatory targets to understand gene silencing and explore their potential as biomarkers for disease diagnosis.
Chapters in this video
0:00
Overview
0:39
Historical Highlights
5:02
Key Questions
6:09
Prominent Methods
8:57
Applications
10:38
Summary
Videos from this collection: