Name: أداة بالموجات فوق الصوتية للتوصيل العصبية بلوك في نماذج الفئران السكري (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-10-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: اكتشف تقنية الموجات فوق الصوتية المركزة العالية لحجب التوصيل العصبي في الفئران المصابة بالسكري. تقدم هذه الطريقة غير الجراحية نهجاً واعداً لإدارة الألم في اعتلال الأعصاب المحيطي السكري.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

الدراسة تدعمها وزارة العلوم والتكنولوجيا (المشروع الأكثر 105-2221-E-400-001) والوطنية الصحية معاهد البحوث (المشروع BN-105-PP-10)، تايوان.

رعاية الحيوان المؤسسية واستخدام اللجنة "معاهد الصحة الوطنية" في تايوان وافقت كافة البروتوكولات الحيوان.
 1-"التعريف النموذجي السكري" في "الذكور البالغين سبراغ"-داولي (SD) الفئران <ol><li>إزالة الكريات غذاء الفئران من القفص إلى سريع ذكور الفئران SD (300-350 غ) ح 6 قبل التعريفي STZ.</li>
	<li>سترات الصوديوم إعداد المخزن المؤقت (0.1 M، الأس الهيدروجيني 4.5).
	<ol><li>حل 1.05 ز مونوهيدرات حامض الستريك (ج 6 ح 8 س 7 · ح 2 س؛ mol. الوزن 210.14) في 50 مل المقطر المياه لجعل حل حمض الستريك 0.1 م.</li>
		<li>1.47 حل ز سترات صوديوم ثنائي هيدرات (ج 8 ح 5 س 7 · 3 غ 2 ح 2 س؛ mol. بالوزن 294.12) في 50 مل المقطر المياه لجعل حل سترات الصوديوم 0.1 م.</li>
		<li>إضافة 25 مل حمض الستريك الحل إلى الحل سترات الصوديوم 25 مل. رصد سترات الصوديوم العازلة الرقم الهيدروجيني (pH 4.5) باستخدام مقياس الأس الهيدروجيني. 
		ملاحظة: المخزن المؤقت هو أدلى متساوي التوتر إضافة وحدة تخزين مناسبة للحل سترات الصوديوم 0.1 م.</li>
	</ol></li> <li>STZ تذوب في المخزن المؤقت لسترات الصوديوم 0.1 M العائد 50 ملغم/مل الحل STZ- 
	ملاحظة: الحل STZ حساسة للضوء، ولذلك، تغطية الحل STZ مع رقائق الألومنيوم واستخدامها ضمن 15-20 دقيقة</li>
	<li>رسم الحل STZ 50 مغ/كغ في محقن الأنسولين أو السلين 1 مل مع إبرة مقياس 26 إلى 28-تنظيف مكان الحقن مع جهاز pad إيثانول وحقن إينترابيريتونيلي الحل STZ في الربع العلوي الأيمن من البطن لتجنب إتلاف أجهزة البطن. </li> <li>توريد الفئران مع المياه السكروز 10% كمصدر المياه الوحيد ل 48 ساعة بعد الحقن STZ لمنع نقص السكر في الدم.</li></ol>
 2. "تأكيد السكري" في الفئران التي يسببها STZ <ol><li>مراقبة تركيز جلوكوز البلازما صيام جميع الفئران حقن من قبل STZ وظيفة ح 72 مع مقياس جلوكوز.
	<ol><li>سريع الفئران السكري الناجم عن STZ ح 15 قبل قياس صيام الدم مستوى السكر.</li>
		<li>كبح جماح الفئران في كيس من ضبط النفس وفضح ذيول لجمع الدم خلال قياسات الجلوكوز في الدم-</li>
		استخدام <li>من مجلة لانسيت دم بوخز غيض الذيل للحصول على قطره دم صغيرة. وضع قطره الدم على شريط اختبار من جلوكوز. تسجيل مستويات جلوكوز البلازما الصائم. 
		ملاحظة: المقياس الجلوكوز يكشف ويعرض مستوى الجلوكوز في الدم في وحدات من مغ/دل. استبعاد الجرذان مع الصيام مستويات الجلوكوز في الدم أقل من 150 ملغ/دل بعد أسبوعين من STZ-الحث.</li>
	</ol></li></ol> 3. تقييم "اعتلال الأعصاب المحيطية السكري" في "الفئران السكري" <ol><li>تقييم اللودينيا الميكانيكية بالالكترونية فون فري.
	<ol><li>روض المستحثة STZ الفئران السكري في قفص على أرضية شبكة معدنية قطرها 1 سم لمدة 30 دقيقة قبل أن يقيم هند مخلب استجابة الانسحاب.</li>
		<li>استخدام تحقيق فراي فون إلكترونية مع نصيحة جامدة (0.8 ملم في القطر) يدوياً تطبيق الضغط على سطح أخمصي مخلب هند من الفئران، وزيادة الضغط تدريجيا حتى ينظر إلى استجابة انسحاب مخلب.</li>
		<li>سجل الضغط الذي يظهر في النظام، وكرر بقياس 5 مرات في الفئران، مع فاصل زمني 30 ثانية بين كل قياس.</li>
	</ol></li> <li>تقييم هايبرالجيسيا الحرارة مع صفيحة ساخنة.
	<ol><li>روض الفئران السكري الناجم عن STZ على صفيحة (24 ± 0.5 درجة مئوية) لمدة 10 دقائق قبل تقييم استجابة الألم.</li>
		<li>إزالة ووضع الفئران في اقفاصها بعد التعود وتسخين صفيحة والحفاظ على صفيحة &#39; s درجة حرارة 55 ± 0.5 درجة مئوية.</li>
		<li>مكان الفئران على صفيحة ساخنة أثناء بدء جهاز ضبط الوقت في وقت واحد.</li>
		<li>عند الفئران يسلك السلوكيات المتميزة، مثل لعق مخلب هند أو طبيعي عبها هند مخلب وإيقاف جهاز ضبط الوقت وتسجيل الكمون الانسحاب. 
		ملاحظة: إذا كان فأر لا تعبر عن سلوكيات متميزة بعد 20 s (20 s وقت التوقف)، إنهاء الاختبار صفيحة وإزالة الفئران من صفيحة.</li>
	</ol></li></ol> 4. في فيفو العصب "انسداد التوصيل" مع "محول هيفو" ملاحظة: التجربة في فيفو يبدأ في الأسبوع 5 بعد حقن STZ 50 مغ/كغ-
<ol><li>تنفيذ الإجراءات الحيوان قبل تجميد CMAPs مع sonication هيفو.
	<ol><li>تعقيم الأدوات الجراحية (مشرط ومقص وملقط وربط الزجاج) في اﻷوتوكﻻف قبل الجراحة.</li>
		<li>تخدير الفئران بالحقن داخل الخليط تيليتاميني/زولازيبام (40 مغ/كغ) وإكسيلازيني (10 مغ/كغ) أو عن طريق استنشاق 1.75 في المائة من إيسوفلوراني عبر المبخر إيسوفلوراني. مكان الفئران على منصة تدفئة للحفاظ على درجة حرارة الجسم.</li>
		ضع <li>على الفئران لإجراء عملية جراحية في ريكومبينسي البطني. تطبيق مرهم العين. تمديد ساق الفئران وقرصة سطح أخمص القدم مع أظافر اليدين للتأكد من عمق التخدير. إذا كانت الفئران تظهر استجابات الانسحاب، تطبيق التخدير إضافية.</li>
		<li>إزالة الشعر من الفخذ والسفلي الخلفي الفئران ماكينة كهربائية. تطبيق اليود السائل مع شاش نظيفة في موقع العمليات الجراحية ودائري التحرك الشاش إلى الخارج موقع الجراحية. استخدام جهاز pad الكحول لمسح اليود السائل مع نفس الحركة الدائرية. يتم إجراء هذه التجربة على موقع اليسار واليمين الجراحية. كرر هذا الإجراء في موقع العمليات الجراحية الأخرى عند تنفيذ الخطوة التالية للإجراء.</li>
		<li>استخدام مقص جراحي معقم أو مشرط جعل شق الجلد في الفخذ الظهرية. استخدم المقص جراحية غير حادة لفصل الأنسجة تحت الجلد بعناية وتأمين الجلد مع الجلد هوكس-يمكن النظر إلى عظم الفخذ في العضلات.</li>
		<li>استخدام المقص لفصل العضلات موازية لعظم الفخذ بعناية حتى ألياف العصب الوركي منتصف الفخذ المضمنة في العضلات مرئية. بعناية باستخدام ربط زجاج لفصل العصب الوركي منتصف الفخذ من الأنسجة الضامة المحيطة والعضلات.</li>
	</ol></li> <li>موضع العصب الوركي في منطقة التنسيق هيفو استخدام التبعي عصب مصنوعة خصيصا ( الشكل 1 و الشكل 3)- 
	ملاحظة: التبعي العصب مصنوعة خصيصا يتكون من 3 عناصر ( الشكل 3). كافة مكونات مصنوعة من polymethylmethacrylate شفافة (البولي ميثيل ميثا اكريلات). الصفحات الخارجية الهيكل العلوي للعنصر الأول هو 2.5 مم طويل القامة و M10XP0.7 ( الشكل 4 أ). البئر وسط 4.0 مم هول من خلال العنصر. افتتاح أسفل البئر مختومة بورقة من الشريط. قطر فتحه 1.2 مم والمسافة بين الطائرة وسط فتحه والسطح العلوي للعنصر الأول هو 3.1 ملم. "المكون الثاني" يتكون من هيئة رئيسية وأربعة أرجل والهيكل السفلي ( الشكل 4 باء). الصفحات الداخلية للهيكل السفلي هو 2.5 مم طويل القامة و M10XP0.7 لتناسب خيط خارجي مكون أنا. قطر الثقب المركزي هو نفس البئر وسط مكون أنا. أبعاد الهيئة الرئيسية 32 مم وقطرها 5.4 مم في السمك. وينتشر شكل متناظر أربعة أرجل. صممت قدمين قصيرة مماثلة للمحاذاة وقدمين طويلة مطابقة العمل لتركيب على العنصر الثالث. القطر الخارجي وارتفاع المكون الثالث هي 41 و 9.2 ملم. مؤشر الترابط الداخلي M36XP1.0 ومن خلال ثقب 27.5 ملم في القطر (< طبقة قوية = "إكسفيج"> 4 الرقم). المخروط تفتق جوفاء مع افتتاح أعلى من 84 ملم في القطر وافتتاح القاع 27.5 ملم في القطر. الارتفاع 57.5 ملم ( الشكل 5A).
	<ol><li>قبل التجربة، نقع التبعي العصب اﻷكريليك مصنوعة خصيصا في حل التبييض لمدة 30-60 دقيقة تليها مغطس في الماء المعقم.</li>
		<li>استخدام ربط زجاج، رفع العصب بعناية ووضعها في الفتحة للعنصر أولاً</li>
		<li>المسمار المكون الثاني للعنصر أولاً ملء المركزي جيدا من مكون أنا مع المسابقة &#39; حل s للحفاظ على الدعوة والأعصاب بالموجات فوق الصوتية-</li>
		<li>المسمار المكون الثالث للمخروط الإسكان هيفو. قفص الاتهام المكون الثالث مع العنصر الثاني من خلال أربعة أرجل العنصر الثاني- 
		ملاحظة: يتم محاذاة مركز ثلاثة عناصر هندسية ومحول. المسافة بين العصب ومحول مساو للبعد البؤري، الذي يضمن العصب داخل المنطقة المحورية هيفو.</li>
	</ol></li> <li>إدراج زوج واحد من العلاج بوخز الإبر في أصل العصب الوركي وزوج الأخرى في عضلة الساق. توصيل كل زوج من الإبر إلى نظام حيازة الكهربية من خلال كابل محوري كهربائية ( الشكل 1). 
	ملاحظة: في واحدة من نهاية الكابل هي قصاصتين التمساح مقطع الإبر اثنين بشكل منفصل، وفي الطرف الآخر من الكبل موصل BNC ربط النظام. الأزواج من العلاج بوخز الإبر تعمل كأقطاب محفزة في العصب الوركي وتسجيل أقطاب كهربائية في عضلة الساق.
	<ol><li>بتعيين معدل أخذ العينات وعرض النطاق الترددي من نظام حيازة الكهربية إلى 50 كيلو هرتز وهرتز 70--3 كيلو هرتز، على التوالي. تطبيق حافز المرجع الأعلى مع عرض نبض 0.1 مللي ثانية إلى أقطاب كهربائية محفزة في أصل العصب الوركي.</li>
		<li>تسجيل كمابس من أقطاب تسجيل وتضخيم CMAPs مع مكبر للصوت المدمج في نظام اكتساب الكهربية. 
		ملاحظة: استخدام مكبر للصوت المدمج في نظام اكتساب الكهربية لتضخيم الإشارات العصبية وسجل CMAPs من أقطاب تسجيل مع نظام حيازة الكهربية.</li>
	</ol></li> <li>استخدام محول هيفو ميجاهرتز 2.68 تجارية لقمع كمابس في الفئران الأعصاب السكري. 
	ملاحظة: يتم وصف مواصفات محول كما يلي: وعاء كروي عنصر مفرد مع فتحه قطرها 6 سم والبعد البؤري 5 سم، ومنطقة تنسيق الاهليلجي 4 ملم في العمق و 0.8 ملم في العرض في الميدان مجاناً.
	مليئة <ol><li>تزج تغطي المخروط كروية، محول هيفو والمخروط في الخزان المياه يطرد. وضع محول هيفو في المخروط كروية وإصلاح غطاء المخروط في افتتاح أعلى المخروط كروية قبل 6 مسامير الرأس ( الشكل 5 (ب)). بعد الفقاعات في المخروط كروية يطردون بطبيعة الحال بسبب انخفاض كثافة الفقاعات بالمقارنة مع المياه، ختم افتتاح الواجهة الأمامية للمخروط بشريط شفاف 0.03 mm سميكة. برغي المكون الثالث على مخروط كروية.</li>
		<li>إخراج محول هيفو مع مخروط كروية والمكون الثالث من خزان المياه يطرد. 
		ملاحظة: مياه التناضح العكسي المستخدمة في هذه الدراسة هو الماء المنقي بعملية التناضح العكسي. هو غلى مياه التناضح العكسي طرد الغاز. بعد التبريد، يتم الحصول على الماء ديجاسيد في دبابة مختومة فردية-</li>
	</ol></li> <li>وضع مكون أنا في الفضاء بين العصب والعضلات بعناية، وموقف العصب في فجوة المكون "أولاً تنفيذ" الخطوات 4.2.3 و 4.2.4 التأكد من أن العصب داخل منطقة التركيز هيفو ( الشكل 3A </ قوية >)-</li>
	<li>ربط مولد دالة ومضخم الترددات الراديوية. قم بتوصيل مكبر للصوت السلطة محول هيفو لتوليد الشعاع هيفو. تعيين يدوياً إخراج الجهد مولد دالة إلى هيفو محول الطاقة عبر مكبر للصوت السلطة. يدوياً إيقاف تشغيل مولد الدالة مرة واحدة وقت التعرض هيفو متروك. مراقبة الوقت باستخدام جهاز ضبط وقت. 
	ملاحظة: كثافة والطاقة من شعاع هيفو المستخدمة في هذه الدراسة هي 2,810 ث/سم 2 و 84 ي/مم 2، على التوالي.</li>
	في نفس الوقت، تسليم <li>التحفيز عن طريق نظام حيازة الكهربية (الخطوة 4، 3) وشعاع هيفو عبر نظام هيفو (الخطوة 4.6) للعصب الوركي أثناء تسجيل في كمابس. تدريجيا بزيادة التعرض هيفو على العصب الوركي من 3 ق، 5 s إلى 8 s حتى لوحظ انخفاض أو تثبيط السعة كمابس.
	شعاع <ol><li>سجل CMAPs مرة في الثانية أثناء تسليم هيفو. وبعد مراقبة التغيير في السعة ل CMAPs، إيقاف النظام هيفو ويدويًا انقر على أيقونة سجل في البرنامج اقتناء الكهربية إلى سجل كمابس كل 2 دقيقة في وقت مبكر 10 دقائق، كل 5 دقائق في 30 دقيقة على التوالي، وكل 10 دقيقة في آخر المرحلة حتى وقت التسجيل تصل إلى 2 حاء</li>
	</ol></li> <li>عنصر منفصل الثاني والثالث من العصب التبعي ( الشكل 3) لإزالة محول هيفو من موقع شق. عنصر منفصل الثاني والإفراج عن العصب الوركي المضمون. خياطة الموقع الجراحي للفئران السكري بخيوط الوتر الكروميك 4-0 بعد تسجيل في كمابس. تطبيق اليود السائل إلى موقع الجراحة للوقاية من العدوى.
	<ol><li>وضع الأقفاص في لوحة تدفئة والسماح للفئران لاسترداد في اقفاصها قبل إعادتها إلى مرفق الحيوان. توفر الفئران مع الايبوبروفين في مياه الشرب لمدة 3 أيام أو داخل حقن البوبرينورفين (0.05-0.1 مغ/كغ)-</li>
	</ol></li> <li>إدراج أقطاب محفزة وتسجيلها في أصل العصب الوركي وعضلات الساق الفئران الأعصاب السكري تخديره كما هو موضح في الخطوات 4.1.2 و 4.3 في أيام 7 و 14 و 28 بعد sonication هيفو الأولى. كرر الخطوات من 4.3.1 إلى 4.3.2.
	<ol><li>وضع الأقفاص في لوحة تدفئة والسماح للفئران لاسترداد في اقفاصها قبل نقل الأقفاص لمرفق الحيوان.</li>
	</ol></li> <li>Euthanize في الفئران بعد التجربة. وضع الفئران في غرفة لثاني أكسيد الكربون. انتظر حوالي 5 دقائق للفئران التوقف عن التنفس. التأكد من أن توقف القلب عن الضرب-</li>
</ol>

<ol><li>Abuaisha, B. B., Costanzi, J. B., Boulton, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acupuncture+for+the+treatment+of+chronic+painful+peripheral+diabetic+neuropathy%3A+A+long-term+study%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Res+Clin+Pract%22%5BJournal%5D)">Acupuncture for the treatment of chronic painful peripheral diabetic neuropathy: A long-term study.</a> Diabetes Res Clin Pract. 39 (2), 115-121 (1998).</li>
<li>Hamza, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+electrical+nerve+stimulation%3A+A+novel+analgesic+therapy+for+diabetic+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Care%22%5BJournal%5D)">Percutaneous electrical nerve stimulation: A novel analgesic therapy for diabetic neuropathic pain.</a> Diabetes Care. 23 (3), 365-370 (2000).</li>
<li>Ballantine, H. T. Jr, Bell, E., Manlapaz, J. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/13686380">Progress and problems in the neurologic applications of focused ultrasound.</a> J Neurosurg. 17, 858-876 (1960).</li>
<li>Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Image-guided+high-intensity+focused+ultrasound+for+conduction+block+of+peripheral+nerves%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Image-guided high-intensity focused ultrasound for conduction block of peripheral nerves.</a> Ann Biomed Eng. 35 (1), 109-119 (2007).</li>
<li>Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-intensity+focused+ultrasound+attenuates+neural+responses+of+sciatic+nerves+isolated+from+normal+or+neuropathic+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Med+Biol%22%5BJournal%5D)">High-intensity focused ultrasound attenuates neural responses of sciatic nerves isolated from normal or neuropathic rats.</a> Ultrasound Med Biol. 41 (1), 132-142 (2015).</li>
<li>Young, R. R., Henneman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+block+of+nerve+conduction+by+ultrasound%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Neurol%22%5BJournal%5D)">Reversible block of nerve conduction by ultrasound.</a> Arch Neurol. 4, 83-89 (1961).</li>
<li>Lele, P. P. <a target="_blank" href="http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/0014488663900086">Effects of focused ultrasonic radiation on peripheral nerve, with observations on local heating.</a> Exp Neurol. 8 (1), 47-83 (1963).</li>
<li>Hong, C. Z. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1846738">Reversible nerve conduction block in patients with poly- neuropathy after ultrasound thermotherapy at therapeutic dosage.</a> Arch Phys Med Rehabil. 72 (2), 132-137 (1991).</li>
<li>Okada, A., Morita, Y., Fukunishi, H., Takeichi, K., Murakami, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-invasive+magnetic+resonance-guided+focused+ultrasound+treatment+of+uterine+fibroids+in+a+large+Japanese+population%3A+impact+of+the+learning+curve+on+patient+outcome%5BTitle%5D)+AND+%22Ultrasound+Obstet+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Non-invasive magnetic resonance-guided focused ultrasound treatment of uterine fibroids in a large Japanese population: impact of the learning curve on patient outcome.</a> Ultrasound Obstet Gynecol. 34 (5), 579-583 (2009).</li>
<li>Huisman, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+consensus+on+use+of+focused+ultrasound+for+painful+bone+metastases%3A+current+status+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Hyperthermia%22%5BJournal%5D)">International consensus on use of focused ultrasound for painful bone metastases: current status and future directions.</a> Int J Hyperthermia. 31 (3), 251-259 (2015).</li>
<li>Dickinson, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Medium-term+Outcomes+after+Whole-gland+High-intensity+Focused+Ultrasound+for+the+Treatment+of+Nonmetastatic+Prostate+Cancer+from+a+Multicentre+Registry+Cohort%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Urol%22%5BJournal%5D)">Medium-term Outcomes after Whole-gland High-intensity Focused Ultrasound for the Treatment of Nonmetastatic Prostate Cancer from a Multicentre Registry Cohort.</a> Eur Urol. 70 (4), 668-674 (2016).</li>
<li>Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+high-intensity+focused+ultrasound+on+nerve+conduction%5BTitle%5D)+AND+%22Muscle+Nerve%22%5BJournal%5D)">Effects of high-intensity focused ultrasound on nerve conduction.</a> Muscle Nerve. 37 (2), 241-250 (2008).</li>
<li>Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+conduction+block+in+diabetic+rats+using+high-intensity+focused+ultrasound+for+analgesic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Anaesth%22%5BJournal%5D)">Nerve conduction block in diabetic rats using high-intensity focused ultrasound for analgesic applications.</a> Br J Anaesth. 114 (5), 840-846 (2015).</li>
<li>Donoff, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+regeneration%3A+basic+and+applied+aspects%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Rev+Oral+Biol+Med%22%5BJournal%5D)">Nerve regeneration: basic and applied aspects.</a> Crit Rev Oral Biol Med. 6 (1), 18-24 (1995).</li>
<li>Fawcett, J. W., Keynes, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peripheral+nerve+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Peripheral nerve regeneration.</a> Annu Rev Neurosci. 13, 43-60 (1990).</li>
<li>Nightingale, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuropathic+pain+market%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Drug+Discov%22%5BJournal%5D)">The neuropathic pain market.</a> Nat Rev Drug Discov. 11 (2), 101-102 (2012).</li>
<li>Lipton, R. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-pulse+transcranial+magnetic+stimulation+for+acute+treatment+of+migraine+with+aura%3A+a+randomised%2C+double-blind%2C+parallel-group%2C+sham-controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet+Neurol%22%5BJournal%5D)">Single-pulse transcranial magnetic stimulation for acute treatment of migraine with aura: a randomised, double-blind, parallel-group, sham-controlled trial.</a> Lancet Neurol. 9 (4), 373-380 (2010).</li>
</ol>

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

قمع الجزئية والمؤقتة action potentials الأعصاب الأعصاب من الفئران السكري في فيفو ولحظة وقوع أثر حظر بعد العلاج هيفو على حد سواء وقد لوحظت. أظهرت دراسة متابعة 28 يوما في كمابس أن حصار التوصيل العصبية آمنة يمكن أن تنفذ في تعرض هيفو مناسبة. نتيجة لذلك البروتوكول أعلاه من معاملة هيفو يمكن أن توفر حلاً بديلاً لكتلة التوصيل المعكوس للأعصاب الوركي في الفئران السكري.
في هذا الأسلوب، لا انحطاط العصبية، ويمكن استرداد الأعصاب الحسية تماما على مدى فترة من ساعات إلى عدة أيام في إصابات الأعصاب معتد...

الأدوية عن طريق الفم، الوخز بالإبر1، و تحفيز العصب الكهربائية2 قد استخدمت لعلاج اعتلال السكري مؤلمة. ومع ذلك، الآثار الجانبية للأدوية عن طريق الفم، الغازية عملية الوخز بالإبر، وتحفيز العصب الكهربائية تعوق الفعالية العلاجية، والامتثال للمريض. وقد تم التحقيق كتلة بالموجات فوق الصوتية للأعصاب المحيطية في نماذج حيوانية لعقود3،،من45. التوصيل في المختبر الأعصاب الوركي من الضفادع الخضراء الكبيرة كانت تحول دون عكسية بعد علاج الحبوب 10-20 من التعرض للموجات فوق الصوتية ل 0.4-1.0 s6. عامل واحد كتلة التوصيل العصب هو ارتفاع درجة الحرارة الناجمة عن الموجات فوق الصوتية7. للمرضى الذين يعانون من اعتلال، أنجز قمع إمكانات العمل مجمع العضلات (CMAPs) في العصب الشظوي المعرضة للموجات فوق الصوتية المنخفضة الكثافة ل 2 دقيقة8. وكان الوقت الانتعاش الكامل ضمن مدة 5 دقائق.
في الآونة الأخيرة، إدارة الأغذية والعقاقير في الولايات المتحدة وافق هيفو كعلاج غير الغازية لاورام الرحم الورم الليفي9، بالييشنز الألم العظام الانبثاث10، و11من سرطان البروستاتا. محول طاقة هيفو تنبعث الأشعة الصوتية خارج الجسم، ويحيل في مختلف الأنسجة وسائل الحزم وتتلاقى على الورم المستهدف في التركيز. فورا تشكيل المنطقة المحورية لتوليد آثار المترجمة على الأورام المستهدفة دون إلحاق الضرر بالانسجة المحيطة بها. كما طبق هيفو تعوق التوصيل العصب أو التسبب في إزالة التعصيب الأعصاب في تجارب في فيفو العادي الفئران سبراغ داولي (SD)12. وباﻹضافة إلى ذلك، كانت الآثار القصيرة الأجل والطويلة الأجل هيفو على الأعصاب الأعصاب التحقيق13. أظهرت النتائج السابقة أن كتلة التوصيل العصبية الحسية عكسها أو الدائم يمكن تحقيقه عن طريق هيفو مع المعلمات المناسبة. بالإضافة إلى التطبيقات، ومسكن هيفو قد تستعمل كأداة للتحقيق الإسهام النسبي لمكونات الأجهزة الطرفية والمركزية للعصب التوصيل الحصار للبحوث الأساسية للجهاز العصبي وتطوير الأدوية للألم. ولذلك، هناك حاجة إلى هيفو حظر منصة تكنولوجية محددة للأعصاب المحيطية في نماذج حيوانية. والغرض من هذه المقالة لإثبات إجراءات تسد جزئيا أو كلياً إمكانات العمل للأعصاب الطرفية في الفئران الأعصاب السكري قبل هيفو. تم إنشاء نماذج الفئران السكري وتقييم الأعراض الأعصاب المحيطية. وتقدم منصة هيفو وعمليات تجريبية محددة لعلاج الأعصاب الوركي الفئران.

<table><tbody><tr><td>ستربتوزوتوسين</td><td>سيجما</td><td>85882</td><td></td></tr><tr><td>حامض الستريك مونوهيدرات &nbsp;</td><td>سيجما</td><td>C1909</td><td></td></tr><tr><td>سترات ثلاثي الصوديوم ثنائي هيدرات</td><td>سيجما</td><td>W302600</td><td></td></tr><tr><td>مقاييس الجلوكوز</td><td>روش أكيو-تشيك أكتيف</td><td>GC</td><td></td></tr><tr><td>جهاز فون فراي الإلكتروني</td><td>IITC علوم الحياة</td><td>2390</td><td></td></tr><tr><td>لوحة ساخنة</td><td>IITC علوم</td><td></td><td></td></tr><tr><td>الحياة بيوباك MP36 نظام الاستحواذ</td><td>Biopac Systems، Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>محول الطاقة HIFU</td><td>Sonic Concepts</td><td>H108</td><td></td></tr><tr><td>مولد وظيفة</td><td>Agilent</td><td>33250A</td><td></td></tr><tr><td>مضخم طاقة</td><td>إلكترونيات & ابتكار</td><td>1040L</td><td></td></tr><tr><td>Rats&nbsp;</td><td>Biolasco تايوان</td><td>Sprague-Dawley</td><td></td></tr><tr><td>Puralube مرهم بيطري</td><td>Dechra</td><td></td><td></td></tr><tr><td>isoflurane مبخر</td><td>باركلاند Scientific</td><td>V3000PS</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurance</td><td>Attane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Restraint Bag (Decapicones)</td><td>Braintree Scientific</td><td>DC 200</td><td></td></tr></tbody></table>

أداة بالموجات فوق الصوتية للتوصيل العصبية بلوك في نماذج الفئران السكري

An Ultrasonic Tool for Nerve Conduction Block in Diabetic Rat Models

وقد أجريت العصب التوصيل كتلة مع محول عالية تركز على كثافة الموجات فوق الصوتية (هيفو) في نماذج حيوانية طبيعية والسكري مؤخرا. يمكن حظر هيفو عكسية التوصيل للأعصاب الطرفية دون الأضرار الأعصاب أثناء استخدام معلمة بالموجات فوق الصوتية مناسبة. كتلة مؤقتة وجزئية من إمكانيات عمل الأعصاب تبين أن هيفو يمكن أن تكون مفيدة علاج السريري لتخفيف الألم. يوضح هذا العمل إجراءات قمع إمكانات عمل الأعصاب الأعصاب في الفئران السكري في فيفو استخدام محول هيفو. الخطوة الأولى لتوليد الكبار ذكور الفئران الأعصاب السكري بحقن بالستريبتوزوتوسين (STZ). والخطوة الثانية لإجراء تقييم اعتلال الأعصاب المحيطية السكري في الفئران السكري الناجم عن STZ تحقيقا فراي فون إلكترونية ولوحة الساخن. والخطوة الأخيرة للسجلات في فيفو إمكانات العمل خارج الخلية العصب مكشوف ل sonication هيفو. الأسلوب الذي أظهر هنا قد تستفيد الدراسة للموجات فوق الصوتية تطبيقات مسكن.

وبينت الدراسة في فيفو ، مع جرعة هيفو سونيكيشن s 3 في شدتها 2,810 ث/سم2، قمعت كمابس نسبة 20 في المائة من خط الأساس، ولكنها قد تعافي تماما بعد 30 دقيقة (الشكل 2A، الماس) وكانت تقريبا ثابت في فترة 28 يوما (الشكل 2Bوالماس). هيفو s 5 التعرض في نفس الكثافة، CMAPs انخفضت إلى 65.4 في المائة (9.5 في المائة) من خط الأساس في دقيقة 4 وتعافي 73.7 في المائة (12.6%) من خط الأساس خلال 120 دقيقة (الشكل 2A<...

ويعرض هذا العمل منهجية تطبيق عالية تركز على كثافة الموجات فوق الصوتية لعرقلة إمكانات العمل للأعصاب الأعصاب السكري.

Nerve conduction block with a high intensity-focused ultrasound (HIFU) transducer has been performed in normal and diabetic animal models recently. HIFU ...

يتمثل الهدف العام لهذه التقنية باستخدام الموجات فوق الصوتية في إحداث حصار مؤقت لتوصيل الأعصاب الطرفية باستخدام التأثير الحراري للموجات فوق الصوتية. ويمكن لهذه الطريقة أن تساعد في الإجابة على أسئلة محورية في مجال إدارة الألم، مثل تسكين الآلام المصاحبة لاعتلال الأعصاب الطرفية السكري. وتكمن الميزة الرئيسية لهذه التقنية في أن التعرض للموجات فوق الصوتية على العصب المستهدف يكون موضعياً وقابلاً للتكرار.تميل تداعيات هذه التقنية نحو تسكين الآلام العصبية لدى البشر لأن العلاج بالموجات فوق الصوتية عملية طويلة وآمنة للغاية. سيقوم كل من Cheng Jung-Sung و Tan Joo-Shin بالتعاون مع مساعدي بحث من المختبر باستعراض الإجراء. بعد صيام ذكور جرذان Sprague-Dawley أو SD وتحضير محلول STZ وفقاً لبروتوكول النص، استخدم إبرة بقياس 26 أو 28 لسحب محلول STZ بتركيز 50 milligram per kilogram في سرنجة أنسولين أو تبركولين سعة 1 milliliter.استخدم مسحة إيثانول لتنظيف موقع الحقن في الجرذان، ثم احقن محلول STZ في بطن الحيوان. وبعد مرور 72 ساعة من الحقن، قم بقياس تركيز جلوكوز البلازما في حالة الصيام لجميع الجرذان المحقونة باستخدام مشرط سحب الدم لوخز طرف الذيل للحصول على قطرة صغيرة من الدم. ضع قطرة الدم على شريط اختبار الجلوكوز وأدخله في جهاز قياس الجلوكوز قبل تسجيل مستويات جلوكوز البلازما في حالة الصيام.لتعويد جرذ مصاب بداء السكري المستحث بواسطة STZ، انقله إلى قفص ذو أرضية من شبكة معدنية بقطر سنتمتر واحد لمدة 30 دقيقة. بعد ذلك، ولتقييم استجابة سحب الطرف الخلفي، استخدم مسبار Von Frey إلكترونيًا ذا طرف صلب لتسليط ضغط يدويًا على السطح الأخمصي للطرف الخلفي للجرذان، وزد الضغط تدريجيًا حتى تظهر استجابة سحب الطرف. سجل قيمة الضغط وانتظر 30 ثانية قبل تكرار القياس مرة أخرى.بعد مرور خمسة أسابيع من حقن STZ، وبعد تخدير الجرذان وإجراء قرصة للسطح الأخمصي للقدم وفقاً للبروتوكول النصي، استخدم مقصاً كهربائياً لإزالة الشعر من الفخذ وأسفل الظهر. ضع اليود السائل على الجلد في موقع الجراحة، ثم استخدم مسحة كحولية لمسح اليود السائل.باستخدام مشرط معقم، يتم إجراء شق في الجلد عند المنطقة الظهرية للفخذ. استخدم مقصًا جراحيًا لمباعدة الأنسجة الموجودة تحت الجلد واستخدم خطافات الجلد لتثبيت الجلد. وبواسطة المقص، افصل العضلات بعناية بشكل موازٍ لعظمة الفخذ حتى تصبح ألياف العصب الوركي في منتصف الفخذ والمغمورة في العضلات مرئية.استخدم خطافاً زجاجياً بعناية لفصل العصب الوركي في منتصف الفخذ عن الأنسجة الضامة والعضلات المحيطة به. بعد ذلك، ولوضع العصب الوركي في المنطقة البؤرية للموجات فوق الصوتية المركزة عالية الكثافة، أو HIFU، باستخدام مثبت أعصاب مصنع خصيصاً، استخدم خطافاً زجاجياً لرفع العصب بعناية ووضعه في فتحة المكون الأول من الجهاز. ثم، قم بربط المكون الثاني بالمكون الأول.ثم استخدم محلول رينجر (Ringer's Solution) لملء البئر المركزية للمكون الأول لضمان الانتشار فوق الصوتي والحفاظ على العصب. قم بربط المكون الثالث بمخروط هيكل جهاز HIFU. بعد ذلك، قم بتثبيت المكون الثالث بالمكون الثاني من خلال الأرجل الأربع للمكون الثاني.بعد إدخال زوج واحد من إبر الوخز بالإبر في منشأ العصب الوركي والزوج الآخر في العضلة التوأمية الساقية، قم بتوصيل كل زوج من الإبر بنظام الحصول على البيانات الفيزيولوجية الكهربائية عبر كابل متحد المحور كهربائي. اضبط معدل أخذ العينات وعرض النطاق الترددي لنظام الحصول على البيانات الفيزيولوجية الكهربائية على 50 kilohertz و 70 hertz three kilohertz، على التوالي. ثم عند منشأ العصب الوركي، قم بتطبيق تحفيز فوق أقصى بعرض نبضة قدره 0.1 milliseconds على أقطاب التحفيز.في نظام استحصال الفيزيولوجيا الكهربائية، سجل جهود الفعل العضلية المركبة أو CMAPs من أقطاب التسجيل وقم بتضخيم الـ CMAPs باستخدام المضخم المدمج. لاستخدام محول طاقة HIFU تجاري بتردد 2.68 millihertz لتثبيط الـ CMAPs في الجرذان المصابة باعتلال الأعصاب السكري، اغمر المخروط الكروي ومحول طاقة HIFU وغطاء المخروط في الحوض المملوء بالماء منزوع الغاز. ضع محول طاقة HIFU داخل المخروط الكروي واستخدم ستة براغي رأسية لتثبيت غطاء المخروط في الفتحة العلوية للمخروط الكروي.بعد خروج الفقاعات من المخروط الكروي بشكل طبيعي نظراً لانخفاض كثافة الفقاعات مقارنة بالماء، استخدم شريطاً شفافاً بسماكة 0.03 مليمتر لإغلاق الفتحة الأمامية للمخروط. ثم قم بربط المكون ثلاثة بالمخروط الكروي، وأخرج محول الطاقة HIFU مع المخروط الكروي والمكون ثلاثة من خزان الماء منزوع الغاز. أدخل المكون واحد بعناية في المساحة الموجودة بين العصب والعضلة، ووضع العصب في الفجوة الخاصة بالمكون واحد.لضمان وجود العصب داخل بؤرة HIFU كما تم توضيحه سابقاً، قم بربط المكون الثاني بالمكون الأول باستخدام البراغي. بعد تثبيت المكون الثالث في مخروط غلاف HIFU، قم بتوصيل المكون الثالث بالمكون الثاني من خلال الأرجل الأربعة للمكون الثاني، واستخدم محلول رينجر (Ringer's Solution) لملء البئر المركزية للمكون الأول لضمان انتشار الموجات فوق الصوتية والحفاظ على العصب. قم بتوصيل مولد دالات (Function Generator) ومضخم قدرة للترددات الراديوية.قم بتوصيل مضخم الطاقة بمحول الموجات فوق الصوتية المركزة عالية الكثافة (HIFU transducer) لتوليد حزمة HIFU. بعد ذلك، اضبط جهد الخرج لمولد الدوال (Function Generator) يدويًا إلى محول HIFU عبر مضخم الطاقة، وقم بضبط مؤقت لقياس وقت التعرض لـ HIFU. أوقف تشغيل مولد الدوال يدويًا بمجرد انتهاء وقت التعرض لـ HIFU.قم بإيصال المنبه عبر نظام الحصول على الإشارات الفيزيولوجية الكهربائية وحزمة HIFU عبر نظام HIFU إلى العصب الوركي في آن واحد مع تسجيل CMAPs. قم بزيادة مدة التعرض لـ HIFU على العصب الوركي تدريجيًا من ثلاث ثوانٍ، ثم خمس ثوانٍ، ثم ثماني ثوانٍ، حتى يُلاحظ انخفاض أو تثبيط في سعة CMAPs. قم بتسجيل CMAPs مرة واحدة في الثانية أثناء إيصال حزمة HIFU.بعد ملاحظة التغير في سعة جهود الفعل العضلية المركبة (CMAPs)، قم بإيقاف تشغيل نظام الموجات فوق الصوتية المركزة عالية الكثافة (HIFU) وانقر يدويًا على أيقونة التسجيل (Record) في برنامج اكتساب الفيزيولوجيا الكهربائية لتسجيل CMAPs لمدة ساعتين. بعد إزالة مكونات مثبت العصب، وخياطة الموقع الجراحي للفأر المصاب بالسكري، وترك الفئران للتعافي، وفي الأيام السابع والرابع عشر والثامن والعشرين بعد عملية سونيكة HIFU الأولية، قم بإدخال أقطاب التحفيز والتسجيل في الفئران المصابة بالاعتلال العصبي السكري والمخدرة كما سبق، وسجل CMAPs إضافية كما تم توضيحه سابقًا في هذا الفيديو. أظهرت الدراسة التي أجريت في الجسم الحي (in vivo) والموضحة في هذا الفيديو أنه عند استخدام جرعة من الموجات فوق الصوتية المركزة عالية الكثافة (HIFU) لمدة ثلاث ثوانٍ من السونيكة بكثافة 2810 watts per square centimeter، تم تثبيط CMAPs بنسبة 20% من الخط الأساسي، ولكنها تعافت تمامًا بعد 30 دقيقة.بالنسبة للتعرض لـ HIFU لمدة خمس ثوانٍ وبنفس الشدة، انخفضت الـ CMAPs إلى 65.4 per cent من خط الأساس بعد أربع دقائق، وتعافت لتصل إلى 73.7 per cent من خط الأساس بحلول 120 دقيقة. ولم تعد الـ CMAPs إلى مستويات خط الأساس إلا في اليوم 14. وعندما تمت زيادة وقت سونيكة HIFU إلى 8 ثوانٍ تحت نفس الشدة، انخفضت الـ CMAPs إلى 26 per cent من خط الأساس بعد أربع دقائق، لكنها ارتفعت إلى 38 per cent من خط الأساس عند 120 دقيقة، وزادت تدريجياً لتصل إلى 74 per cent من خط الأساس بحلول اليوم 28.بمجرد إتقان هذه التقنية، يمكن إنجازها في غضون ساعة واحدة إذا نُفذت بشكل صحيح. وأثناء محاولة تطبيق هذا الإجراء، من المهم تذكر التعامل مع العصب بحذر شديد. وفي أعقاب هذا الإجراء، يمكن تنفيذ طرق أخرى مثل brand easy detection من أجل الإجابة على أسئلة إضافية مثل التفاعل الحسي الطرفي.بعد تطويرها، مهدت هذه التقنية الطريق للباحثين في مجال إدارة الألم لاستكشاف نمط طاقي جديد لعلاج الألم في الاعتلال العصبي المحيطي. بعد مشاهدة هذا الفيديو، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية رسم مخطط توصيل الأعصاب في الاعتلال العصبي السكري في نموذج جرذ باستخدام الموجات فوق الصوتية. تذكر أن العمل مع مضخم القدرة قد يكون خطيرًا للغاية، ويجب دائمًا اتخاذ الاحتياطات اللازمة مثل ارتداء قفازات العمل العازلة أثناء تنفيذ هذا الإجراء.

an-ultrasonic-tool-for-nerve-conduction-block-in-diabetic-rat-models

Research

JoVE Journal

Bioengineering

الهندسة الحيوية

نصف هنا إجراءً سريعاً وموثوقاً وبسيطاً لتحديد أدنى درجة حرارة تظهر عندها الجرذان أو الفئران سلوكاً دفاعياً ضد الألم، أي أنَّ الـ عتبة استقبال الألم الحراري (TNT). وتعتمد هذه الطريقة على تطبيق محفز حراري يتزايد ببطء، مما يسمح بتقدير عتبات سحب الذيل بدقة وقابلية للتكرار، مع الحد الأدنى من الإجهاد الذي قد تتعرض له الحيوانات، إن وجد.

سريع تحديد العتبة Nociceptive الحرارية في الفئران المصابة بمرض السكر

المصدر: Lee، Y. F.، et al. أداة بالموجات فوق الصوتية لكتلة التوصيل العصبي في نماذج الفئران السكرية. J. Vis. Exp. (2017)يوضح هذا الفيديو استخدام الموجات فوق الصوتية المركزة عالية الكثافة (HIFU) لمنع إمكانات العمل من العصب الوركي إلى عضلة المعدة في نموذج الفئران السكري. عند توصيل شعاع HIFU إلى العصب ، يؤكد انخفاض إشارة العضلات إمكانات HIFU كعلاج غير جراحي لتخفيف آلام الاعتلال العصبي السكري.

الموجات فوق الصوتية المركزة عالية الكثافة لمنع إمكانات عمل الأعصاب في نموذج الفئران السكري 

قياسات خصائص التوصيل العصبية في الجسم الحي تجسد أداة قوية لتوصيف مختلف النماذج الحيوانية من الأمراض العصبية والعضلية. هنا، نقدم بروتوكول سهلة وموثوقة يمكن من خلالها إجراء تحليل الكهربية على الأعصاب الوركي من الفئران تخدير.

في القياسات الكهربية فيفو على الأعصاب ماوس الوركي

توفر تقنيات استثارة محواري أداة قوية لدراسة الفيزيولوجيا المرضية والتغيرات الفيزيائية الأحيائية التي تسبق الأحداث التنكسية لا رجعة فيه. هذه المخطوطة يوضح استخدام هذه التقنيات في العصب الزندي تخديره من الفئران.

في فيفو القياس الكهربية للعصب الزندي الفئران مع اختبار استثارة محواري

تحدد هذه الدراسة نموذج تجريبي للاعتلال العصبي الألياف صغيرة نقية مع ريسينيفيراتوكسين (RTX). جرعة فريدة من RTX (50 ميكروغرام/كغ) الأمثل لوضع نموذج للاعتلال العصبي ألياف صغيرة الذي يحاكي خصائص المريض، ويمكن أن تساعد التحقيق nociceptive أهمية الجزيئية الكامنة وراء الأم الأعصاب.

إنشاء نموذج الفأر الاعتلال العصبي الألياف صغيرة نقية مع مؤثر أولترابوتينت من نوع فانيلويد المحتملة مستقبلات عابر 1

تسجيل الألياف الواحدة هو تقنية كهربائية فسيولوجية فعالة تنطبق على الجهاز العصبي المركزي والمحيطي. جنبا إلى جنب مع إعداد DRG سليمة مع العصب الوركي المرفقة ، يتم فحص آلية فشل التوصيل. كلا البروتوكولين تحسين فهم علاقة الجهاز العصبي المحيطي مع الألم.

استخدام في فيفو تسجيل واحد من الألياف والعقدة الجذر الرحالة سليمة مع العصب الوركي المرفقة لدراسة آلية فشل التوصيل

يصف هذا البروتوكول تحضير الأنسجة العصبية الوركية الكاملة للفئران للتحفيز الكهروفسيولوجي خارج الجسم الحي وتسجيلها في حمام ملحي منظم بيئيا ومكون من مقصورتين.

تحضير العصب الوركي للفئران للفسيولوجيا العصبية خارج الجسم الحي

نقدم بروتوكولا لاستخدام الوخز بالإبر تحت الجلد لفو في نموذج إصابة انقباض مزمن للحث على ألم العصب الوركي في الفئران.

فعالية الوخز بالإبر تحت الجلد لفو على آلام العصب الوركي: التغيرات السلوكية والفيزيولوجية الكهربية في نموذج إصابة الفئران بإصابة الانقباض المزمن

هنا، نقدم طريقة لتقييم تنشيط وكتلة المحاور الحسية في الأعصاب الطرفية في تجارب الفئران الحادة المخدرة في الجسم الحي باستخدام نوعين من القياسات الكهربائية الفيزيولوجية للعمود الفقري التي يمكن تمييز نشاط الأنواع الفرعية من ألياف الأعصاب: جهود المجال المحلية وتسجيلات الخلايا العصبية ذات النطاق الديناميكي الواسع.

طرق كهربائية فسيولوجية لتقييم حجب الألم المحيطي في فأر مخدر

يقدم هذا البروتوكول نموذجا للفئران قابلا للتكرار باستخدام الأعصاب الحسية لتقليد ألم ورم العصب البشري وتقييم العلاجات الجراحية ، مما يوفر أداة قيمة لأبحاث ورم العصب الانتقالي.

نموذج جراحي جديد للقوارض لدراسة خيارات علاج آلام الورم العصبي باستخدام إعادة تعصيب العضلات المستهدفة من خلال العصب الصافن

اكتشف تقنية الموجات فوق الصوتية المركزة العالية لحجب التوصيل العصبي في الفئران المصابة بالسكري. تقدم هذه الطريقة غير الجراحية نهجاً واعداً لإدارة الألم في اعتلال الأعصاب المحيطي السكري.

أداة بالموجات فوق الصوتية للتوصيل العصبية بلوك في نماذج الفئران السكري

استكشف المزيد من الفيديوهات