-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
ضبط في الحصين ثيتا الفرقة في المختبر: منهجيات لتسجيل من القوارض معزولة سيبوهيبوكامبال ال...
ضبط في الحصين ثيتا الفرقة في المختبر: منهجيات لتسجيل من القوارض معزولة سيبوهيبوكامبال ال...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Tuning in the Hippocampal Theta Band In Vitro: Methodologies for Recording from the Isolated Rodent Septohippocampal Circuit

ضبط في الحصين ثيتا الفرقة في المختبر: منهجيات لتسجيل من القوارض معزولة سيبوهيبوكامبال الدائرة

Full Text
10,174 Views
11:37 min
August 2, 2017

DOI: 10.3791/55851-v

Frédéric Manseau1, Sylvain Williams1

1Department of Psychiatry, Douglas Mental Health University Institute,McGill University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

هنا، نقدم بروتوكول لتسجيل الإيقاعي ثيتا شبكة العصبية وتذبذبات غاما من إعداد الحصين كله معزولة. نحن تصف الخطوات التجريبية من استخراج الحصين إلى تفاصيل الميدان، وحدوية وكل خلية التصحيح المشبك التسجيلات فضلا عن سرعة أوبتوجينيتيك من إيقاع ثيتا.

الهدف العام من هذا البروتوكول هو تقديم إجراءات لاستخراج مستحضر الحصين بالكامل واستكشاف توليد شبكة عصبية إيقاعية باستخدام التسجيلات الميدانية والوحدوية والمشبك الرقعة بالإضافة إلى التحفيز البصري الوراثي. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال علم الأعصاب للتعلم والذاكرة من خلال تسهيل دراسة الآليات الخلوية والمشبكية التي تكمن وراء التذبذبات الإيقاعية في الحصين. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها تستخدم مستحضرا محسنا للتحقيق في الدوائر في التذبذبات التفصيلية ، والتي تلعب دورا مهما في معلومات الذاكرة المعتمدة على الحصين.

لبدء هذا الإجراء ، ضع الدماغ على طبق التشريح في وضع رأسي ، وقم بإزالة المخيخ بشفرة حلاقة ، ثم اقطع الدماغ إلى نصفين على طول المستوى السهمي الأوسط وأعد نصفي الكرة المخية المعزولين إلى غرفة الاحتجاز. بعد ذلك ، ضع الدماغ الفردي نصف المقطع في وضع مستقيم على طبق التشريح. قم بتدوير الطبق حتى تواجه الهياكل السهمية المتوسطة المجرب ويظهر المخطط المدمج لمركب الحاجز كطبقة رقيقة على شكل كمثرى من الأنسجة الداخلية للمهاد.

بعد ذلك ، أدخل ملعقة مغلفة أسفل الحاجز وحرك الطرف لأسفل حتى يتم الوصول إلى طبق التشريح ، وقم بقطع الألياف التي تربط منطقة الحاجز بحرارة. الآن ، كرر نفس العملية على طول الحافة الأمامية للحاجز وقم بقطع الألياف التي تتصل بالجزء الأمامي من الدماغ. مع تثبيت الملعقة برفق الجزء الداخلي من القشرة فوق الحصين مباشرة في وضع رأسي ، استخدم الملعقة الدقيقة لسحب نوى المهاد وما تحت المهاد وجذع الدماغ المتبقية بعناية.

بعد ذلك ، استخدم الملعقة لقطع وإزالة الأنسجة المسحوبة. بعد ذلك ، أدخل الملعقة المطلية في البطين الجانبي أسفل الطرف المنقاري للحصين الظهري. أمسك الملعقة أفقيا ، محاذاة المستوى السهمي الأوسط للدماغ المنقسم وحركها عبر المحيط الأملس لجدران البطين ، حتى يظهر الطرف بحرارة.

أمسك الملعقة أسفل الحصين واضغط عليها برفق على الألياف المتصلة على طول الطبقة الداخلية حيث ينضم الحصين إلى القشرة العلوية ، ثم ضع الملعقة الدقيقة على الجانب الخارجي من هذه الطبقة واضغط عليها على الملعقة المطلية لتقطيع الألياف المتصلة. لإكمال الاستخراج ، قم بتدوير طبق التشريح وأدخل الملعقة المطلية أسفل الحصين البطني. أمسك الحصين برفق بالملعقة واقطع وصلات الغدد الصماء باستخدام حركة تقطيع ضد الملعقة.

بمجرد اكتمال العزل ، احتفظ بالحصين مستريحا على الطبق وأضف قطرة من محلول السكروز المثلج لإبقائه باردا. قم بقص أي قشرة وألياف متبقية بعناية وافصل الحصين عن الحاجز عن طريق وضع شفرة حلاقة برفق على القب. بعد ذلك ، انقل المستحضر إلى محلول السكروز بدرجة حرارة الغرفة واتركه يتعافى لمدة 15 إلى 30 دقيقة قبل نقله إلى غرفة التسجيل.

في هذه الخطوة ، قم بإعداد نظام التروية الذي يتم تغذيته بالجاذبية لتمكين السرعة العالية المستمرة في تدفق ACSF المؤكسج. بعد ذلك ، أوقف تدفق ACSF وانقل الحصين إلى غرفة التسجيل ، باستخدام الطرف العريض للماصة الزجاجية. اترك مستحضر السكروز المشبع يغرق ويستقر في الأسفل.

ضع المستحضر في وسط غرفة التسجيل ، مع وضع السطح الأملس ل CA1 وsubiculum في الأعلى. قم بتثبيت الحصين بأوزان صغيرة من الحاجز والأطراف الصدغية وأعد تشغيل تدفق ACSF. في هذا الإجراء، اخفض قطب LFP إلى سطح الحصين.

قم بتطوير قطب LFP من خلال طبقة المعلمة ولاحظ الزيادة في نشاط الارتفاع خارج الخلية حيث يتم اكتشاف تفريغ وحدة واحدة من الخلايا العصبية الفردية. اخفض القطب الكهربائي أكثر ولاحظ أن الارتفاع يبدأ في التلاشي مرة أخرى عندما يعبر الطرف إلى الذرة الشعاعية. لاحظ أن تذبذب الشبكة المرئي بوضوح في نطاق تردد ثيتا ، يصبح واضحا ويصل إلى أقصى سعة حيث يتم خفض موقع التسجيل من خلال الإشعاع.

لاختبار الخصائص المكانية لتذبذبات ثيتا العفوية عبر منطقة CA1 ، ضع قطبا كهربائيا ثانيا من LFP في موقع CA1 ولاحظ أن تذبذبات ثيتا CA1 تتزامن على مسافات كبيرة. لاختبار خصائص تذبذبات ثيتا عبر طبقات الحصين ، اترك قطب LFP مرجعيا في موقع الإشعاع CA1. بدءا من أعلى الطبقة oriens مباشرة ، قم بخفض قطب كهربائي ثان في طبقة خلية المعلمة ومن خلال الراديتوم.

لاحظ انعكاسا تدريجيا لإشارة LFP عبر طبقة المعلمة. لاختبار تذبذبات جاما واقتران ثيتا جاما في الحصين السليم ، ضع قطبا كهربائيا مجاليا عند حدود CA1 الفرعية وقم بخفضه حتى يجلس عند الواجهة بين المعلمة والطبقات الجزيئية. في هذا المستوى ، يمكن تسجيل جهد مجال يعرض تذبذبات جاما واضحة مع تغيرات في السعة تلك المرحلة المقفلة على إيقاع ثيتا المحلي.

بعد ذلك ، اضبط المقياس لمراقبة المقياس الزمني البطيء لاقتران ثيتا جاما. لاحظ أن انفجارات جاما تحدث في نطاقي تردد متميزين يمكن الكشف عنهما بواسطة النطاق أثناء إشارة LFP المستمرة ، في نطاق جاما البطيء والسريع. لتسجيل مشبك تصحيح الخلية بالكامل أثناء تذبذبات ثيتا الحصين في المختبر ، استخدم الفحص المجهري بالفيديو الفلوري مع تكبير منخفض وعالي الطاقة لتصور الخلايا العصبية الداخلية الإيجابية tdTomato الموجودة بالقرب من سطح مستحضر الحصين من فأر توم الكهروضوئي.

تحت عرض التكبير المنخفض للحصين ، ضع قطبا كهربائيا LFP في CA1 subiculum لمراقبة تذبذبات ثيتا أثناء التحضير لتجارب مشبك التصحيح. بعد ذلك ، قم بالتبديل إلى التكبير بمقدار 40x واغمر الهدف فوق المنطقة المستهدفة. قم بخفضه حتى تصبح الطبقات العليا مرئية ، تحت الفحص المجهري الفلوري ، حدد خلية الفلورسنت الكهروضوئية واقترب بماصة رقعة مملوءة بمحلول قياسي بين الخلايا.

بمجرد دخولك إلى تكوين الخلية الكاملة ، افحص الخصائص الفسيولوجية للخلية الكهروضوئية المحددة أثناء التذبذبات العفوية في الحصين. لاحظ تسجيل إمكانات الغشاء داخل الخلايا من الخلايا الكهروضوئية التي تتميز بسلوك الارتفاع السريع وانفجارات من إمكانات الفعل المتزامنة مع إيقاع ثيتا CA1 الفرعي المستمر. في هذا الإجراء ، ضع قطبا كهربائيا LFP في منطقة CA1 الفرعية وقم بتصحيح خلية معلمة قريبة في الحصين المعزول للفأر ، معبرا عن الأوبسين الاستثاري الحساس للضوء الأزرق ، CHR2 في الخلايا العصبية الداخلية الكهروضوئية.

ضع دليل ضوء الألياف الضوئية فوق مستحضر الحصين وقم بتوسيطه على المنطقة المسجلة. استخدم الضوء الأزرق من مصدر LED للتحفيز الجيني البصري ، والذي يتكون من نبضات ضوئية من 10 إلى 20 مللي ثانية أو أوامر جهد موجة الخطيئة التي يتم تسليمها بترددات ثيتا. في المشبك الحالي ، قم بتمييز نشاط الخلية المسجلة أثناء تذبذبات ثيتا العفوية.

ثم ابدأ بروتوكول التحفيز وسجل استجابات الضوء. لاحظ أن التذبذبات الميدانية والنشاط المشبكي والخلايا العصبية المسجلة ، تصبح متزامنة بشكل متزايد أثناء التحفيز البصري الوراثي وأن الإيقاع الإيقاعي للخلايا الكهروضوئية ينتج عنه تحكم قوي في كل من تردد وقوة تذبذبات ثيتا. يظهر هنا ، هو النشاط الفيزيولوجي الكهربي المسجل من خلية معلمة أثناء تذبذبات ثيتا.

تظهر آثار المشبك الحالية إطلاق النار التلقائي ولكن ليس الإيقاعي في حالة الراحة وإمكانيات ما بعد التشابك المثبطة التي لم تتم مزامنتها بوضوح مع تذبذب LFP الناشئ ببطء. تظهر تسجيلات مشبك الجهد أن التيارات المثبطة المقابلة بعد التشابك لها إمكانات انعكاس عند حوالي 70 مللي فولت تحت الصفر. وهنا ، يتم تسجيل النشاط الفيزيولوجي الكهربي من الخلايا العصبية الكهروضوئية الفلورية سريعة الارتفاع أثناء تذبذبات ثيتا.

في المشبك الحالي ، كانت هذه الخلية تطلق تلقائيا أثناء الراحة وكانت مدفوعة بقوة بإمكانيات ما بعد التشابك الإيقاعية التي تم قفلها على مراحل مع تذبذب LFP المستقر. في تسجيلات مشبك الجهد ، كانت إمكانات انعكاس التيار المثير بعد التشابك عند صفر مللي فولت تقريبا. بمجرد إتقانها ، يمكن تنفيذ هذه التقنية في غضون ساعتين إلى ثلاث ساعات ، أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر تزويد المحلول بالأكسجين بقوة واستخدام نظام التروية الذي يسمح بتدفق عالي السرعة ولكن ثابت ل ACSF المسلح على المستحضر أثناء التسجيلات الفيزيولوجية الكهربية.

باتباع هذا الإجراء ، يمكن استخدام طرق أخرى مثل تحفيز البصريات الوراثية أو إسكات مجموعات معينة من أنواع الخلايا ، من أجل الإجابة على أسئلة إضافية مثل تحديد الأنواع الفرعية الخلوية التي تشكل مذبذبات ثيتا في الحصين. بعد تطويرها ، مهدت هذه التقنية الطريق للباحثين في مجال علم الأعصاب لاستكشاف ديناميكيات تذبذبات ثيتا بشكل منهجي عبر المحور الصدغي الحاجز للحصين في المختبر. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية استخراج مستحضر الحصين بالكامل من أجل استكشاف وظيفة الشبكات العصبية الإيقاعية باستخدام تسجيلات المشبك الميداني والوحدة والتصحيح ، بالإضافة إلى التحفيز البصري الوراثي.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 126 الحصين التذبذبات العصبية إيقاع ثيتا إنترنيورونس في المختبر إعداد الكهربية أوبتوجينيتيكش.

Related Videos

تسجيل الاستجابات المشبكية CA3-CA1 في شريحة الحصين الفئران

03:10

تسجيل الاستجابات المشبكية CA3-CA1 في شريحة الحصين الفئران

Related Videos

586 Views

التسجيل في المختبر لتذبذبات ثيتا في الحصين الفأر

02:39

التسجيل في المختبر لتذبذبات ثيتا في الحصين الفأر

Related Videos

455 Views

التحكم البصري الوراثي لديناميكيات شبكة الحصين

02:30

التحكم البصري الوراثي لديناميكيات شبكة الحصين

Related Videos

350 Views

تحسين إعداد والحفاظ على شرائح الحصين ماوس لتسجيل مستقرة جدا وقابلة للتكرار من التقوية بعيدة المدى

09:39

تحسين إعداد والحفاظ على شرائح الحصين ماوس لتسجيل مستقرة جدا وقابلة للتكرار من التقوية بعيدة المدى

Related Videos

27.5K Views

خلية كاملة تسجيلات التصحيح، المشبك من Morphologically- وحددت Neurochemically-الحصين Interneurons

14:37

خلية كاملة تسجيلات التصحيح، المشبك من Morphologically- وحددت Neurochemically-الحصين Interneurons

Related Videos

25.1K Views

التحقيق في متشابك وسم / القبض على والصليب التقاط باستخدام الحاد شرائح الحصين من القوارض

11:29

التحقيق في متشابك وسم / القبض على والصليب التقاط باستخدام الحاد شرائح الحصين من القوارض

Related Videos

14.5K Views

الكشف التلقائي من التذبذبات ثيتا درجة عالية من التنظيم في الفئران EEG

09:35

الكشف التلقائي من التذبذبات ثيتا درجة عالية من التنظيم في الفئران EEG

Related Videos

9.6K Views

أوبتوجينيتيك الرائعة للذبذبات ثيتا هيبوكامبال في التصرف الفئران

07:33

أوبتوجينيتيك الرائعة للذبذبات ثيتا هيبوكامبال في التصرف الفئران

Related Videos

12.1K Views

تسجيل وتعديل النشاط صرعية في الدماغ القوارض شرائح بالإضافة إلى صفائف ميكروليكترودي

10:24

تسجيل وتعديل النشاط صرعية في الدماغ القوارض شرائح بالإضافة إلى صفائف ميكروليكترودي

Related Videos

15.2K Views

تسجيل مكانياً مقيد التذبذبات في قرن آمون التصرف الفئران

07:10

تسجيل مكانياً مقيد التذبذبات في قرن آمون التصرف الفئران

Related Videos

9.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code