-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
الوقت الفاصل بين التصوير متحد البؤر من الخلايا العصبية المهاجرة في شريحة عضوي نمط ثقافة الفأر الج...
الوقت الفاصل بين التصوير متحد البؤر من الخلايا العصبية المهاجرة في شريحة عضوي نمط ثقافة الفأر الج...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Time-lapse Confocal Imaging of Migrating Neurons in Organotypic Slice Culture of Embryonic Mouse Brain Using In Utero Electroporation

الوقت الفاصل بين التصوير متحد البؤر من الخلايا العصبية المهاجرة في شريحة عضوي نمط ثقافة الفأر الجنينية باستخدام الدماغ في أوتيرو إليكتروبوراتيون

Full Text
11,378 Views
13:33 min
July 25, 2017

DOI: 10.3791/55886-v

Christoph Wiegreffe1, Svenja Feldmann1, Simeon Gaessler1, Stefan Britsch1

1Institute of Molecular and Cellular Anatomy,Ulm University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

يوفر هذا البروتوكول تعليمات للمراقبة المباشرة من الخلايا العصبية القشرية هجرة شعاعيا. في إليكتروبوراتيون الرحم ، يتم دمج ثقافة شريحة عضوي النمط، والوقت الفاصل بين التصوير متحد البؤر لدراسة مباشرة وديناميكية آثار أوفيركسريسيون أو دونريغولاتيون من الجينات التي تهم في الخلايا العصبية المهاجرة وتحليل التمايز أثناء التنمية.

Transcript

الهدف العام من هذا الإجراء هو المراقبة المباشرة للخلايا العصبية المهاجرة شعاعيا في ثقافة الشرائح العضوية المحضرة من الدماغ الجنيني الكهربائي بواسطة الفحص المجهري متحد البؤر بفاصل زمني. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في دراسة الجوانب الرئيسية لتطور القشرة المخية الحديثة. يسمح بالتحقيق في الآليات الجزيئية المشاركة في استقطاب الخلايا العصبية والهجرة الشعاعية للخلايا العصبية إلى موضعها النهائي داخل الدماغ.

الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي الخصائص الديناميكية للخلايا العصبية المهاجرة التي يمكن تحليلها بما في ذلك ملامح السرعة ومتوسط سرعة الهجرة وكذلك التغيرات في اتجاه الهجرة. ابدأ بوضع فأر حامل مخدر بشكل صحيح في وضع ضعيف على طبق تسخين. تحقق من عدم وجود منعكس الدواسة.

وبعد ذلك ، قم بتغطية العينين بعناية بالفازلين لمنعهما من الجفاف. بعد ذلك ، انشر الأطراف برفق وقم بتثبيتها على لوحة الاحترار بشريط جراحي. تعقيم البطن عن طريق المسح بمحلول 70٪ من الإيثانول متبوعا بمحلول اليود ، ثم ضع شاشا معقما ، حيث تم إجراء قطع لشق البطن ، فوق البطن.

بلل الشاش بمحلول كلوريد الصوديوم المضاد للجراثيم. بعد إعادة تقييم تطور التخدير الجراحي ، عن طريق فقدان منعكس الدواسة ، استخدم ملقط Adson الصغير المسنن والمقص الدقيق بزاوية لقطع الجلد حوالي 1.5 سم على طول خط الوسط للبطن. ثم قم بقطع العضلة الأساسية على طول الخط ألبا.

أمسك قرن الرحم بين الأجنة بالملقط الدائري وضعه برفق على الشاش المبلل دون إزعاج المشيمة أو أوعية الإمداد. بعد ذلك ، ضع الجنين بعناية لإعطاء رؤية واضحة للبطين الجانبي الذي يظهر كظل على شكل هلال مواز للجيب السهمي. يقع موقع الحقن في منتصف خط بين العين المصطبغة والتقاء الجيوب الأنفية حيث يتفرع الجيوب السهمية إلى اثنين من الجيوب الأنفية الانتقالية.

بمجرد تحديدها، ادفع إبرة الحقن المجهري عبر جدار الرحم إلى البطين الجانبي. بعد ذلك ، استخدم حاقن دقيق يعمل بدواسة قدم لحقن ميكرولتر إلى ميكرولتر من محلول الحمض النووي بخمسة إلى 10 نبضات. يمكن مراقبة الحقن الناجح بواسطة محلول الحمض النووي الملون الذي يجب أن يملأ الجهاز البطيني.

بعد ذلك ، ضع أقطاب كهربائية من نوع الملقط بحيث يكون الطرف الموجب على نفس جانب البطين المحقون ويكون الطرف السالب على الجانب الآخر من البطين المحقون أسفل أذن رأس الجنين. بلل موقع التثقيب الكهربائي ببضع قطرات من محلول كلوريد الصوديوم المضاد للجراثيم وقم بتطبيق خمس نبضات تيار كهربائي مدتها 50 مللي ثانية بفواصل زمنية 950 مللي ثانية. تشير الفقاعات الموجودة في القطب السالب إلى التيار الكهربائي.

عادة ما تكون 60 إلى 90 مللي أمبير كافية للتثقيب الكهربائي الناجح. لن تقوم التيارات المنخفضة بنقل الخلايا العصبية بكفاءة بينما قد تؤدي التيارات الأعلى إلى الموت الجنيني. بعد تكرار الإجراء لكل جنين في قرن الرحم الأول ، ضعه برفق مرة أخرى في تجويف البطن.

بعد خياطة طبقة العضلات والجلد ، قم بتطهير بعناية بمحلول اليود وإزالة الفازلين برفق من العينين باستخدام مسحات السليلوز. ضع الماوس تحت مصباح الأشعة تحت الحمراء حتى يستيقظ. بعد القتل الرحيم للأنثى الحامل باستخدام طريقة معتمدة ، قم بإزالة الرحم الذي يحتوي على الأجنة ووضعه في طبق بتري بطول 10 سم مع HBSS البارد المثلج.

من هذه النقطة فصاعدا ، احتفظ بجميع المحاليل والأجنة والأدمغة على الجليد. أثناء العمل تحت المجهر المجسم ، استخدم ملقطا رفيع الرؤوس وزوجا من مقص Vannas Tubingen الزنبكي لفصل كل جنين عن الرحم. نقل الأجنة إلى طبق بتري آخر يحتوي على HBSS كامل مثلج بارد.

قم بعمل شق على مستوى جذع الدماغ وقطع على طول خط الوسط السهمي. قشر الجلد والغضاريف التي تغطي الدماغ. ثم اقطع جذع الدماغ خلف نصفي الكرة الأرضية مباشرة وأزل الدماغ من الجمجمة.

انقل الدماغ بملعقة صغيرة إلى طبق مكون من 12 بئرا يحتوي على HBSS كامل مثلج. اجمع كل الأدمغة من القمامة في اللوحة المكونة من 12 بئرا. بعد ذلك ، استخدم المجهر المجسم الفلوري لفحص الأدمغة في الصفيحة المكونة من 12 بئرا بحثا عن سطوع الإزهار بالإضافة إلى حجم المنطقة المثقبة بالكهرباء.

حدد دماغين إلى أربعة أدمغة بإشارات فلورية ساطعة والقشرة الحسية الجسدية المفترضة لمزيد من المعالجة. بعد ذلك ، صب محلول الاغاروز المنصهر بنسبة 3٪ منخفض نقطة الانصهار في قالب تضمين يمكن التخلص منه. استخدم ملعقة صغيرة لإزالة الدماغ من اللوحة المكونة من 12 بئرا وتصريف HBSS الكامل الزائد بعناية من جميع أنحاء الدماغ باستخدام المناديل الورقية الدقيقة.

ضع الدماغ برفق في محلول الاغاروز. بعد ذلك ، استخدم إبرة قياس 20 لدفعها إلى أسفل القالب وضبط موضعها بعناية. بالنسبة للأقسام الإكليلية ، قم بتوجيه الدماغ مع توجيه البصيلات الشمية لأعلى.

احتفظ بالقالب على الجليد حتى يتجمد محلول الاغاروز ثم انتقل إلى تقسيم الدماغ. استخدم شفرة حلاقة نظيفة لتقليم الاغاروز الزائد حول الدماغ ، مع ترك ما يقرب من ملليمتر واحد من الاغاروز من جميع الجوانب باستثناء البصيلات الشمية حيث يجب ترك ملليمترين إلى ثلاثة ملليمترات من الاغاروز. بعد وضع كمية صغيرة من غراء سيانواكريليت على عينة ، قم بإصلاح كتلة الاغاروز المشذبة مع توجيه المصابيح الشمية لأسفل.

انقل مرحلة العينة إلى غرفة التقطيع الخاصة بميكروتوم شفرة اهتزازية يحتوي على HBSS كامل مثلج بارد وضع الدماغ بجانبه الظهري باتجاه الشفرة. قطع شرائح دماغ بسمك 250 ميكرون تحتوي على المنطقة المثقبة بالكهرباء بسعة منخفضة إلى معتدلة وسرعة تقسيم بطيئة جدا. عادة ما يتم الحصول على أربع إلى ست شرائح بإشارة فلورية ساطعة من كل دماغ كهربائي بنجاح.

أمسك حافة الاغاروز لقسم واحد بملقط ناعم الرؤوس واسحب الشريحة على ملعقة صغيرة مثنية. بهذه الطريقة ، انقل شرائح الدماغ بعناية إلى صفيحة من ستة آبار تحتوي على HBSS كامل مثلج. قم بترطيب إدخالات الغشاء المطلية باللون اللامينين ب 100 ميكرولتر من HBSS الكامل.

بعد ذلك ، انقل الشرائح بعناية إلى الأغشية باستخدام ملعقة الملعقة الصغيرة المنحنية والملقط. ادفع الشريحة برفق من الملعقة إلى الغشاء ، ثم ضعها باستخدام الملقط. استمر في نقل الشرائح المتبقية.

يمكن وضع ما يصل إلى خمس شرائح على غشاء واحد. قم بإزالة HBSS الكامل الزائد باستخدام ماصة. بعد ذلك ، بمساعدة الملقط ، ضع بعناية إدخالات الغشاء مع الشرائح في صفيحة من ستة آبار تحتوي على 1.8 مل من وسط الثقافة المقطع.

حدد شريحة دماغية للتصوير من خلال عرض الشرائح من خلال مجهر مقلوب. اختر شريحة بها خلايا عصبية مفردة ساطعة في SVZ العلوي تهاجر شعاعيا نحو سطح كومة الشريحة. يشير وجود عمليات الفلورسنت الدقيقة للخلايا الدبقية الشعاعية التي تمتد على الصفيحة المترافقة بأكملها إلى وجود سقالة دبقية شعاعية سليمة تستخدم عن طريق الخلايا العصبية المترافقة المهاجرة.

انقل ملحق الغشاء بشريحة مختارة إلى طبق زجاجي القاع بقطر 50 ملم يحتوي على ملليلترين من وسط زراعة الشرائح. ضع الطبق في غرفة المناخ في المجهر متحد البؤر. اضبط الدقة على 512 × 512 بكسل.

قم بزيادة سرعة المسح الضوئي من 400 هرتز إلى 700 هرتز لزيادة معدل الإطارات من حوالي 1.4 إلى حوالي 2.5 إطار في الثانية. لا تستخدم أكثر من مرتين في المتوسط. حدد مكدس Z من خلال المنطقة المثقبة بالكهرباء بحجم خطوة 1.5 ميكرون.

ابدأ سلسلة الفاصل الزمني بأخذ مكدس Z كل 30 دقيقة. تسمح الإعدادات الموضحة بدقة وسطوع كافيين للصورة مع الحفاظ على تلف الصورة منخفضا أثناء الاستحواذ. يظهر هذا الفيلم الخلايا العصبية القشرية E16.5 وهي تهاجر من المناطق تحت البطينية إلى الصفيحة القشرية.

في Bcl11a floxed الوراثية الشرطية بعد التثقيب الكهربائي لبلازميد التحكم IRES-GFP في اليوم الجنيني 14.5. يتكون الفيلم من 108 إطارات بمعدل خمسة إطارات في الثانية. يمثل شريط المقياس 100 ميكرون.

أثر التثقيب الكهربائي لناقل بلازميد الحمض النووي الذي يحتوي على Cre-IRES-GFP على هجرة الخلايا العصبية القشرية في أدمغة Bcl11a المشروطة. كما هو موضح هنا ، يتحرك عدد قليل جدا من الخلايا العصبية عبر المنطقة المتوسطة للوصول إلى الصفيحة القشرية. يظهر هذا الفيلم استقطاب الخلايا العصبية القشرية من عنصر تحكم مسمى GFP على اليسار مقارنة بالخلايا العصبية من Bcl11a المتحولة على اليمين.

تم الحصول على هذه الآثار المتحركة للتحكم التمثيلي في الخلايا العصبية الطافرة Bcl11a من سلسلة الفاصل الزمني لثقافات شرائح E16.5 بدقة فاصل زمني مدتها ساعة واحدة. مرة أخرى ، تظهر البيانات من الدماغ الضابط على اليسار وتظهر بيانات من الدماغ الكهربائي Cre-IRES-GFP على اليمين. كما يتضح من هذه المجموعة من الآثار التمثيلية من التحكم وثقافات الشرائح الطافرة Bcl11a ، غالبا ما تخضع الخلايا العصبية الطافرة Bcl11a لمراحل متكررة من انخفاض سرعة الهجرة وتغيير الاتجاه بشكل عشوائي كما هو موضح برؤوس الأسهم الحمراء.

يمكن حساب ملفات تعريف السرعة من آثار الخلايا العصبية المهاجرة. كما هو موضح هنا ، فإن نسبة أكبر من الخلايا العصبية الطافرة Bcl11a لها سرعات هجرة أبطأ مقارنة بالضوابط. يمكن حساب زاوية الانحراف من بيانات التتبع.

كما يتضح من هذا الرسم البياني ، فإن الخلايا العصبية الطافرة Bcl11a التي تمثلها الأشرطة السوداء تظهر زوايا انحراف أكبر مقارنة بالضوابط. بمجرد إتقانها ، يمكن إجراء هذه التقنية في أقل من ساعتين لكل منهما للتثقيب الكهربائي في الرحم وإعداد ثقافة شريحة الدماغ العضوية. يمكن تكييف هذا الإجراء بسهولة لإجراء تحليل تجزيئي للجينات ذات الأهمية في الخلايا العصبية القشرية المهاجرة شعاعيا عن طريق اكتساب وفقدان الوظيفة بالإضافة إلى تجارب الأوعية الدموية.

بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية مراقبة الخلايا العصبية المهاجرة شعاعيا مباشرة في ثقافة الشرائح العضوية المحضرة من الأدمغة الجنينية المثقبة بالكهرباء عن طريق الفحص المجهري متحد البؤر بفاصل زمني.

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 125 في الرحم إليكتروبوراتيون ثقافة شريحة عضوي النمط التصوير الفاصل بين الزمن الهجرة شعاعي القشرة المخية نموذج الماوس واضطرابات الهجرة العصبية

Related Videos

عضوي النمط من الثقافة شريحة GFP - معربا عن أجنة الفئران لريال مدريد في الوقت ثمرة تصوير الأعصاب الطرفية

05:42

عضوي النمط من الثقافة شريحة GFP - معربا عن أجنة الفئران لريال مدريد في الوقت ثمرة تصوير الأعصاب الطرفية

Related Videos

16.4K Views

والفحص عن عضوي النمط شريحة الوقت الفاصل بين التصوير عالية الدقة للهجرة الخلايا العصبية في الدماغ بعد الولادة

10:41

والفحص عن عضوي النمط شريحة الوقت الفاصل بين التصوير عالية الدقة للهجرة الخلايا العصبية في الدماغ بعد الولادة

Related Videos

12.2K Views

أساليب لدراسة التشكل متعلق بالخلايا العصبية: خارج الحي رني Electroporation في اللحاء المخي الفئران الجنينية

10:12

أساليب لدراسة التشكل متعلق بالخلايا العصبية: خارج الحي رني Electroporation في اللحاء المخي الفئران الجنينية

Related Videos

12K Views

الوقت الفاصل بين التصوير للهجرة أرومة عصبية في شرائح الدماغ الأمامي الحاد للماوس الكبار

10:25

الوقت الفاصل بين التصوير للهجرة أرومة عصبية في شرائح الدماغ الأمامي الحاد للماوس الكبار

Related Videos

15.2K Views

تصوير الفاصل الزمني للهجرة الشعاعية للخلايا العصبية القشرية في شرائح الدماغ الجنينية للفأر المنقولة

02:59

تصوير الفاصل الزمني للهجرة الشعاعية للخلايا العصبية القشرية في شرائح الدماغ الجنينية للفأر المنقولة

Related Videos

352 Views

في الجسم الحي بعد الولادة التثقيب الكهربائي والوقت الفاصل بين التصوير من أرومة عصبية الهجرة في الدماغ الحادة ماوس شرائح

10:51

في الجسم الحي بعد الولادة التثقيب الكهربائي والوقت الفاصل بين التصوير من أرومة عصبية الهجرة في الدماغ الحادة ماوس شرائح

Related Videos

13.5K Views

التصوير حية من الانقسام في تطوير الجنينية الماوس اللحاء

09:25

التصوير حية من الانقسام في تطوير الجنينية الماوس اللحاء

Related Videos

15.6K Views

السابق الرحم Electroporation للوعضوي النمط من الثقافة شريحة ماوس الحصين الأنسجة

09:17

السابق الرحم Electroporation للوعضوي النمط من الثقافة شريحة ماوس الحصين الأنسجة

Related Videos

9.7K Views

الرحم السابقين انهانسر والثقافات أورجانوتيبيك شريحة من أدمغة الفأر الجنينية للعيش-التصوير لترحيل إينتيرنيورونس جابايرجيك

09:50

الرحم السابقين انهانسر والثقافات أورجانوتيبيك شريحة من أدمغة الفأر الجنينية للعيش-التصوير لترحيل إينتيرنيورونس جابايرجيك

Related Videos

10.2K Views

في الموقع تصور نمو المحور العصبي وديناميكيات مخروط النمو في مزارع شرائح الدماغ الجنينية الحادة خارج الجسم الحي

10:45

في الموقع تصور نمو المحور العصبي وديناميكيات مخروط النمو في مزارع شرائح الدماغ الجنينية الحادة خارج الجسم الحي

Related Videos

3.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code