سبتمبر 1, 2017
يعرض هذا العمل بروتوكول خطوة بخطوة لتقدير إعداد الخلايا العصبية تتميز ستيريولوجيكال غير متحيزة في أسود الدماغ الماوس باستخدام معدات الفحص المجهري القياسي (أي، مجهر ضوء، يجهز كائن جدول (x, y, z الطائرة)، وبرمجيات المجال العام لتحليل الصور الرقمية.
الهدف العام من هذا البروتوكول هو وصف التقدير التجسيمي القائم على التصميم لعدد خلايا دوبامين في SN للفأر باستخدام معدات الفحص المجهري القياسية. هذه الطريقة مفيدة لتقدير عدد الخلايا العصبية الدوبامينية في مادة الفأر السوداء لأبحاث مرض باركنسون قبل السريرية باستخدام علم القصير غير المتحيز القائم على التصميم. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنه يمكن تحقيقها باستخدام معدات الفحص المجهري القياسية دون الحاجة إلى إعداد استقسام كامل متاح تجاريا.
ستظهر الإجراء لويزا فريز ، فنية من مختبري. ابدأ بوضع دماغ فأر ثابت من بارافورمالدهايد في مصفوفة دماغية وإجراء قطع زائد 0.74 ملم من بريجما. انقل الجزء الذيلي من الدماغ بما في ذلك SN إلى 4٪ PFA في 0.1 مولار وقم بإصلاحه طوال الليل عند أربع درجات مئوية.
في اليوم التالي ، استبدل PFA بنسبة 30٪ سكروز في 0.1 مولار PBS واحتضنه لمدة يومين آخرين عند أربع درجات مئوية لحماية العينة بالتبريد. بعد يومين عندما يغرق الدماغ في السكروز ، ضع الأنسجة في Cryomold مملوء بمركب درجة حرارة القطع الأمثل وقم بتجميد الأنسجة ببطء في سائل جاف مبرد بالثلج الأيزوبنتان. استخدم ناظم البرد لقطع أقسام التبريد بحجم 30 ميكرون بشكل متسلسل في المستوى الإكليلي.
ضع علامة على نصف الكرة الأيمن عن طريق ثقب ثقب صغير في المنطقة العلوية من جذع الدماغ. اجمع أربع سلاسل من الأقسام تبدأ من سالب 2.46 ملم من بريجما وتنتهي عند 4.04 ملم من بريجما. انقل كل سلسلة من الأقسام إلى أنبوب مملوء بمادة التبريد وخزنها عند درجة حرارة 20 درجة مئوية تحت الصفر.
التقط صورا رقمية لأقسام SN الملطخة كيميائيا مناعيا باستخدام برنامج تصوير مقترن بالمجهر. ابدأ بتحديد التركيب الفعلي وسمك الأقسام في ثلاثة مواقع عد مختارة عشوائيا لكل قسم. انقر أولا فوق عرض الإزاحة العلوية لتحديد الجزء العلوي من القسم.
ثم انقر فوق إيقاف العرض العلوي. بعد ذلك ، انقر فوق عرض الإزاحة السفلية ثم انقر فوق إيقاف العرض السفلي. اكتب سمك القسم.
احسب منطقة الحماية عن طريق طرح ثلاثة ميكرونات من الإزاحة العلوية واكتب النتيجة في مربع الإزاحة العلوي. ثم اطرح ارتفاع 13 ميكرون للتشريح البصري من رقم الإزاحة العلوي واكتب النتيجة في مربع الإزاحة السفلي. حدد المعلمات التالية، الخطوات 14، الحجم 1.00.
حدد الدليل لحفظ الملف. انقر فوق التسلسل لبدء الاستحواذ. بعد الحصول على الصور ، انقر فوق المعالجة وحدد المعلمات التالية ، وجميع المستويات من التسلسل والمونتاج ومربعات السريعة والخياطة مع تداخل الصورة بنسبة 10٪ ابدأ في دمج الصور بالنقر فوق ابدأ.
سيؤدي ذلك إلى إنشاء صور مكدسة للتحليل. للبدء ، افتح الصورة بالنقر فوق ملف وافتحه. قم بتعيين مقياس الصورة باستخدام الأمر تحليل وتعيين المقياس.
من هذه الخطوة ، قم بتغيير الحجم المحدد من وحدات البكسل إلى الميكرون. حدد المكونات الإضافية ثم الشبكة ثم أمر خطوط نوع الشبكة لإدراج شبكة بشكل عشوائي. حدد مربع الإزاحة العشوائي.
حدد حجم مربع واحد داخل الشبكة على أنه 130 ميكرون × 130 ميكرون يساوي 16،900 ميكرون مربع. قم بتغيير نوع الصورة من لون 16 بت إلى لون RGB بالنقر فوق الصورة ثم اكتب ثم لون RGB. حدد موقع المادة السوداء بارس كومباكتا.
قم بتطويق المنطقة باستخدام أداة فرشاة الرسم باستخدام عرض الفرشاة 11. تراجع عن أمر تعيين المقياس بالنقر فوق تحليل ثم تعيين المقياس ثم النقر لإزالة المقياس لحسابه بالبكسل بدلا من الميكرون. التقط لقطة شاشة واحفظ ملف الصورة وافتح الملف الجديد باستخدام ImageJ.
حدد الفرشاة وعرض الفرشاة 25. ضع علامة على كل مربع شبكي يتصل ب SN لوضع التشريح البصري. حدد مربع شبكة واحد يتضمن أجزاء من SN. قم بقياس الزاوية اليسرى العليا من المربع باستخدام المؤشر في ImageJ لتحديد إحداثيات البداية x و y.
حدد قالب جدول البيانات بعنوان موضع التشريح البصري واحسب موضع التشريح البصري. ثم قم بتقدير رقم الخلية باستخدام جدول بيانات حساب عدد الخلايا كما هو موضح في الجزء المكتوب من البروتوكول. تظهر هذه الصورة منخفضة الطاقة جزءا من دماغ الفأر بعد تلطيخ TH للخلايا العصبية الدوبامينية.
يصور التكبير العالي الخلايا العصبية الدوبامين الإيجابية TH. يظهر الجزء الداخلي المنطقة المعبأة في تكبير متزايد. تظهر هذه الصورة سلسلة واحدة من أقسام SN الملطخة TH التي تغطي SN للفأر بالكامل من المنقاري إلى الذيلي.
يتم فصل كل قسم عن القسم المتتالي بمقدار 120 ميكرون. تم تقدير عدد الخلايا العصبية الإيجابية TH في SN للفأر الأيمن والأيسر باستخدام الطريقة الموضحة في هذا الفيديو وباستخدام نظام علم القصير المتاح تجاريا. كما هو موضح هنا ، أدت كلتا الطريقتين إلى تعداد خلايا مماثل ولم تكن هناك فروق ذات دلالة إحصائية بين مجموعات البيانات.
لا تنس أن العمل مع بارافورمالدهيد يمكن أن يكون خطيرا للغاية ويجب دائما اتخاذ الاحتياطات مثل ارتداء معدات الحماية الشخصية مثل القفازات الواقية أثناء تنفيذ هذا الإجراء. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية إجراء تقدير تجسيمي غير متحيز لعدد الخلايا العصبية الدوبامينية في مادة الفأر السوداء باستخدام طريقة الكسر البصري ومعدات الفحص المجهري القياسية.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
توضح هذه المقالة بروتوكولاً للتقدير الستيريولوجي غير المتحيز لأعداد الخلايا العصبية الدوبامينية في المادة السوداء لدى الفئران باستخدام أدوات المجهر القياسية. تهدف هذه الطريقة إلى تسهيل الأبحاث قبل السريرية في مرض باركنسون من خلال توفير نهج موثوق لقياس كمية الخلايا دون الحاجة إلى أنظمة ستيريولوجية متخصصة.
يعد القياس الكمي الدقيق لفقدان العصبونات الدوبامينية في المادة السوداء نقطة نهاية حاسمة في الأبحاث قبل السريرية لمرض باركنسون، وهو ما يوجه بشكل مباشر عملية التحقق من الأهداف وتقليل المخاطر الميكانيكية لاستراتيجيات الحماية العصبية. يتيح هذا البروتوكول إجراء تقدير ستيرولوجي موثوق وغير متحيز باستخدام معدات المجهر القياسية، مما يقلل الاعتماد على أنظمة الستيرولوجيا المتخصصة ويزيد من إمكانية الوصول إليها في سير عمل بيولوجيا الاكتشاف. ومن خلال تقديم بيانات كمية وقابلة للتكرار لعدد الخلايا، تدعم هذه الطريقة الثقة التنبؤية في اختبار فرضيات الأهداف في المراحل المبكرة وقرارات تحديد أولويات مجموعة المشاريع البحثية.
تندرج هذه الطريقة ضمن سلسلة عمليات الاكتشاف، بدءاً من اختبار فرضية الهدف مرورا بتحديد المركبات الواعدة وصولاً إلى تقييم الفعالية قبل السريرية، مما يوفر قراءة نسيجية كمية تعزز الفهم الآلي والثقة في الهدف.