-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
جراحة ستيريوتاكسيك للتلاعب بالجينات في خلايا أدمغة الفأر الولدان سترياتال
جراحة ستيريوتاكسيك للتلاعب بالجينات في خلايا أدمغة الفأر الولدان سترياتال
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Stereotaxic Surgery for Genetic Manipulation in Striatal Cells of Neonatal Mouse Brains

جراحة ستيريوتاكسيك للتلاعب بالجينات في خلايا أدمغة الفأر الولدان سترياتال

Full Text
16,288 Views
09:44 min
July 10, 2018

DOI: 10.3791/57270-v

Shih-Yun Chen1, Hsiao-Ying Kuo1, Fu-Chin Liu1,2

1Institute of Neuroscience,National Yang-Ming University, 2Brain Research Center,National Yang-Ming University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article outlines a stereotaxic surgery protocol for microinjecting reagents into the striatum of neonatal mouse brains using a homemade head-fixed device. This technique is particularly beneficial for genetic manipulation of neuronal cells within specific brain regions during neonatal development.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Genetic Manipulation
  • Developmental Biology

Background

  • Stereotaxic surgery is a critical method for targeting specific brain regions.
  • Neonatal brain development is vital for understanding genetic influences on neurodevelopment.
  • Creating a homemade device makes this method more accessible and cost-effective.

Purpose of Study

  • To develop a straightforward protocol for genetic manipulation in neonatal mice.
  • To enhance precision in microinjections using a homemade device.
  • To enable the study of neurodevelopmental processes at pivotal stages.

Methods Used

  • The primary method involves stereotaxic surgery within a controlled environment.
  • This study uses neonatal mice as a biological model for observing early genetic modifications.
  • The protocol includes detailed steps for anesthetizing pups and positioning them accurately for injections.
  • It emphasizes careful handling of surgical instruments to prevent complications during the procedure.

Main Results

  • Successful microinjections resulted in widespread expression of GFP and tdTomato in striatal cells, indicating effective genetic manipulation.
  • Results suggest a successful implementation of Cre loxP mediated recombination within the targeted brain regions.
  • The study supports the potential for subsequent research on genetic impacts during postnatal brain development.

Conclusions

  • This study demonstrates a feasible approach for conducting targeted genetic injections during early brain development.
  • The method is accessible and can be adapted for various experimental needs in neuroscience.
  • It underscores the importance of precise methodologies in understanding neuronal mechanisms and developmental biology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using a homemade device for surgeries?
A homemade device can be more cost-effective and customizable, allowing for greater accessibility and flexibility in experimental designs.
How is the neonatal pup prepared for injection?
The pup is anesthetized using hypothermia before being positioned in a head tray secured to the stereotaxic apparatus.
What types of outcomes can be measured after the procedure?
Key outcomes include gene expression patterns and potential alterations in neurodevelopment as observed through imaging and molecular assays.
Can this method be adapted for other types of injections?
Yes, the protocol can be modified for different reagents or therapeutic agents, depending on the experimental goals.
What are some limitations of this technique?
Challenges include ensuring accurate targeting during injections and the potential for variability in response based on handling and surgical precision.
How does this method facilitate studying genetic influences in development?
By allowing for precise genetic modifications in specific brain regions, researchers can investigate the roles of targeted genes in neurodevelopment.

يصف لنا على بروتوكول لجراحة ستيريوتاكسيك مع جهاز ثابت رئيس محلية صنع الكاشفات ميكروينجيكتينج في المخطط للعقول الماوس الأطفال حديثي الولادة. هذا الأسلوب يتيح التلاعب بالجينات في الخلايا العصبية في مناطق معينة من أدمغة الفأر حديثي الولادة.

يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في التطور الجيني والعصبي مثل أثناء تطور ما بعد الولادة. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنها تقنية بسيطة مع جهاز محلي الصنع. يعد العرض المرئي لهذه الطريقة أمرا بالغ الأهمية لأن إجراء الحقن المستهدفة في الدماغ يتطلب اهتماما كاملا بالتفاصيل.

للبدء ، اجعل حاملا يستخدم الجراء حديثي الولادة في جهاز تجسيم. اصنع صينية الرأس أولا. اقطع حوالي 1/5 من قاع أنبوب الطرد المركزي سعة 1.5 مل لعمل فتحة لرأس جرو حديثي الولادة.

بعد ذلك، حدد صندوق طرف ماصة فارغ يناسب قاعدة الجهاز التجسيمي. ثم استخدم الغراء الساخن لتثبيت صينية الرأس بقاعدة صندوق الأطراف. بعد ذلك ، قم بلصق شريط تضمين المناديل على الصندوق حيث يمكنه دعم جذع الجرو أثناء تثبيت رأسه.

الآن قم بإعداد 30 إبر من الفولاذ المقاوم للصدأ للحقن. أولا ، قم بتنظيفها مسبقا عن طريق نقعها في الكلوروفورم لمدة ثلاثة أيام في قارورة زجاجية. بعد ثلاثة أيام ، قم بإزالة الإبر بعناية واغسلها بالإيثانول المطلق لمدة 20 دقيقة وب 50 دورة في الدقيقة من التحريض.

ثم اغسلها ثلاث مرات في 70٪ من الإيثانول لمدة 10 دقائق لكل غسلة أيضا مع التحريض. بعد الغسيل ، اترك الإبر تجف في الهواء واحفظها في صندوق نظيف في درجة حرارة الغرفة حتى الاستخدام. بالنسبة لتجميع الحقن المجهري ، استخدم قطعة بطول خمسة سنتيمترات من أنابيب البولي إيثيلين PE20 لربط أنبوب PE10 بحقنة قياس 26 10 ميكرولتر.

قم بتأمين التقاطع باستخدام cyanoacrylate. بعد ذلك ، قم بتركيب إبرة الحقن الجديدة قياس 30 على الطرف الآخر من أنبوب PE10. الآن قم بتحميل حقنة الحقن المجهري سعة 10 ميكرولتر.

قم بإزالة المكبس واستخدم حقنة أخرى قياس 25 لتحميل المجموعة بالماء المقطر المعقم لإزالة الهواء من الأنبوب. ثم ضع المكبس مرة أخرى إلى حقنة الميكرولتر وادفع المكبس حتى يبقى ميكرولتر فقط من الماء المقطر في البرميل وليس أقل. بعد ذلك ، قم بتركيب حقنة الميكرولتر بعناية على مضخة حقنة microflow.

ثم ماصة كميات صغيرة من الصبغة الخضراء السريعة المفلترة بنسبة 0.1٪ في سوائل الفيروس التجريبية على قطعة من البارافيلم الآن استنشق كمية صغيرة من الهواء في المحقنة حتى تظهر فقاعة هواء بين إبرة الحقن والأنبوب. ثم قم بتحميل 0.7 ميكرولتر من محلول Fast Green المصفى لاختبار تدفق السوائل في أنبوب الحقن المجهر.

إذا كان التدفق جيدا ، فقم بشفط كمية صغيرة أخرى من الهواء لعمل فقاعة هواء ثانية واتبعها تحميل محلول الحقن في أنبوب الحقن المجهر. قم بتوصيل إبرة الحقن المجهري وتثبيتها بالجهاز التجسيمي والمضي قدما في الحقن المجهري للفئران حديثي الولادة. استعدادا للجراحة ، امسح الأداة التجسيمية جيدا بنسبة 70٪ من الإيثانول وقم بتعقيم الأدوات الجراحية بنسبة 70٪ من الإيثانول.

ثم تخدير حديث الولادة باستخدام انخفاض حرارة الجسم. ضع الجرو في قفاز من اللاتكس واغمره في الثلج المجروش حتى رقبته لمدة خمس دقائق. ثم اضغط على أقدام الجرو بالملقط للتأكد من عدم وجود رد فعل دواسة.

بعد ذلك ، ضع الجرو مع القفاز في صينية الرأس وضع بعض الثلج المجروش حول غلاف اللاتكس للحفاظ على تخدير انخفاض حرارة الجسم. ثم افرك رأس الجرو بنسبة 70٪ من الإيثانول وحدد موقع معلم لامدا. ضع علامة عليها بعلامة.

ثم صوب طرف الإبرة إلى لامدا واضبط الإحداثيات الأمامية / الخلفية والوسطى / الجانبية على الصفر. بعد ذلك ، استشارة أطلس الدماغ ، انقل ذراع الحقن إلى الموقع المستهدف. على سبيل المثال ، يقع مخطط صغار P2 على بعد 2.4 ملم من لامدا ، و 1.0 ملم على جانبي خط الوسط ، و 1.7 ملم بطني.

بعد ذلك ، حدد موضع الصبغة الخضراء السريعة على أنبوب PE10 باستخدام قلم. ثم ابدأ ببطء في اختراق الإبرة من خلال الجلد والجمجمة حتى يلامس طرف الإبرة سطح الجمجمة. اضبط الإحداثيات الظهرية / البطنية على صفر.

ثم اخفض الإبرة ببطء إلى الموقع المستهدف. بمجرد الوصول إلى موضعه ، انتظر لمدة دقيقة واحدة للسماح للحمة بالعودة إلى شكلها الطبيعي. ثم قم بتشغيل برنامج الحقن المجهري بمعدل 100 نانولتر في الدقيقة.

أثناء الحقن ، شاهد صبغة Fast Green تتحرك في أنبوب PE. من الأهمية بمكان اختراق الإبرة ببطء عبر الجلد والجمجمة حتى يلامس طرف الإبرة سطح الجمجمة. أثناء الحقن ، من الضروري مشاهدة صبغة Fast Green تتحرك في أنبوب PE.

بعد اكتمال الحقن ، انتظر دقيقة واحدة ثم ارفع الإبرة ببطء إلى 1/2 من عمق DV المخترق. ثم انتظر 30 ثانية أخرى قبل الشروع في السحب البطيء للإبرة من رأس الجرو. بعد الانتهاء من الحقن ، من المهم الانتظار دقيقة واحدة قبل رفع الإبرة ببطء إلى 1/2 من عمق DV المخترق.

ثم انتظر 30 ثانية أخرى قبل سحب الإبرة ببطء من رأس الجرو. بعد حقن جميع المواقع المستهدفة ، قم بتسخين الجرو لمدة 20 دقيقة في حاضنة 33 درجة مئوية. تحقق من الجرو كل خمس دقائق حتى يستعيد الاستلقاء القصي.

ثم أعد الجرو إلى سده. تم حقن 200 نانو لتر من الفيروس الذي يعبر عن Cre DNA recombinase المدمجة مع GFP في المخطط P2 للفئران Ai14. عبرت هذه الفئران عن جين tdTomato reporter عند الحذف بوساطة Cre لشريط توقف محاط ب loxP.

تم حصاد الأدمغة في P14 للتلوين المناعي ل GFP و tdTomato. كانت العديد من الخلايا الإيجابية ل GFP المنقولة AAV موجودة في جميع أنحاء المخطط مما يشير إلى عدوى واسعة النطاق للخلايا المخططة بواسطة فيروسات AAV EGFP Cre. تم العثور على تعبير واسع النطاق مماثل عن tdTomato أيضا في المخطط.

عند الفحص المجهري عند التكبير العالي ، من الواضح أنه تم العثور على جميع الخلايا المخططة الإيجابية ل GFP تشارك في التعبير عن جين tdTomato reporter. علاوة على ذلك ، tdتم اكتشاف إشارات الطماطم في أطراف محورية مفترضة في الكرة الشاحبة ، في المادة السوداء بارس شبكية ، المناطق المستهدفة من الخلايا العصبية الإسقاط المخططة والمخططة. تشير هذه النتائج معا إلى إعادة تركيب الحمض النووي بوساطة Cre loxP ناجحة ناتجة عن التعبير بوساطة AAV لنشاط Cre في الخلايا العصبية المخططة لحديثي الولادة.

بمجرد إتقانها ، يمكن إجراء هذه التقنية في 30 دقيقة للحقن المخطط الثنائي إذا تم إجراؤها بشكل صحيح. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر أن هذه جراحة دقيقة في دماغ حديثي الولادة تتطلب الصبر والحذر. من هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل علم البصريات الوراثي وعلم الكيمياء الوراثي من أجل تحليل نضج أثناء تطور ما بعد الولادة.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب 137 المسألة جراحة ستيريوتاكسيك والمخطط والفئران حديثي الولادة microinjection إف ولجنة المساواة العرقية لوكسب التلاعب بالجينات

Related Videos

التجسيمي جراحة الآفات Excitotoxic من مناطق محددة في الدماغ في الجرذ الكبار

12:45

التجسيمي جراحة الآفات Excitotoxic من مناطق محددة في الدماغ في الجرذ الكبار

Related Videos

36.4K Views

توسيع الجنينية والكبار الخلايا الجذعية العصبية من قبل في الرحم الصعق الكهربائي أو حقن التجسيمي الفيروسية

19:45

توسيع الجنينية والكبار الخلايا الجذعية العصبية من قبل في الرحم الصعق الكهربائي أو حقن التجسيمي الفيروسية

Related Videos

17.5K Views

الحقن التجسيمي للفيروسات من أجل تعديل جيني مستقر في نموذج الفأر

04:12

الحقن التجسيمي للفيروسات من أجل تعديل جيني مستقر في نموذج الفأر

Related Videos

284 Views

تحريض الورم الأرومي الدبقي باستخدام التبديل بوساطة SB: تقنية لتوليد نموذج فأر جديد باستخدام التكامل بوساطة الينقولات لبلازميد SB في دماغ الفأر حديثي الولادة

05:11

تحريض الورم الأرومي الدبقي باستخدام التبديل بوساطة SB: تقنية لتوليد نموذج فأر جديد باستخدام التكامل بوساطة الينقولات لبلازميد SB في دماغ الفأر حديثي الولادة

Related Videos

2.5K Views

الحقن المجهري التجسيمي لناقل فيروسي للتلاعب الجيني في جرو الفأر المخطط

04:15

الحقن المجهري التجسيمي لناقل فيروسي للتلاعب الجيني في جرو الفأر المخطط

Related Videos

501 Views

الحقن الفيروسي التجسيمي لتحرير الجينات العصبية المستهدفة في دماغ الفأر

04:17

الحقن الفيروسي التجسيمي لتحرير الجينات العصبية المستهدفة في دماغ الفأر

Related Videos

789 Views

زرع الخلايا السليفة العصبية الداخلية المشتقة من الإنسان في الحصين جرو الفأر

02:26

زرع الخلايا السليفة العصبية الداخلية المشتقة من الإنسان في الحصين جرو الفأر

Related Videos

333 Views

مستقر وكفاءة التحوير الوراثي للخلايا في الكبار ماوس V-SVZ لتحليل العصبية الخلايا الجذعية الذاتية الحكم والآثار لغير المتمتعة بالحكم الذاتي

08:48

مستقر وكفاءة التحوير الوراثي للخلايا في الكبار ماوس V-SVZ لتحليل العصبية الخلايا الجذعية الذاتية الحكم والآثار لغير المتمتعة بالحكم الذاتي

Related Videos

9.7K Views

Cortex-، Hippocampus-، Thalamus-، Hypothalamus-، الجانبي الحاجزي Nucleus- والمخطط محددة في الرحم Electroporation للفي C57BL / 6 الماوس

06:00

Cortex-، Hippocampus-، Thalamus-، Hypothalamus-، الجانبي الحاجزي Nucleus- والمخطط محددة في الرحم Electroporation للفي C57BL / 6 الماوس

Related Videos

28.9K Views

الفيروسة البطيئة بوساطة التلاعب الجيني والتخيل من العصبونات الحسية الشمية في الجسم الحي

11:34

الفيروسة البطيئة بوساطة التلاعب الجيني والتخيل من العصبونات الحسية الشمية في الجسم الحي

Related Videos

16.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code