-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
عضلة رافعة أوريس التحضير لدراسة انتقال الأعصاب الثدييات المشبك في ظروف الجهد
عضلة رافعة أوريس التحضير لدراسة انتقال الأعصاب الثدييات المشبك في ظروف الجهد
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Levator Auris Longus Preparation for Examination of Mammalian Neuromuscular Transmission Under Voltage Clamp Conditions

عضلة رافعة أوريس التحضير لدراسة انتقال الأعصاب الثدييات المشبك في ظروف الجهد

Full Text
9,805 Views
10:45 min
May 5, 2018

DOI: 10.3791/57482-v

Steven R. A. Burke1, Eric J. Reed1, Shannon H. Romer1, Andrew A. Voss1

1Department of Biological Sciences,Wright State University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for isolating the mouse levator auris longus (LAL) muscle and its innervating nerve to record spontaneous and nerve-evoked postsynaptic potentials and currents at the neuromuscular junction. This method can elucidate key aspects of synaptic transmission, including neurotransmission mechanisms under normal and disease conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Electrophysiology
  • Synaptic physiology

Background

  • The protocol focuses on the mouse levator auris longus muscle.
  • It assesses the mechanisms of synaptic transmission.
  • The study aims to explore both normal and pathological states.
  • Combining electrophysiological recordings with optical techniques provides a broader understanding of synaptic dynamics.

Purpose of Study

  • To isolate the LAL muscle and its nerve for detailed synaptic measurements.
  • To enhance understanding of end plate current size and quantal content.
  • To evaluate neurotransmission relationships with muscle excitability.

Methods Used

  • This study employs a mouse model for nerve and muscle preparation.
  • Electrophysiological techniques are used, including voltage and current-clamp recordings.
  • No multiomics workflows are mentioned.
  • The procedure is expected to take about an hour when performed proficiently.
  • Critical steps include careful isolation of the LAL and maintenance of physiological conditions during recording.

Main Results

  • The protocol facilitates direct observation of synaptic function through electrophysiological data collection.
  • Insights into the excitation and neurotransmission mechanisms at the neuromuscular junction are anticipated.
  • No details on specific molecular changes or experimental results were provided.
  • The study aims to enhance understanding of neuronal communication and its implications for both health and disease.

Conclusions

  • This method enables the investigation of synaptic transmission dynamics on a per-synapse basis.
  • The insights gained can contribute to understanding diseases affecting neuromuscular transmission.
  • This study highlights the potential for detailed exploration of synaptic physiology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the LAL muscle for this study?
The LAL muscle provides a well-defined model for studying synaptic transmission due to its accessible location and the distensible nature of the innervating nerve.
How is the nerve-muscle preparation achieved?
The preparation involves meticulous dissection under a stereo-dissecting microscope, ensuring minimal damage to the nerves.
What parameters can be measured using this method?
Researchers can measure synaptic currents, end plate potentials, and evaluate neurotransmission characteristics.
How can this method be applied to other organisms?
While the protocol is designed for mice, the techniques can be adapted for studying similar neuromuscular junctions in species ranging from flies to mammals.
What are some limitations of this technique?
The procedure can be technically challenging due to the fragility of the nerve-muscle prep, requiring practice for successful implementation.
What insights does this research aim to provide?
The study aims to elucidate the mechanisms of synaptic transmission and their implications for neuromuscular diseases.

يستخدم البروتوكول، المذكورة في هذه الورقة عضلة عضلة رافعة أوريس (ال) الماوس لتسجيل عفوية وإمكانيات بوستسينابتيك أثارت العصبية (المشبك الحالية) والتيارات (الجهد-المشبك) عند تقاطع العصبية والعضلية. استخدام هذه التقنية يمكن أن توفر أفكاراً رئيسية في آليات انتقال متشابك في ظل الظروف العادية، والمرض.

الهدف العام من هذا الإجراء هو عزل عضلة الرافعة الطويلة وأعصابها من أجل تسجيل التيارات المشبكية عند التقاطع العضلي العصبي. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في علم وظائف الأعضاء المشبكي مثل الحجم الحالي للوحة النهاية والمحتوى الكمي واحتمال الإطلاق والعلاقات بين النقل العصبي واستثارة العضلات. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أن التسجيلات الفيزيولوجية الكهربية التفصيلية من مشبك واحد يمكن دمجها بسهولة مع التجارب البصرية للخلايا الحية.

على الرغم من أن هذه الطريقة يمكن أن توفر نظرة ثاقبة على الوظيفة المشبكية والتواصل التغذية الراجعة بين العصب والعضلات ، إلا أنه يمكن تطبيقها أيضا على أنظمة أخرى تتراوح من ذبابة الفاكهة إلى الثدييات. بشكل عام ، سيكافح الأفراد الجدد في هذه الطريقة لأن إعداد عضلات العصب في الثدييات هش ، وخاصة العصب. يمكن أن يكون الحصول على بيانات مشبك الجهد اللاحقة وتفسيرها بعناية أمرا صعبا أيضا.

بمجرد إتقانها ، يمكن القيام بهذه التقنية في ساعة واحدة إذا تم إجراؤها بشكل صحيح. سيظهر الإجراء ستيف بيرك من مختبري. لبدء هذا الإجراء ، تحت مجهر تشريح مجسم ، قم بعمل شق صغير في الجلد على ظهر الفأر على مستوى لوح الكتف.

استخدم زوجا من مقص التشريح المجهري. قطع الجلد فوق الرأس والظهر. بعد ذلك ، اسحب الجلد على طول الشق بالقرب من لوح الكتف.

قطع العضلات التي هي أدنى من LAL عن طريق البدء من لوح الكتف الأيمن. ثم ارفع الأنسجة المقطوعة برفق على يمين خط الوسط. قم بعمل قطع باتجاه الأذن اليسرى مع ضغط شفرات المقص على الجمجمة لإزالة عدة طبقات من العضلات الأدنى من LAL الأيسر.

تجنب قطع العصب الذي يعصب LAL الذي يلتف حول قناة الأذن ويدخل العضلات الموجودة على الجانب الإنسي من الأذن. استمر في قطع قناة الأذن مع الحفاظ على أكبر قدر ممكن من العصب متصلا. بعد ذلك ، قم بقطع الأنسجة الدهنية خلف قناة الأذن على طول الجزء البطني الجانبي من الأذن.

قطع على طول لوح الكتف الأيسر على غرار الإجراءات التي يتم إجراؤها على الجانب الأيمن لإزالة العضلات تماما من الماوس. بعد ذلك ، قم بقطع صيوان الأذن على طول القاعدة تاركا الجزء الغضروفي من الأذن متصلا ب LAL. اقلب العضلات بحيث يكون الجانب السفلي متجها لأعلى.

لعزل عضلة LAL ، ضع LAL والأنسجة المحيطة به في طبق بتري مع قاع مطاط مرن من السيليكون وقم بتثبيت الأنسجة المقطوعة في الأسفل. اغسل الأنسجة بشكل متكرر في محلول ملحي فسيولوجي. بعد ذلك ، ضع دبوس حشرة عبر قناة الأذن لتثبيت التحضير في مكانه.

باستخدام دبابيس أصغر ، قم بتثبيت الأنسجة المتبقية على الجانب الآخر من خط الوسط من LAL. استخدم زوجا من الملقط. اسحب الجلد برفق لأعلى على الجزء الجانبي من الأذن لتمديد العضلات للخارج ووضع دبوس صغير عبر الجلد.

كرر هذه الخطوة حتى يتم تثبيت الأنسجة جيدا في الطبق. قم بإزالة العضلات التي تغطي LAL وتلك المرتبطة ب LAL عبر النسيج الضام وتكون مشدودة بشكل خاص بالقرب من خط الوسط. بعد ذلك ، اسحب الطبقة العضلية العلوية واقطع النسيج الضام مع توجيه الشفرات نحو طبقة العضلات التي يتم سحبها.

اقطع باتجاه خط الوسط حتى حوالي 3/4 من الطريق إلى خط الوسط واستمر في إزالة طبقات العضلات حتى يبقى LAL فقط. أثناء عملية التنظيف ، تأكد من عدم تلف الأعصاب. بعد ذلك ، قم بإزالة بعض النسيج الضام المتبقي الذي يغطي LAL للمساعدة في انحسام الأقطاب الكهربائية.

قم فقط بإزالة الأنسجة التي يمكن إجراؤها بسهولة دون التعرض لخطر إتلاف LAL في هذه العملية. لتحديد العصب الذي يعصب LAL ، باستخدام محفز الأعصاب ، المس الأعصاب بمحفز العصب. عندما تنقبض العضلة ، يتم تحديد العصب الصحيح.

بعد ذلك ، أمسك الأنسجة القريبة من العصب بعناية واستخدم المقص الزنبركي لفصل العصب عن الأنسجة المحيطة بالأذن. لتقليل الضرر ، احتفظ بمعظم العصب مغروسا في بعض الأنسجة المحيطة والتي سيتم استخدامها لاحقا لتأمين العصب في طبق التسجيل. في هذه المرحلة ، يمكن للمحقق أن يأخذ استراحة لمدة ساعة طالما أن LAL مغمور في 20 مل أو أكثر من محلول ملحي فسيولوجي.

بعد ذلك ، قم بفك تثبيت العضلات ونقلها إلى إدراج المرحلة تحت مجهر التشريح لتجارب الفيزيولوجيا الكهربية. دبوس العضلة في النهايات وعلى طول حافتها. ضع العصب بشكل عمودي على ألياف العضلات وقم بتثبيته في قاع الطبق من خلال بعض الأنسجة الزائدة التي تركت سليمة في نهاية العصب.

حافظ على الأنسجة مغمورة في محلول ملحي فسيولوجي في جميع الأوقات. لتجربة الفيزيولوجيا الكهربية ، قم بتأمين غرفة التروية باستخدام LAL إلى مرحلة المجهر. ضع القطب المرجعي في كوب مملوء بكلوريد البوتاسيوم ثلاثي المولار المتصل بغرفة التسجيل عبر جسر أجار.

في هذه المرحلة، ضع القطب الكهربائي المحفز للأعصاب على العصب. قم بتعريض LAL الإعدادي ل 4-Di-2-Asp لمدة 10 دقائق لتحقيق الإزهار الكافي لتصور الوصلة العصبية العضلية. بعد 10 دقائق ، استبدل محلول 4-Di-2-Asp بمحلول الكالسيوم العادي.

في غضون ذلك ، املأ الشعيرات الدموية الزجاجية بالمحاليل المناسبة لأقطاب استشعار الجهد وتمرير التيار. اضغط برفق على الشعيرات الدموية لإزالة أي فقاعات هواء وقم بتثبيت الشعيرات الدموية المملوءة في حامل القطب الكهربائي على المنصة. باستخدام مجهر مستقيم مع مجال ساطع قياسي وإضاءة الإزهار ، ابحث عن شريط ساطع من التقاطعات العصبية العضلية الخضراء الفلورية التي تعمل بشكل عمودي على ألياف العضلات على طول الإعداد بهدف التكبير المنخفض للانحرافات المائية.

بعد ذلك ، قم بالتبديل إلى هدف تكبير أعلى للنمو المائي لتحديد تقاطع عصبي عضلي على الطبقة العليا من العضلات من أجل فحصه باستخدام الفيزيولوجيا الكهربية. باستخدام المجال الساطع في المقام الأول ، ضع القطب فوق غشاء العضلات في حدود 100 ميكرون من التقاطع العصبي العضلي المحدد. يوضح هذا الشكل مثالا على النبضات الحالية واستجابات الجهد من ألياف LAL واحدة تحت مشبك تيار من فأر R62 من النوع البري البالغ من العمر 12 أسبوعا.

تم الحصول على السجلات في محلول ملحي فسيولوجي طبيعي ويشير وجود mEPPs إلى أن هذه السجلات مأخوذة من لوحة نهاية المحرك. فيما يلي تسجيل تمثيلي ل EPC واثنين من mEPCs التي تم الحصول عليها في ظل ظروف مشبك الجهد. يوضح هذا الشكل EPCs و mEPCs المتراكبة من ألياف تمثيلية.

بمجرد إتقانها ، يمكن القيام بهذه التقنية في ساعة واحدة إذا تم إجراؤها بشكل صحيح. باتباع هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل تصوير الخلايا الحية باستخدام أصباغ الغشاء مثل FM143 أو علم الأنسجة من أجل الإجابة على الأسئلة المتعلقة بامتصاص إطلاق الحويصلة أو التغيرات المورفولوجية. بعد تطويرها ، مهدت هذه التقنية الطريق للباحثين في مجال علم وظائف الأعضاء لاستكشاف الانتقال المشبكي والتواصل بين الخلايا العصبية في الكائنات الحية التي تتراوح من ذبابة الفاكهة إلى الثدييات.

بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية عزل عضلة الرافعة الرافعة الطويلة المعصبة من أجل تسجيل التيارات المشبكية عند التقاطع العصبي العضلي. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر توخي الحذر الشديد في إزالة الأنسجة العضلية المجاورة ل LAL وعزل العصب.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب المسألة 135 الوصلات العصبية العضلية وانتقال متشابك الكهربية المشبك الجهد الحالي اندبلت إمكانات اندبلت ضادات إمكانات بوستسينابتيك بوستسينابتيك الحالية وعليه

Related Videos

الكهربية طرق تسجيل الإمكانيات متشابك من يرقات ذبابة الفاكهة من NMJ

05:46

الكهربية طرق تسجيل الإمكانيات متشابك من يرقات ذبابة الفاكهة من NMJ

Related Videos

21.6K Views

تشريح والتسجيل من مفرق العضلية جيم ايليجانس

15:19

تشريح والتسجيل من مفرق العضلية جيم ايليجانس

Related Videos

16.1K Views

الكهربية في تسجيل ذبابة الفاكهة الأجنة

11:31

الكهربية في تسجيل ذبابة الفاكهة الأجنة

Related Videos

11.9K Views

تسجيل التيارات المشبكية عند ذبابة الفاكهة اليرقات العصبية العضلية

03:11

تسجيل التيارات المشبكية عند ذبابة الفاكهة اليرقات العصبية العضلية

Related Videos

505 Views

تنفيذ المشبك الحيوي مع المواصلة متشابك والاصطناعية في خلايا الشبكية العقدة ماوس

11:46

تنفيذ المشبك الحيوي مع المواصلة متشابك والاصطناعية في خلايا الشبكية العقدة ماوس

Related Videos

12.8K Views

قياس الأداء الوظيفي الوصلات العصبية العضلية

10:40

قياس الأداء الوظيفي الوصلات العصبية العضلية

Related Videos

18.6K Views

في فيفو القياس الكهربية للعصب الزندي الفئران مع اختبار استثارة محواري

04:56

في فيفو القياس الكهربية للعصب الزندي الفئران مع اختبار استثارة محواري

Related Videos

9.9K Views

الأعمال التحضيرية وبروتوكولات "كل خلية التصحيح المشبك تسجيل" ليفيس النمو تيكتال الخلايا العصبية

05:25

الأعمال التحضيرية وبروتوكولات "كل خلية التصحيح المشبك تسجيل" ليفيس النمو تيكتال الخلايا العصبية

Related Videos

10K Views

تسجيل انتقالات الكالسيوم في الوصلة العصبية العضلية للفأر بدقة زمنية عالية باستخدام المجهر البؤري

11:12

تسجيل انتقالات الكالسيوم في الوصلة العصبية العضلية للفأر بدقة زمنية عالية باستخدام المجهر البؤري

Related Videos

2.3K Views

مجتمعة في الجسم الحي التثقيب الكهربائي وإعادة التعصيب على المدى القصير للعضلة الهيكلية الرافعة القحفية Auris Longus

04:44

مجتمعة في الجسم الحي التثقيب الكهربائي وإعادة التعصيب على المدى القصير للعضلة الهيكلية الرافعة القحفية Auris Longus

Related Videos

900 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code