-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
نموذج إصابة المورفولوجية في فيفو لدراسة نيوروريجينيريشن في الطرفية والجهاز العصبي المركزي
نموذج إصابة المورفولوجية في فيفو لدراسة نيوروريجينيريشن في الطرفية والجهاز العصبي المركزي
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
A Drosophila In Vivo Injury Model for Studying Neuroregeneration in the Peripheral and Central Nervous System

نموذج إصابة المورفولوجية في فيفو لدراسة نيوروريجينيريشن في الطرفية والجهاز العصبي المركزي

Full Text
10,251 Views
09:55 min
May 5, 2018

DOI: 10.3791/57557-v

Dan Li*1, Feng Li*1, Pavithran Guttipatti1, Yuanquan Song1,2

1Raymond G. Perelman Center for Cellular and Molecular Therapeutics,The Children's Hospital of Philadelphia, 2Department of Pathology and Laboratory Medicine,University of Pennsylvania

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

نقدم هنا، بروتوكول باستخدام المورفولوجية الحسية العصبية-نموذج الإصابة العصبية الجذعية أربوريزاتيون (دا)، الذي يجمع في فيفو يعيش التصوير واثنين-فوتون الليزر أكسوتومي/ديندريوتومي والأدوات الوراثية يطير قوية، منصة لفحص المروجين ومثبطات نيوروريجينيريشن المحتملة.

الهدف العام من نموذج إصابة الخلايا العصبية الحسية ذبابة الفاكهة هو الجمع بين التصوير الحي في الجسم الحي ، وحص العضلات بالليزر ثنائي الفوتون / استئصال العضلات بالليزر ، وصندوق الأدوات الوراثي القوي للذبابة في منصة لفحص المحفزات المحتملة ومثبطات التجديد العصبي. ستساعد هذه الطريقة في معالجة الأسئلة الرئيسية في مجال التوليد العصبي ، مثل تحديد منظم داخلي وخارجي جديد للتوليد العصبي ، سواء في الجهاز العصبي المحيطي أو المركزي. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنه يمكن فحص المرشحين الجدد للتجديد العصبي بطريقة سهلة وسريعة ورخيصة.

على الرغم من أن هذا النظام يمكن أن يوفر نظرة ثاقبة للتجديد العصبي ، إلا أنه يمكن تطبيقه أيضا على أنظمة أخرى ، مثل الأمراض التنكسية العصبية والتفاعلات بين الخلايا الدبقية العصبية. بشكل عام ، سيكافح الأفراد الجدد في هذه الطريقة لأن الإعدادات التجريبية المختلفة التي تستخدم أنواعا مختلفة من الخلايا العصبية تستخدم لنمذجة المحور العصبي مقابل تجديد التغصن. لجمع اليرقات ، قم بإعداد زجاجات الثقافة على النحو التالي.

استخدم شفرة لعمل ثقب 1.5 سم في أحد جدران زجاجة ثقافة ذبابة الفاكهة ، واملأ الحفرة بكرة قطنية للتهوية. ثم ضعي القليل من معجون الخميرة على طبق أجار عصير العنب ، واستخدمي الطبق لسد الفتحة الرئيسية للزجاجة. في مثل هذه الزجاجة ، قم بإعداد صليب من 10 إناث عذراء وخمسة ذكور ، وقم بتغيير اللوحة يوميا أثناء الزراعة عند 25 درجة مئوية.

استزراع الصفائح المجمعة بمنديل مبلل مبلل بحمض البروبيونيك الخفيف لمنع التلوث. من الصفائح المستزرعة ، حصاد اليرقات في المرحلة المطلوبة باستخدام الملقط. انقل اليرقات المقطوفة برفق إلى طبق أجار عصير العنب الجديد بدون معجون الخميرة.

بعد تنظيف أنفسهم عن طريق الزحف ، يمكن تصويرهم. لبدء كل جلسة تصوير، قم بتشغيل ليزر التصوير والمجهر. للإصابة ، استخدم مجهر ثنائي الفوتون.

في برنامج التصوير ، اضبط الليزر لعرض GFP عند 930 نانومتر بقوة قصوى تبلغ 1950 مللي واط. حدد وضع مسح الخط ، وافتح الثقب بالكامل. ثم قم بزيادة شدة الليزر إلى حوالي 20٪ من الطاقة الكاملة لإحداث إصابة PNS ، أو إلى 50٪ إلى 100٪ من الطاقة الكاملة لإحداث إصابة VNC.

بعد ذلك ، حدد إطار 512 بكسل مربع للمسح الضوئي ، واستخدم أعلى سرعة مسح ممكنة. استخدم متوسط عدد واحد ، وعمق بت من ثمانية بتات. ثم اضبط الكسب على حوالي 750 ، واضبط الإزاحة على الصفر.

الآن احفظ هذا البروتوكول التجريبي المحدد مسبقا ك 2P GFP 930 Ablaation ، مما يسمح بإعادة الاستخدام بسهولة في المزيد من التجارب. للتصوير بعد الإصابة ، استخدم مجهر متحد البؤر. قم أولا بإعداد ليزر الأرجون عند 488 نانومتر.

حدد علامة التبويب اكتساب ثم حدد Z Stack. تحت الليزر ، قم بتشغيل ليزر الأرجون 488 نانومتر. انتقل بعد ذلك إلى القنوات ، وحدد ليزر 488 نانومتر ، وقم بزيادة طاقة الليزر إلى خمسة إلى 10٪ بالنسبة للثقب ، استخدم الخيار لوحدة منطقة واحدة إلى اثنتين.

ثم اضبط الكسب على 650. الآن في وضع الاكتساب ، حدد 1024 بكسل مربع كمسح ضوئي للإطار. استخدم أقصى سرعة مسح.

استخدم متوسط عدد اثنين وعمق بت ثمانية بتات. احفظ هذا البروتوكول قبل التجريبي بتنسيق GFP Imaging. ابدأ بتخدير اليرقات.

في غطاء الدخان ، ضع طبقا زجاجيا مقاس 60 ملم في طبق بتري بلاستيكي يبلغ طوله 15 سم. ثم قم بطي قطعة من المناديل الورقية وضعها في الطبق الزجاجي. ضع صفيحة أجار العنب على المنديل بعد إضافة ثنائي إيثيل الأثير.

بعد ذلك ، على شريحة زجاجية ، ضع قطرة واحدة من زيت الهالوكربون 27 في المنتصف ، وضع بقعة من الشحوم المفرغة على كل زاوية من الزوايا الأربع. ثم استخدم ملقط لنقل يرقة واحدة إلى صفيحة الأجار ، وقم بتغطية الطبق الزجاجي لتخدير اليرقة. بمجرد أن تتوقف اليرقة عن الحركة ، انقلها بعناية إلى زيت الهالوكربون ، مع وضع رأسها في وضع مستقيم.

ثم ضع غطاء على الشريحة واضغط عليه برفق حتى تلامس اليرقة. بعد ذلك ، استخدم قوة لطيفة لتحريك زلة الغطاء لدحرجة الخلايا المراد استئصالها إلى حيث سيضربها ليزر الفوتون الثنائي بسهولة. سيختلف الموقع ، اعتمادا على الخلايا العصبية المستهدفة.

الآن قم بتأمين التجميع على مرحلة المجهر ثنائي الفوتون ، وركز على الخلايا ذات الأهمية ، باستخدام هدف غمر الزيت 40X. في البرنامج ، قم بالتبديل إلى وضع المسح وقم بتحميل البروتوكول المحفوظ. تأكد من فتح الثقب بالكامل.

ثم في الوضع المباشر ، احصل على صورة جيدة لمنطقة الاهتمام. بعد ذلك ، أوقف الفحص المباشر حتى يصبح الزر Crop متاحا. باستخدام وظيفة الاقتصاص ، اضبط نافذة المسح لتركيز المنطقة المستهدفة على موقع الإصابة المحتمل فقط.

ثم افتح نافذة تصوير جديدة. الآن تقليل سرعة المسح وزيادة شدة الليزر. ثم قم بتبديل الزر المستمر لبدء الفحص وإيقافه.

راقب بعناية. بمجرد أن تكون هناك زيادة كبيرة في الإزهار ، قم بإنهاء الفحص. بعد ذلك ، ارجع إلى نافذة التصوير الأصلية وحدد الوضع المباشر ، وابحث عن المنطقة التي تم استهدافها للتو عن طريق ضبط التركيز.

من المؤشرات الجيدة على الإصابة الناجحة ظهور فوهة بركان صغيرة أو هيكل يشبه الحلقة أو حطام موضعي في موقع الإصابة. إذا كانت قوة الليزر عالية جدا ، فستكون هناك منطقة كبيرة متضررة مرئية ، والتي يمكن أن تكون قاتلة. الآن قم بإزالة زلة الغطاء بعناية ، وانقل اليرقة المصابة إلى طبق جديد مع معجون الخميرة.

ضع الطبق في طبق 60 ملم ، جنبا إلى جنب مع منديل مبلل بحمض البروبيونيك. ثم أعد اللوحة إلى درجة حرارة الاستزراع. للتصوير اللاحق لليرقة ، استفد من الإعداد متحد البؤر المحفوظ ، واجمع صور مكدس Z بهدف 25X.

تأكد من تضمين نقطة التطبيع ، بحيث يمكن تحديد التجديد كميا. باستخدام البروتوكول الموصوف ، تم التحقيق في تجديد الخلايا العصبية من الفئة الثالثة والرابعة DA. عادة ، أصيبت ثلاث أو أربع خلايا عصبية على الجانب الأيمن من أجزاء البطن من A7 إلى A2.

على وجه التحديد ، تم استهداف الخلايا العصبية DDAF من الفئة الثالثة والفئة الرابعة V Prime ADA. تم تصوير اليرقات في 24 و 48 و 72 ساعة بعد الإصابة. في غضون 24 ساعة ، عادة ما تكمل المحاور البعيدة التنكس ، وكان جذع المحور العصبي مرئيا بسهولة.

في 48 ساعة ، كان من الممكن تقييم التجديد في الخلايا العصبية DA من الفئة الرابعة. حوالي 70٪ من هذه الخلايا العصبية تتجدد خارج موقع الإصابة. حتى بعد 72 ساعة ، كان من الواضح أن الخلايا العصبية من الفئة الثالثة DA فشلت في إعادة النمو.

تم تقييم ذلك بناء على الملاحظات المتكررة لمخاريط النمو المتوقفة. بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية إعداد التجربة ، وإجراء إصابة ثنائية الفوتون ، وتقييم النتائج. بمجرد إتقانها ، تستغرق هذه التقنية 15 دقيقة لكل يرقات ، إذا تم إجراؤها بشكل صحيح.

أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر مقارنة النمو التجريبي مع الضوابط المقابلة ، جنبا إلى جنب. باتباع هذا الإجراء ، يمكن إجراء طريقة مثل التلوين المناعي للإجابة على المزيد من الأسئلة ، مثل ما إذا كانت إصابة المحاور يمكن أن تسبب نقل البروتين ، مما يؤدي إلى تغيير المسار. منذ تطويرها ، مهدت هذه التقنية الطريق للباحثين في مجال علم الأعصاب لاستكشاف التجديد العصبي في الخلايا العصبية الحسية لليرقات ذبابة الفاكهة.

أخيرا ، لا تنس أن العمل مع ثنائي إيثيل الأثير يمكن أن يكون خطيرا للغاية ، ويجب دائما اتخاذ الاحتياطات ، مثل إجراء تخدير اليرقات في غطاء الدخان ، أثناء تنفيذ هذا الإجراء.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

الطب 135 قضية والمورفولوجية العصبية الحسية أربوريزيشن الجذعية العصبية والإصابات العصبية نيوروريجينيريشن أكسوتومي ديندريوتومي السندات الإذنية والجهاز العصبي المركزي

Related Videos

وحيد ذبابة الفاكهة Ommatidium تشريح والتصوير

05:16

وحيد ذبابة الفاكهة Ommatidium تشريح والتصوير

Related Videos

14.6K Views

الإصابة العصبية الناجمة عن الليزر ثنائي الفوتون: طريقة لمراقبة تنكس المحور العصبي وتجديده في يرقات ذبابة الفاكهة

04:49

الإصابة العصبية الناجمة عن الليزر ثنائي الفوتون: طريقة لمراقبة تنكس المحور العصبي وتجديده في يرقات ذبابة الفاكهة

Related Videos

2.6K Views

إحداث إصابة عصبية مستهدفة باستخدام ليزر عالي الطاقة في يرقة ذبابة الفاكهة

03:55

إحداث إصابة عصبية مستهدفة باستخدام ليزر عالي الطاقة في يرقة ذبابة الفاكهة

Related Videos

444 Views

إحداث إصابات الدماغ الرضحية المخترقة في ذبابة الفاكهة البالغة

03:30

إحداث إصابات الدماغ الرضحية المخترقة في ذبابة الفاكهة البالغة

Related Videos

402 Views

والنموذج الإصابات المعنية بالتحقيق في وسط الجهاز العصبي في إصلاح ذبابة الفاكهة

10:49

والنموذج الإصابات المعنية بالتحقيق في وسط الجهاز العصبي في إصلاح ذبابة الفاكهة

Related Videos

13.8K Views

باستخدام رقائق الموائع الدقيقة للتصوير لايف ودراسة الردود الإصابات في ذبابة الفاكهة يرقات

11:46

باستخدام رقائق الموائع الدقيقة للتصوير لايف ودراسة الردود الإصابات في ذبابة الفاكهة يرقات

Related Videos

15.9K Views

A بسيطة العصبية الميكانيكية إصابة منهجية للدراسة ذبابة الفاكهة موتور العصبون التنكس

04:18

A بسيطة العصبية الميكانيكية إصابة منهجية للدراسة ذبابة الفاكهة موتور العصبون التنكس

Related Videos

5.9K Views

تشريح وتلطيخ إيممونوفلوريسسينت للفطر الجسم وعلم الخلايا العصبية في أدمغة البالغين melanogaster المورفولوجية

10:13

تشريح وتلطيخ إيممونوفلوريسسينت للفطر الجسم وعلم الخلايا العصبية في أدمغة البالغين melanogaster المورفولوجية

Related Videos

20.5K Views

تسجيل الكهربية لنشاط الجهاز العصبي المركزي للطور الثالث Melanogaster المورفولوجية

06:45

تسجيل الكهربية لنشاط الجهاز العصبي المركزي للطور الثالث Melanogaster المورفولوجية

Related Videos

12.3K Views

تقييم مورفولوجية ووظيفية من أكسونس ونقاط الاشتباك العصبي خلال وفاة أكسون في دروسوفيلا melanogaster

10:29

تقييم مورفولوجية ووظيفية من أكسونس ونقاط الاشتباك العصبي خلال وفاة أكسون في دروسوفيلا melanogaster

Related Videos

8.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code