-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
زرع هوموتشرونيك إينتيرنيورون السلائف في أوائل العقول الماوس بعد الولادة
زرع هوموتشرونيك إينتيرنيورون السلائف في أوائل العقول الماوس بعد الولادة
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Homochronic Transplantation of Interneuron Precursors into Early Postnatal Mouse Brains

زرع هوموتشرونيك إينتيرنيورون السلائف في أوائل العقول الماوس بعد الولادة

Full Text
8,270 Views
10:08 min
June 8, 2018

DOI: 10.3791/57723-v

Giulia Quattrocolo1, Maria Isaac2, Yajun Zhang2, Timothy J. Petros2

1Kavli Institute for Systems Neuroscience and Centre for Neural Computation,Norwegian University of Science and Technology, 2Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development,National Institutes of Health

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study investigates how environmental changes impact the fate and maturation of interneuron precursors in postnatal mouse pups. The protocol details the harvesting and transplantation of these precursors from distinct brain regions to assess neuronal development.

Key Study Components

Area of Science

  • Developmental neuroscience
  • Neuronal fate determination
  • Transplantation techniques

Background

  • Understanding the interaction of genetic programs and environmental signals is crucial for neuronal development.
  • The study focuses on interneurons, which play a key role in brain circuitry.
  • Protocols aim to elucidate how young neurons can adapt to new environments.
  • The procedure highlights the importance of technique precision in successful transplantation.

Purpose of Study

  • To provide a method for harvesting and transplanting interneuron precursors.
  • To assess how these precursors adapt and mature in different brain environments.
  • To explore fundamental questions about neuronal fate under varying environmental conditions.

Methods Used

  • The study employs a protocol for harvesting brain tissues from postnatal mouse pups.
  • Interneuron precursors are isolated from regions such as the striatum and hippocampus.
  • The harvested tissues are transplanted into age-matched recipients for examination.
  • Important steps include using razor blades for slicing tissue and fluorescence microscopy for tissue identification.
  • Cell dissociation and sorting methods are utilized prior to transplantation.

Main Results

  • The technique allows for the successful harvesting and transplantation of interneuron precursors.
  • Subsequent assessments reveal how these cells mature within their new environments.
  • Findings could deepen understanding of how environmental factors influence neuronal development and integration.
  • Key conclusions suggest the technique enables exploration of cellular behavior in different contexts.

Conclusions

  • This study demonstrates a significant method for investigating neuronal adaptability and maturation.
  • The findings contribute to understanding the interplay between genetic and environmental influences on neuronal fate.
  • The protocol enhances the capacity to explore developmental questions in neuroscience.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of this transplantation technique?
The protocol allows for direct analysis of interneuron precursor fate in varying environments, providing insights into developmental mechanisms.
How are the brain tissues harvested for transplantation?
Tissues are harvested using razor blades for precision slicing, followed by careful identification under a dissecting microscope.
What types of data are obtained from this study?
The study assesses the fate and maturation of transplanted interneuron precursors, focusing on integration and environmental influences.
Can this method be adapted for other types of neuronal studies?
Yes, the harvesting and transplantation techniques can be modified for various neuronal types and research questions.
What limitations should researchers consider with this protocol?
Small errors in technique can lead to inefficient or unsuccessful transplantation, highlighting the need for precision in each step of the protocol.
How does this research advance the field of developmental neuroscience?
It provides a systematic approach to exploring how environmental factors shape neuronal development, which is critical for understanding related disorders.

تحدي الشباب من الخلايا العصبية في مناطق الدماغ جديدة يمكن أن تكشف عن معلومات هامة بشأن كيفية البيئة sculpts مصير الخلايا العصبية والنضج. يصف هذا البروتوكول إجراء الحصاد السلائف إينتيرنيورون من مناطق محددة من الدماغ وزرع لهم أما هوموتوبيكالي أو هيتيروتوبيكالي في دماغ الجراء بعد الولادة.

الهدف العام من هذا الإجراء هو حصاد سلائف الخلايا العصبية الداخلية من مناطق دماغية متميزة في صغار الفئران بعد الولادة ، وزرع هذه الخلايا في متلقين متطابقين مع العمر لتقييم كيفية تأثير التغيرات البيئية على مصير الخلايا العصبية الداخلية ونضجها. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال علم الأعصاب التنموي حول كيفية تفاعل البرامج الجينية الجوهرية والإشارات البيئية لنحت مصير الخلايا العصبية. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنه يمكن تحليل التغيرات في مصير ونضج سلائف الخلايا العصبية الداخلية بعد نقلها بالتبني إلى بيئة دماغية جديدة.

يعد

العرض المرئي لخطوات حصاد الخلايا وتطعيمها أمرا بالغ الأهمية لأن الأخطاء الصغيرة في التقنية يمكن أن تؤدي إلى تجارب زرع غير فعالة وغير ناجحة. للبدء ، ضع شفرة حلاقة واحدة من خلال الفص الأمامي الأمامي لدماغ الجرو في يوم ما بعد الولادة ، وشفرات حلاقة إضافية في الفتحات الخلفية مباشرة لشفرة الحلاقة الأولى لتوليد شريحتين بحجم 0.5 ملم. انقل الشرائح المخططة إلى طبق بتري مع السكروز الفقاعي السائل الدماغي النخاعي الاصطناعي أو sACSF وضع أنسجة المخ المتبقية في طبق بتري مع sACSF على الثلج.

ضع الشرائح تحت مجهر تشريح واستخدم ملقطا لقرص المخطط من نصفي الكرة الأرضية ، ووضع القطع المخططة في أنبوب 50 مليلتر من sACSF على الجليد أثناء حصادها. إذا تم حصاد الدماغ من فأر مراسل الفلورسنت ، فاستخدم الفحص المجهري الفلوري لتمييز إشارة td-tomato المخططة عن إشارة الفلورسنت الأقوى للكرة الشاحبة. لإزالة الحصين ، استخدم الملقط لتقطيع الدماغ على طول خط الوسط ، ووضع نصف الكرة الأرضية تحت السطح الإنسي المجهر التشريح.

استخدم الملقط لإزالة أنسجة المخ البطنية وتحديد الحصين على شكل نقانق الممتد على الوصول الأمامي الخلفي على طول الجانب الظهري والبطيني من القشرة. أدخل أطراف الملقط أمام الحصين الأمامي ، وقم بدفع الملقط للخلف أثناء الضغط على طول الحدود القشرية للحصين لفصل الحصين برفق عن القشرة. ضع الأنسجة المعزولة في أنبوب سعة 50 مليلتر من sACSF على الجليد وكرر حصاد الحصين لنصف الكرة الأرضية المقابل.

ثم ضع الجانب الإنسي للقشرة نصف المقطوعة لأسفل واستخدم الملقط لإزالة معظم الأجزاء الظهرية والبطنية والأمامية والخلفية من القشرة. انقل المربع المتبقي من القشرة الإنسية إلى أنبوب سعة 50 مليلتر من sACSF على الجليد. بعد إزالة الدماغ، قم بتثبيت الجانب البطني للدماغ لأسفل من خلال المخيخ والقشرة الأمامية أو البصيلات الشمية.

باستخدام ملقط منحني ، افصل القشرة الخلفية برفق عن الحصين الأساسي والأنسجة الأخرى في كل نصف كرة الأرضية. وقشر القشرة الظهرية للأمام لكشف الهياكل الأساسية. استخدم الملقط لضغط الحصين في نصف الكرة الأرضية عند خط الوسط ، وإزالة الحصين عن طريق تقشيره بشكل جانبي بعيدا عن الدماغ.

ضع الحصين في أنبوب سعة 50 مل من sACSF على الجليد وحصد الحصين المقابل بنفس الطريقة. بعد ذلك ، اكشط برفق حول حواف المخطط لفكه من الأنسجة المحيطة. اضغط برفق أسفل المخطط لحصاد الأنسجة المخططة.

بعد حصاد القشرة من نصفي الكرة الأرضية ، كما هو موضح سابقا ، انقل المخطط تحت نطاق تشريح الفلورسنت. استخدم ملقط لإزالة أي نسيج كروي شاحب إيجابي للطماطم باللون الأحمر الفاتح من كل مخطط. عندما يتم حصاد جميع الأنسجة ، انقل الأنسجة إلى أنبوب سفلي دائري بحجم خمسة ملليمترات واستبدل sACSF في كل أنبوب تجميع بملليلترين من محلول pronase-sACSF المحضر حديثا لحضانة لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة مع النقر العرضي.

في نهاية الحضانة ، استبدل بعناية pronase-sACSF بواحد إلى ملليلتر من محلول إعادة التكوين ، وقم بفصل الأنسجة ميكانيكيا بأنابيب باستور المصقولة بالنار. عندما تكون الأنسجة غائمة ولا تظهر قطع الأنسجة ، قم بتصفية محلول الخلية من خلال مرشح 50 ميكرون في أنابيب سفلية مستديرة جديدة سعة خمسة ملليلتر لإزالة أي كتل خلوية قبل فرز الخلايا التي يتم تنشيطها بالفلورة. بعد تلقي الخلايا من قياس التدفق الخلوي ، انقل معلقات الخلية إلى أنابيب مخروطية سعة 1.5 ملليلتر للطرد المركزي.

بعد الطرد المركزي ، قم بشفط كل ما عدا آخر 20 ميكرولترا من المادة الطافية من كل أنبوب ، وأعد تشكيل الكريات للعد. إذا لزم الأمر ، قم بتخفيف محلول الخلية باستخدام sACSF إلى واحد إلى ثلاثة أضعاف 10 إلى الخلايا الخامسة لكل تركيز ميكرولتر. قم بتحميل ماصة دقيقة بالزيت المعدني.

قم بتوصيل الماصة الدقيقة بحاقن نانولتر ، وقم بتأمين جهاز حقن النانو لتر بمناور متصل بقاعدة مغناطيسية. أثناء تخدير الجرو الأول على الجليد ، قم بسحب محلول الخلية عدة مرات لضمان توزيع الخلايا المتجانس. أخرج الزيت المعدني واملأ الماصة بالكامل بتعليق الخلية الواحدة.

بعد التأكد من عدم الاستجابة لقرص إصبع القدم ، ضع الجرو على غطاء طبق بتري مع وضع الرأس على معجون لاصق ، بحيث يكون الجزء العلوي من الرأس مسطحا نسبيا. قم بتغطية الرأس بقطعة من شريط المختبر بفتحة ماسية ، واسحب الشريط الذي تم تدريسه حتى يتم شد الجلد بحيث يتم تأمين الرأس بإحكام ويكون لامدا مرئيا من خلال الفتحة. حرك الجرو الآمن أسفل حاقن النانولتر وقم بخفض الماصة الدقيقة بحيث يكون الطرف فوق لامدا مباشرة.

راقب إحداثيات X وY على المعالج واضبط مقابض المناور حتى يتم وضع الماصة الدقيقة عند الإحداثيات المناسبة على طول المحاور الإنسية والجانبية والأمامية الخلفية للرأس. اخفض الماصة الدقيقة حتى يخلق الطرف تقتقرا صغيرا على الجلد ، وأدر مقبض مناور المحور z بإحكام ولكن برفق لدفع الماصة الدقيقة عبر الجلد والجمجمة إلى الدماغ. اسحب الماصة الدقيقة قليلا حتى يحيط بطرفها مخروط من الجلد على شكل خيمة.

وعرض الإحداثيات على طول المحور z. ثم اخفض الماصة الدقيقة إلى العمق التجريبي المناسب وحقن الخلايا. انتظر 15 ثانية بعد تسليم الخلايا قبل سحب الماصة الدقيقة وكرر الحقن في مكان ثان إذا رغبت في ذلك.

ضع الجرو على وسادة تدفئة وراقبه حتى يتحقق الشفاء التام قبل نقله مرة أخرى إلى قفص المنزل. تهاجر الخلايا المطعمة عبر مناطق الدماغ المستهدفة بمعدلات بقاء متغيرة للخلايا تتراوح من العشرات إلى عدة آلاف. تتمركز الخلايا المطعمة داخل المناطق المناسبة مع العديد من الخلايا التي تعرض أشكال الخلايا العصبية الداخلية وعلامات كيميائية عصبية داخلية مميزة جيدا.

تعيش

الخلايا المانحة وتنضج حتى عندما يتم تطعيمها في بيئات جديدة من خلال عمليات زرع غير متجانسة. يكشف التحليل الفيزيولوجي الكهربي للخلايا المطعمة عن خصائص فسيولوجية شبيهة بالبالغين وأنماط إطلاق مميزة ، تمثل الأنواع الفرعية المحددة جيدا من الخلايا العصبية الداخلية ، مما يشير إلى أن الخلايا العصبية الداخلية المطعمة قادرة على النضج بشكل صحيح في البيئة المضيفة. تظهر الخلايا المزروعة أيضا تيارات ما بعد المشبكي المثيرة التلقائية.

يكشف التسجيل من الخلايا الهرمية المجاورة للخلايا العصبية الداخلية المزروعة التي تعبر عن channelrhodopsin-2 عن تيارات GABAergic ما بعد المشبكي التي يثيرها الضوء الأزرق في هذه الخلايا الهرمية الذاتية. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم إبقاء الخلايا على الجليد وتقطيع الخلايا برفق باستخدام ماصة باستور لتقليل موت الخلايا. باتباع هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل تسلسل الخلية المفردة على الخلايا المطعمة لتحديد كيفية تأثير التغيرات البيئية على نسخ الخلية بشكل كامل.

بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن تكون قادرا على عزل سلائف الخلايا العصبية الداخلية من مناطق الدماغ المختلفة للصغار حديثي الولادة وزرع هذه الخلايا في مناطق مختلفة من الدماغ لصغار ما بعد الولادة المطابقة للعمر.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب المسألة 136 زرع إينتيرنيورونس والتنمية واللحاء الحصين المخطط الانفصال بعد الولادة الفئران

Related Videos

زرع الخلايا السلفية العصبية البشرية في دماغ الفأر

02:17

زرع الخلايا السلفية العصبية البشرية في دماغ الفأر

Related Videos

202 Views

توليد سلائف الخلايا العصبية الداخلية القشرية من الخلايا الجذعية الجنينية للفأر

03:03

توليد سلائف الخلايا العصبية الداخلية القشرية من الخلايا الجذعية الجنينية للفأر

Related Videos

410 Views

زرع خلايا السلائف بين الخلايا العصبية في دماغ جرو الفأر

03:26

زرع خلايا السلائف بين الخلايا العصبية في دماغ جرو الفأر

Related Videos

322 Views

زرع الخلايا السليفة العصبية الداخلية المشتقة من الإنسان في الحصين جرو الفأر

02:26

زرع الخلايا السليفة العصبية الداخلية المشتقة من الإنسان في الحصين جرو الفأر

Related Videos

332 Views

نقل الجينات بمساعدة التثقيب الكهربائي المضمن في الأغروز في أسلاف الخلايا العصبية القشرية للفأر

02:59

نقل الجينات بمساعدة التثقيب الكهربائي المضمن في الأغروز في أسلاف الخلايا العصبية القشرية للفأر

Related Videos

363 Views

تمايز الخلايا الجذعية الجنينية الماوس في السلائف إينتيرنيورون القشرية

10:24

تمايز الخلايا الجذعية الجنينية الماوس في السلائف إينتيرنيورون القشرية

Related Videos

10.9K Views

زرع داخل البطين من السلائف العصبية المهندسة لدراسات الهندسة العصبية في الجسم الحي

15:00

زرع داخل البطين من السلائف العصبية المهندسة لدراسات الهندسة العصبية في الجسم الحي

Related Videos

6K Views

زرع الذرية القشرية الهندسية كيميائياً في عقول الفئران المبكرة بعد الولادة

06:09

زرع الذرية القشرية الهندسية كيميائياً في عقول الفئران المبكرة بعد الولادة

Related Videos

6.4K Views

زرع الخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية GABAergic في الحصين المبكر بعد الولادة للفأر للتخفيف من اضطرابات النمو العصبي

05:00

زرع الخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية GABAergic في الحصين المبكر بعد الولادة للفأر للتخفيف من اضطرابات النمو العصبي

Related Videos

2.9K Views

تحليل فسيفساء من وظائف الجينات في الدماغ بعد الولادة ماوس التنمية عن طريق استخدام فيروس لجنة المساواة العرقية القائمة على التوحد

07:42

تحليل فسيفساء من وظائف الجينات في الدماغ بعد الولادة ماوس التنمية عن طريق استخدام فيروس لجنة المساواة العرقية القائمة على التوحد

Related Videos

12.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code