-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
خالية كرة محددة وشروط الثقافة خالية من علبة التغذية بالورق "نماذج الخلية الشبكية" المستمدة من الل...
خالية كرة محددة وشروط الثقافة خالية من علبة التغذية بالورق
JoVE Journal
Developmental Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Developmental Biology
Defined Xeno-free and Feeder-free Culture Conditions for the Generation of Human iPSC-derived Retinal Cell Models

خالية كرة محددة وشروط الثقافة خالية من علبة التغذية بالورق "نماذج الخلية الشبكية" المستمدة من اللجنة التوجيهية جيل من البشر

Full Text
9,655 Views
11:29 min
September 6, 2018

DOI: 10.3791/57795-v

Amélie Slembrouck-Brec*1, Céline Nanteau*1, José-Alain Sahel1, Olivier Goureau1, Sacha Reichman1

1Institut de la Vision,Sorbonne Université, INSERM, CNRS, F-75012 Paris, France

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

إنتاج خلايا الشبكية المتخصصة من الخلايا الجذعية pluripotent نقطة تحول في تطوير العلاج القائم على الخلايا الجذعية لأمراض الشبكية. تصف هذه الورقة طريقة بسيطة لجيل بكفاءة أورجانويدس الشبكية وظهاره المصطبغة الشبكية للبحوث الأساسية ومتعدية الجنسيات، والسريرية.

Transcript

يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على السؤال المتعلق بتمايز الخلايا الجذعية متعددة القدرات في مجال الشبكية ، مثل توليد أنواع مختلفة من خلايا الشبكية من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان أو خلايا iPS. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنه يمكن استخدام خلية iPS البشرية الملتصقة مباشرة لتوليد عضيات الشبكية عن طريق تمرير الجنين إلى التكوين فقط عن طريق التغيير المتتالي لوسط الاستزراع. ستعرض مهندسة المختبر أميلي سلمبروك بريك طريقة توليد وعزل عضيات الشبكية وستعرض مهندسة المختبر سيلين نانتو استراتيجية إنتاج الخلايا الظهارية المصطبغة في الشبكية أو الخلايا RPE.

ابدأ تمايز خلايا iPS بعد هذا التخطيطي, والتي يمكن العثور عليها في بروتوكول النص عندما تصل المستعمرات إلى 60 إلى 70٪ التقاء. تحضير أربعة ملليلتر من متوسط iPS القاعدي لكل طبق ستة سنتيمترات وتسخين الوسط إلى 37 درجة مئوية. بعد ذلك ، قم بتغيير وسيط خلية iPS إلى وسيط iPS الأساسي.

لاحظ هذه المرة على أنها اليوم صفر. في اليوم الثاني ، قم بتبديل الثقافات في وسط iPS القاعدي إلى وسط iPS N-2 القاعدي الذي تم تسخينه مسبقا عند 37 درجة مئوية. قم بتغيير الوسيط كل يومين إلى ثلاثة أيام.

تحديد عضيات الشبكية المكونة للخلايا الناشئة بواسطة براعم الظهارة العصبية. في اليوم 28 ، قم بإعداد ستة أطباق تحتوي على أربعة ملليلتر لكل بئر من وسط Pro B-27 ، مع استكمالها في البداية ب 10 نانوغرام لكل مليلتر من FGF2. استرجع هياكل الشبكية من الأطباق التي يبلغ طولها ستة سنتيمترات يدويا.

للقيام بذلك ، قم بعزل الهياكل عن طريق عمل خطوط عمودية بإبرة حول البرعم الظهاري العصبي وفصل العضيات عن طريق خدشها برفق بالإبرة. قم بشفط 10 إلى 15 عضوا باستخدام ماصة سعة 1,000 ميكرولتر وانقلها في بئر واحد من الصفيحة المكونة من ستة آبار تحتوي على وسط Pro B-27. احتفظ بعضيات الشبكية في ظروف الاستزراع العائمة في وسط Pro B-27 في حاضنة زراعة الخلايا عند 37 درجة مئوية في 5٪ ثاني أكسيد الكربون.

قم بتغيير نصف الوسيط كل يومين إلى ثلاثة أيام. في اليوم 28 ، قم بتغيير الوسط إلى وسط Pro N-2 جديد تم تسخينه مسبقا عند 37 درجة مئوية واستمر في تغيير وسيط Pro N-2 كل يومين إلى ثلاثة أيام. في اليوم 42 ، قم بإعداد صفيحة من 24 بئرا مطلية مسبقا بمصفوفة كما هو موضح في بروتوكول النص وتحتوي على مليلتر واحد من وسط Pro N-2 لكل بئر.

ضع الطبق لمدة 15 دقيقة في الحاضنة على حرارة 37 درجة مئوية في 5٪ ثاني أكسيد الكربون قبل الاستخدام. استرجع تصحيحات iRPE البشرية يدويا من الطبق الذي يبلغ طوله ستة سنتيمترات. لعزل البقع ، قم بعمل خط عمودي بالإبرة حول الظهارة المصطبغة وافصل الورقة عن طريق خدشها برفق بالإبرة.

قم بشفط 10 بقع مصطبغة باستخدام ماصة سعة 1,000 ميكرولتر ونقلها في بئر واحد من الصفيحة المكونة من 24 بئرا. احتفظ ببقع RPE البشرية المشتقة من iPS في وسط Pro N-2 في حاضنة زراعة الخلايا عند 37 درجة مئوية و 5٪ ثاني أكسيد الكربون لمدة 48 ساعة قبل تغيير الوسط. عندما تتلاقى الخلايا ، قم بإزالة الوسط باستخدام أنظمة الشفط الفراغي وغسل كل بئر مرة واحدة باستخدام مليلتر واحد من PBS باستخدام ماصة سعة خمسة ملليلتر.

بعد التخلص من PBS باستخدام أنظمة الشفط الفراغية ، أضف 200 ميكرولتر لكل بئر بنسبة 0.25٪ تريبسين. احتضان الخلايا لمدة لا تقل عن 15 دقيقة في حاضنة عند 37 درجة مئوية ، ثم أضف 800 ميكرولتر من وسط Pro B-27 لتعطيل التربسين. الآن قم بفصل ورقة خلايا iRPE البشرية عن طريق ماصتها لأعلى ولأسفل.

ضع معلق الخلية في أنبوب سعة 15 مليلتر وجهاز طرد مركزي لمدة خمس دقائق عند 110 مرات جم ، قم بإزالة المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية برفق في ملليلترين من وسط Pro N-2 الدافئ مسبقا عند 37 درجة مئوية ، ثم عد الخلايا بعداد الخلايا. الآن خذ 1.25 مليون خلية وضعها في قارورة T25 سنتيمتر مربع مغلفة بالمصفوفة تحتوي على خمسة ملليلتر من وسط Pro N-2 الذي تم تسخينه مسبقا إلى 37 درجة مئوية.

بالنسبة للعضيات الشبكية الكاملة ، حدد خمسة إلى 20 عضوا من عضيات الشبكية باستخدام ماصة نقل وضعها في قارورة مبردة. قم بإزالة أي وسيط زائد باستخدام ماصة سعة 1,000 ميكرولتر دون لمس العضيات الموجودة في الجزء السفلي من الأنبوب وأضف 250 ميكرولترا من وسط الحفظ بالتبريد البارد. قم بتجميد القوارير في وعاء تجميد قائم على الأيزوبروبرانول عند 80 درجة مئوية تحت الصفر لمدة أربع ساعات على الأقل.

بالنسبة لخلايا iRPE البشرية ، قم بفصل الخلايا عندما تلتقي عند الممر 1. قم بشفط الوسط من قارورة T25 سنتيمتر مربع باستخدام أنظمة الشفط بالتفريغ واغسله مرة واحدة بثلاثة ملليلتر من PBS باستخدام ماصة سعة خمسة ملليلتر. بعد إزالة PBS ، أضف ملليلتر واحد من 0.25٪ من التربسين ، ثم احتضن الخلايا لمدة لا تقل عن 15 دقيقة في حاضنة عند 37 درجة مئوية.

بعد الحضانة ، أضف خمسة ملليلتر من وسط Pro B-27 لإيقاف نشاط التربسين. افصل ورقة خلايا iRPE البشرية عن طريق ماصتها لأعلى ولأسفل باستخدام ماصة سعة 10 ملليلتر. ضع معلق الخلية في أنبوب سعة 15 مليلتر وقم بطرده لمدة خمس دقائق عند 110 مرات جم.

قم بشفط المادة الطافية باستخدام الشفط بالفراغ وأعد تعليق الخلايا برفق للحصول على مليوني خلية في 250 ميكرولتر من وسط الحفظ بالتبريد. انقل 250 ميكرولترا من تعليق الخلية لكل قارورة مبردة ، ثم قم بتجميد القوارير في حاوية تجميد قائمة على الأيزوبروبرانول عند 80 درجة مئوية تحت الصفر لمدة أربع ساعات على الأقل. من خزان النيتروجين السائل أو الفريزر 150 درجة مئوية تحت الصفر، قم بإذابة قارورة مبردة تحتوي على عضيات الشبكية في حمام مائي عند 37 درجة مئوية لمدة 30 ثانية.

قم بتطهير القارورة المبردة بعناية باستخدام رذاذ محلول مطهر. افتح القارورة وأضف ملليلترا واحدا من وسط Pro B-27 المسخن مسبقا. الآن انقل العضيات إلى أنبوب 1.5 مليلتر باستخدام ماصة نقل.

قم بإزالة الوسط برفق عن طريق سحب العين دون لمس هياكل الشبكية في الجزء السفلي من الأنبوب. ثم اغسل العضيات مرة أخرى باستخدام مليلتر واحد من وسط Pro B-27 الدافئ مسبقا. قم بشفط العضيات بماصة نقل وضعها في بئر واحد من صفيحة مكونة من ستة آبار تحتوي على Pro B-27 متوسط التسخين المسبق ومتوازن في حاضنة عند 37 درجة مئوية و 5٪ ثاني أكسيد الكربون.

لإذابة خلايا iRPE البشرية ، قم بتسخين وسط Pro N-2 عند 37 درجة مئوية. من خزان النيتروجين السائل أو الفريزر 150 درجة مئوية تحت الصفر، قم بإذابة عينة مبردة من خلايا iRPE Passage 1 البشرية عن طريق احتضانها في حمام مائي عند 37 درجة مئوية لمدة 30 ثانية. بعد تطهير القارورة المبردة كما كان من قبل ، افتح الأنبوب وأضف ملليلترا واحدا من وسط Pro N-2 الدافئ مسبقا ، ثم انقل تعليق الخلية إلى أنبوب سعة 15 مليلتر يحتوي على ملليلترين من وسط Pro N-2 الدافئ مسبقا.

بعد الطرد المركزي لمدة خمس دقائق عند 110 مرات جم ، قم بإزالة المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية برفق في ملليلترين من وسط Pro N-2 المسخن مسبقا عند 37 درجة مئوية. يمكن عزل الهياكل العصبية الشبكية المكونة للخلايا باستخدام إبرة ونقلها إلى ألواح الاستزراع للسماح بنضج عضيات الشبكية في ظروف الاستزراع العائمة. تحتوي هياكل الشبكية الناشئة بشكل أساسي على خلايا سلفية للشبكية ، والتي تؤدي إلى سبع فئات رئيسية من أنواع خلايا الشبكية ، كما يتصورها موجات من أجيال خلايا الشبكية المبكرة والمتأخرة أثناء عملية النضج في المختبر.

وبالتالي ، فإن وقت الثقافة يحدد أنواع الخلايا الموجودة في العضيات. اعتمادا على استنساخ خلية iPS البشرية ، يمكن اكتشاف البقع المصطبغة قبل أو بعد تكوين الخلايا لهياكل الشبكية ، بشكل عام بعد أسبوع أو أسبوعين من استخدام وسيط Pro N-2 في اليوم 28. يتم عرض صورة تمثيلية للحقل الساطع لخلايا iRPE البشرية الموسعة من البقع المعزولة في Passage 0.

تؤدي الثقافات طويلة الأمد إلى ظهارة ناضجة ووظيفية. تظهر هنا خلايا iRPE Passage 2 البشرية الناضجة في الأسبوع 52 ، والتي تتميز بمورفولوجيا حجرية مرصوفة بالحصى المكعبة الكلاسيكية. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر أن كفاءة الطريقة الممثلة هنا تعتمد إلى حد كبير على جودة مزارع خلايا iPS البشرية.

بعد هذا الإجراء ، يمكن إنشاء جميع أنواع خلايا الشبكية من أسلاف الشبكية الموجودة في العضوية في مرحلة مبكرة. إنها تشكل أدوات قوية لعلاج ونمذجة أمراض الشبكية المختلفة. يمكن استخدام خلية iPS الخاصة بالمريض لفهم مسببات الأمراض المعقدة أو الوراثية بشكل أفضل من خلال استكشاف الآلية الجزيئية والخلوية الكامنة وراء هذه الأمراض.

بعد تطويرها ، مهدت هذه التقنية الطريق للباحثين في مجال تطور الشبكية لاستكشاف الطب التجديدي لدى البشر. لا تنس أن العمل مع خلية iPS البشرية يتطلب احتياطات مهمة مثل حبس ثقافة الخلايا المحددة.

Explore More Videos

علم الأحياء التنموي 139 قضية الشبكية أورجانويدس والخلايا الجذعية pluripotent التمايز العلاجات الخلية واكتشاف المخدرات

Related Videos

التغذية الخالية من التكيف والثقافة والركض للخلايا البشرية باستخدام IPS الطاعم كاملة خالية من خروج المغلوب استبدال المصل متوسطة

08:29

التغذية الخالية من التكيف والثقافة والركض للخلايا البشرية باستخدام IPS الطاعم كاملة خالية من خروج المغلوب استبدال المصل متوسطة

Related Videos

22.6K Views

جيل من العضلية الإنسان: البروتوكول التمايز من خالية من الطاعم المستحثة الخلايا الجذعية المحفزة الإنسان

13:18

جيل من العضلية الإنسان: البروتوكول التمايز من خالية من الطاعم المستحثة الخلايا الجذعية المحفزة الإنسان

Related Videos

21.6K Views

اشتقاق كفاءة خلايا الظهارة الصبغية الشبكية من الخلايا الجذعية

07:07

اشتقاق كفاءة خلايا الظهارة الصبغية الشبكية من الخلايا الجذعية

Related Videos

9.4K Views

التكامل الانشطار الحرة من الخلايا الجذعية المحفزة الإنسان المستحث باستخدام مصفوفة لامينين 521

10:48

التكامل الانشطار الحرة من الخلايا الجذعية المحفزة الإنسان المستحث باستخدام مصفوفة لامينين 521

Related Videos

8.9K Views

البطانة الظهارة الظهارية الظهارة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات في حالة محددة خالية من التغذية وXeno

09:00

البطانة الظهارة الظهارية الظهارة من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات في حالة محددة خالية من التغذية وXeno

Related Videos

9.8K Views

قياس التقاء iPSCs باستخدام نظام التصوير الآلي.

11:39

قياس التقاء iPSCs باستخدام نظام التصوير الآلي.

Related Videos

2.2K Views

الحث الموجه للعضويات الشبكية من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

06:38

الحث الموجه للعضويات الشبكية من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

Related Videos

3.2K Views

نظام تحريض الشبكية Organoid لاستخلاص أنسجة الشبكية ثلاثية الأبعاد من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

10:05

نظام تحريض الشبكية Organoid لاستخلاص أنسجة الشبكية ثلاثية الأبعاد من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

Related Videos

6.4K Views

توليد عضويات الشبكية من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان وأمراض الشبكية الصحية والخاصة بأمراض الشبكية

09:47

توليد عضويات الشبكية من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان وأمراض الشبكية الصحية والخاصة بأمراض الشبكية

Related Videos

4K Views

جيل من المستحثة متعددة القدرات الخلايا الجذعية من الإنسان الطرفية T الخلايا باستخدام سينداي الفيروسات في ظروف خالية من الطاعم

09:32

جيل من المستحثة متعددة القدرات الخلايا الجذعية من الإنسان الطرفية T الخلايا باستخدام سينداي الفيروسات في ظروف خالية من الطاعم

Related Videos

12.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code