-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
في فيفو إعادة برمجة مباشرة من الخلايا الغلية المقيمة في الخلايا العصبية المشتركة عن طريق الحقن دا...
في فيفو إعادة برمجة مباشرة من الخلايا الغلية المقيمة في الخلايا العصبية المشتركة عن طريق الحقن دا...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
In Vivo Direct Reprogramming of Resident Glial Cells into Interneurons by Intracerebral Injection of Viral Vectors

في فيفو إعادة برمجة مباشرة من الخلايا الغلية المقيمة في الخلايا العصبية المشتركة عن طريق الحقن داخل الدماغ من ناقلات الفيروسية

Full Text
10,012 Views
12:26 min
June 17, 2019

DOI: 10.3791/59465-v

Maria Pereira1, Marcella Birtele1, Daniella Rylander Ottosson1

1Department of Experimental Medical Sciences and Lund Stem Cell Center, BMC,Lund University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol to generate directly reprogrammed interneurons in vivo from resident glia using an AAV-based viral system. Targeting NG2-glia with a FLEX synapsin-driven GFP reporter allows for cell identification and analysis, particularly focusing on parvalbumin-positive interneurons with implications for psychiatric disorders.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Neurobiology
  • Cell Reprogramming

Background

  • Development of novel neurons from resident glial cells.
  • Neurological conditions targeted through specific neuronal phenotypes.
  • Utilization of AAV viral vectors for efficient gene delivery.
  • Reprogrammed interneurons may provide insights into cell replacement therapies.

Purpose of Study

  • To demonstrate in vivo conversion of glia into mature, subtype-specific interneurons.
  • To investigate implications for psychiatric disorders via parvalbumin-positive interneurons.
  • To establish a method for potential applications across various brain areas.

Methods Used

  • In vivo reprogramming using AAV5 viral vectors in mouse models.
  • Targeting of NG2-glia for generating specialized interneurons.
  • Critical steps involve viral vector production, cell culture, and injection protocols.
  • Evaluation of reprogrammed cells over a timeline of up to 12 weeks.

Main Results

  • Successful conversion of resident glia into parvalbumin-positive interneurons.
  • Demonstrated maturation and integration of reprogrammed neurons in vivo.
  • Provided a methodology for future studies addressing neurological conditions.

Conclusions

  • The study illustrates a viable approach for generating interneurons in vivo.
  • Findings support future exploration into cell replacement therapies.
  • Highlights the potential for studying neuronal mechanisms relevant to psychiatric disorders.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of the AAV vector system?
AAV vectors offer specific targeting capabilities and efficient transduction, which enable precise reprogramming of glial cells within the brain.
How are the reprogrammed interneurons validated?
Validation is achieved through the expression of the GFP reporter, allowing for identification and analysis of the reprogrammed neurons in vivo.
What is the significance of generating parvalbumin-positive interneurons?
These interneurons have critical roles in modulating neuronal circuits and are linked to various psychiatric disorders, making their generation pivotal for research.
Can the method be applied to other brain regions?
Yes, the protocol is adaptable for targeting other neuronal phenotypes across different brain regions and circuits.
What are the limitations of this approach?
Potential limitations include the specificity of targeting and the efficiency of reprogramming, which may vary based on the physiological state of resident glia.

يهدف هذا البروتوكول إلى توليد الخلايا العصبية البينية المعاد برمجتها مباشرة في الجسم الحي، وذلك باستخدام نظام فيروسي قائم على AAV في الدماغ ومراسل GFP يعمل على إزالة المشبك المرن، والذي يسمح بتحديد الخلايا والمزيد من التحليل في الجسم الحي.

هذا البروتوكول يدل على أنه من الممكن لتوليد الخلايا العصبية الجديدة مباشرة في الدماغ من غليا المقيمين وأن هذه الخلايا إعادة برمجتها تنضج في الخلايا العصبية الفرعية الخاصة. الميزة الرئيسية هي فيروس AAV المعتمد على العقيدة الذي يتيح استهدافًا محددًا لـ NG2-glia ومراسل GFP الذي يصنف الخلايا العصبية التي تمت إعادة برمجتها للتحليل. قد يؤدي توليد الخلايا العصبية الجديدة في الدماغ إلى التطور المستقبلي لعلاجات استبدال الخلايا في الدماغ.

في بروتوكولنا نولد التورين الإيجابي البارفالومين التي لها آثار على الاضطرابات النفسية. في الجسم الحي يمكن تطبيقها على المناطق الأخرى في الدماغ والدوائر اعتمادا على ما النمط الظاهري العصبي والحالة العصبية التي تريد استهدافها. سوف يكون إثبات الإجراء جيني جوهانسون:فني، ماريا بيريرا: طالبة دكتوراه سابقة، ومارسيلا بيرتيل: طالبة دكتوراه في مختبرنا.

لإنتاج AAV5 ناقلات الفيروسية، بذور خلايا HEK293T مع ثقافة متوسطة القياسية في خمس قارورة T175. عندما تصل الخلايا إلى 50 إلى 70٪ التقاء، وإعداد مزيج التالية لtransvection. في أنبوب الطرد المركزي 50 ملليلتر، إضافة كميات متساوية من الزهو المولي من بلازميد ناقلات، وpDG سلسلة المساعد plasmid.

أضف مخزن تريس-EDTA المؤقت إلى حجم نهائي يبلغ 144 ميكرولترات ثم أضف الماء فائق الpure لينتج عنه حجم إجمالي قدره 1296 ميكرولترات ومزيج. بعد ذلك، أضف 144 ميكرولترات من كلوريد الكالسيوم المولر 2.5 ومزيج. بعد ذلك، أضف 1.92 ملليلتر من HBS إلى محلول الحمض النووي ودوة الدوامة على الفور.

احتضان في درجة حرارة الغرفة لمدة 60 ثانية بالضبط. في وقت لاحق، نقل الحل إلى 28 ملليلتر من ثقافة الخلية الطازجة المتوسطة ومزيج. استبدل الوسيطة في القارورة بالوسيط الذي يحتوي على مزيج ترانسفيككشن.

انتظر لمدة ثلاثة أيام، ونقل وسائل الإعلام إلى النفايات. إضافة خمسة ملليلتر من مخزن الحصاد المؤقت لكل قارورة، ثم إضافة أربعة ملليلترات أخرى من DPBS إلى كل قارورة لشطف الخلايا المتبقية وتجمع مع حل الخلية. أجهزة الطرد المركزي الخلايا المحصودة في 1،000 س ز لمدة خمس دقائق في أربع درجات مئوية.

بعد الطرد المركزي ، قم بإزالة الماذرة وحل الكريه في 15 ملليلتر من عازلة التحلل. تجميد أنبوب الطرد المركزي 50 ملليلتر على الجليد الجاف لمدة 15 دقيقة وتخزينها في ثلاجة ناقص 20 درجة مئوية. قبل الاستخدام ، ذوبان الخلية المقطوعة في حمام مائي عند 37 درجة مئوية.

في هذا الإجراء، قم بإجراء تنقية AAV بواسطة iodixanol التدرج فائق الrifugation واستخدام أنابيب السقف فائقة النقاء مع الطرد المركزي في 350، 000 x ز لمدة ساعة واحدة و 45 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. لاستخراج AAV التي تحتوي على المرحلة، أدخل حقنة 10 ملليلتر مع إبرة قياس 18 في حوالي مليمترين تحت الحد 40 إلى 60٪ مرحلة مع شطبة تواجه صعودا والانسحاب. تأكد من التوقف قبل الوصول إلى نطاق البروتين بعد استخراج خمسة إلى ستة ملليلترات من المتجه الفيروسي.

ثم، تنقية وتركيز التدرج الاوديكسول المخفف من خلال مرشح تبادل أنيون، عن طريق دفعها من خلال بمعدل لا أسرع من قطرة واحدة في الثانية الواحدة. في وقت لاحق، دفع ثلاثة ملليلتر من المخزن المؤقت IE ببطء من خلال عامل التصفية لغسله. المقبل، elute الخليط في وحدة تصفية الطرد المركزي مع ملليلتر واحد إلى اثنين من عازلة elution.

إضافة DPBS إلى الجهاز إلى وحدة تخزين نهائية من أربعة ملليلتر. يتم ترك جهاز طرد مركزي في 2, 000 x ز في درجة حرارة الغرفة حتى أقل من 0.5 ملليلتر من DPBS في المرشح. بعد ذلك، إزالة السائل من الجزء السفلي من الأنبوب، إعادة ملء مع أربعة ملليلتر من DPBS، والطرد المركزي مرة أخرى.

كرر هذه الخطوة مرتين أكثر، تأكد من أن حجم ناقلات مركزة على مرشح حوالي 200 ميكرولترات بعد الطرد المركزي الماضي. إزالة 200 microliter ناقلات المركزة باستخدام ماصة، ودفعه من خلال مرشح 0.22 ميكرومتر لتعقيم. بعد ذلك ، aliquot 200 microliters في قارورة زجاجية مع إدراج متشابكة.

لحقن عوامل إعادة البرمجة، ضع ماوس مخدر في إطار مجسم. إدارة مسكن مناسب في بداية الجراحة ، ثم جلب غيض من الشعرية الزجاجية من إبرة الحقن فقط فوق بريما. تأكد من أن طرف الشعرية مستقيم تماما في كل من طائرات A-P و M-L.

إعادة تعيين قيم M-L و A-P إلى 0.0 على العداد الإحداثيات الرقمية. للتأكد من رأس الحيوان في وضع مسطح تماما، استخدم مضادة الإحداثيات الرقمية لقياس قيمة تنسيق D-V عندما يكون ذراع A-P عند زائد 2.0 و -2.0 وكذلك عندما يكون الذراع M-L عند زائد 2.0 و -2.0. ضبط ارتفاع شريط الأسنان وأشرطة الأذن وفقا لذلك.

بعد ذلك، رفع حقنة قليلا وحفر حفرة باستخدام حفر الأسنان في إحداثيات الحقن. ابدأ في الحفر في الموقع ، والعمل بطريقة دائرية ولطيفة. ثم، ضع قطعة من الشاش القطني على شق مفتوح ونظف الحقنة بمحلول ملحي.

بعد التنظيف، ورسم فقاعة الهواء ثم ميكرولتر واحد من الحل الذي يحتوي على ناقلات الفيروسية. تأكد من أن الحل الفيروسي يمكن تصورها بسهولة تحت فقاعة الهواء. بعد ذلك، قم بخفض الحقنة، وتتقدم ببطء إلى العمق المطلوب، وتأكد من أن المسار واضح من شظايا العظام.

وفي وقت لاحق، حقن ميكرولتر واحد من الحل الفيروسي بمعدل 0.4 ميكرولتر في الدقيقة الواحدة. عندما يتم الحقن، والسماح لمدة دقيقتين للنشر قبل انسحاب حقنة. بعد الانتشار ، اسحب الحقنة ببطء حتى يتم سحب طرف الشعيرات الدموية تمامًا من الدماغ ، ثم خياطة الشق بعناية وإزالة الحيوان من الإطار المجسم.

راقب الحيوان في محطة ما بعد الجراحة حتى يستعيد الوعي. يتم الاحتفاظ بالحيوانات لمدة تصل إلى 12 أسبوعًا بعد حقن الفيروس للسماح للجليا المقيم بإعادة برمجتها إلى الخلايا العصبية الناضجة. لإعداد شرائح الدماغ للفيزياء الكهربائية باستخدام هزاز، قسم الدماغ من الجزء الأكثر التراسترالية وصولا الى مستوى الستراتتال بسرعة عالية.

ثم قسم في 275 ميكرومتر في 0.1 ملليمتر في الثانية. بعد كل قسم، وإزالة بعناية الجانب غير حقن striatal ونقل الجانب حقن في قارورة مع صافي أسفل والأكسجين شريحة الإحساس CREB في حمام الماء في درجة حرارة الغرفة. الحفاظ على القارورة في درجة حرارة الغرفة حتى يتم قطع جميع المقاطع.

بعد ذلك، ببطء زيادة درجة حرارة الحمام المائي إلى 37 درجة مئوية وتركها لمدة 30 دقيقة، ثم إيقاف سخان والسماح لها تبرد إلى درجة حرارة الغرفة. بعد نقل قسم واحد من الأنسجة إلى غرفة تسجيل للفيزياء الكهربائية، قم بتركيب الماصات الزجاجية على قطب التسجيل وخفضه في المحلل. تحقق من مقاومة القطب.

ثم، ببطء الاقتراب من الخلية التي أعيد برمجتها مع ماصة، والحفاظ على ضغط إيجابي طفيف في القطب لتجنب توصيل طرف، والتحقق من أن الخلية هي GFP إيجابية قبل الترقيع. عندما يتم تصحيح الخلية، والحفاظ على الخلية في المشبك الحالي من ناقص 60 إلى ناقص 70 ملليفولت، وحقن 500 التيارات ميلي ثانية من ناقص 20 إلى زائد 90 picoamperes مع 10 الزيادات picoampere للحث على إمكانات العمل. وهذا يدل على نضوج الخلايا العصبية وإعادة برمجة ناجحة.

في وقت لاحق، والتحول إلى المشبك الجهد وقياس الصوديوم الداخلي وتأخر تصحيح التيارات البوتاسيوم في الخطوات النازل من 10 millivolts. هنا هو آخر المسجلة biocytin شغل الخلايا العصبية التي تظهر مورفولوجيا الخلايا العصبية ناضجة والعمود الفقري التشعب. هنا، التسجيلات الكهربائية الفيزيولوجية للخلايا العصبية التي أعيد برمجتها تظهر وجود اتصالات وظيفية ما بعد المينابتيكية مع تدابير النشاط العفوية.

تظهر الآثار النشاط المثبط الذي يتم حظره مع picrotoxin ، خصم مستقبلات GABAA والنشاط المثير الذي يتم حظره مع CNQX ، خصم مستقبلات AMPA. تظهر الخلايا العصبية المصححة بالفعل نشاط ما بعد الحقن في خمسة أسابيع بعد الحقن ، وتستمر في ثمانية أسابيع و 12 أسبوعًا بعد الحقن. عدد الخلايا العصبية مع إمكانات العمل الحالية المستحثة يزيد أيضا مع مرور الوقت.

وكشف تحليل أكثر تفصيلا العديد من أنماط اطلاق النار متميزة حيث تظهر غالبية الخلايا سريع ارتفاع النشاط مماثلة لparvalbumin interneurons. أظهر التحليل المناعي الكيميائي في 12 أسبوعًا المزيد من التعبير المشارك للمراسل GFP وparvalbumin. بعد هذا الإجراء يمكنك فحص التعبير الجيني مع التصحيح البحث عن تقنية أو تقييم الاتصال متشابك ثلاثي الأبعاد مع تتبع monosynaptic و iDISCO.

الآن أنه من الممكن إعادة برمجة غليا المقيم في parvalbumin التعبير عن interneurons، بدأنا التحقيق في ما إذا كانت هذه هي أصيلة ويمكن استخدامها كأداة علاجية. تذكر أن تتبع البروتوكولات والمبادئ التوجيهية المعمول بها عند التعامل مع الحيوانات واستخدام فيروس AAV.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 148 التحويل المباشر مشبك التصحيح كامل الخلية نظام ناقلات فليكس نظام Cre-inducible شرائح التسجيلات parvalbumin transdifferentiation التحويل العصبي

Related Videos

داخل القحف حقن الغدة المرتبطة ناقلات فيروسية

08:47

داخل القحف حقن الغدة المرتبطة ناقلات فيروسية

Related Videos

48.8K Views

توسيع الجنينية والكبار الخلايا الجذعية العصبية من قبل في الرحم الصعق الكهربائي أو حقن التجسيمي الفيروسية

19:45

توسيع الجنينية والكبار الخلايا الجذعية العصبية من قبل في الرحم الصعق الكهربائي أو حقن التجسيمي الفيروسية

Related Videos

17.5K Views

التسجيلات الفيزيولوجية الكهربية للخلايا العصبية المعاد برمجتها في شريحة دماغ الفأر

02:14

التسجيلات الفيزيولوجية الكهربية للخلايا العصبية المعاد برمجتها في شريحة دماغ الفأر

Related Videos

394 Views

الحقن التجسيمي للنواقل الفيروسية لإعادة برمجة الخلايا الدبقية في نموذج الفأر

03:58

الحقن التجسيمي للنواقل الفيروسية لإعادة برمجة الخلايا الدبقية في نموذج الفأر

Related Videos

363 Views

النسب-إعادة برمجة الخلايا المشتقة من خلية حوطية الدماغ البشري الكبار في الخلايا العصبية المستحثة

09:36

النسب-إعادة برمجة الخلايا المشتقة من خلية حوطية الدماغ البشري الكبار في الخلايا العصبية المستحثة

Related Videos

12.6K Views

حقن الفيروسي Intracerebroventricular من حديثي الولادة ماوس الدماغ للاستمرار وانتشار تنبيغ العصبية

10:15

حقن الفيروسي Intracerebroventricular من حديثي الولادة ماوس الدماغ للاستمرار وانتشار تنبيغ العصبية

Related Videos

62.8K Views

زرع داخل البطين من السلائف العصبية المهندسة لدراسات الهندسة العصبية في الجسم الحي

15:00

زرع داخل البطين من السلائف العصبية المهندسة لدراسات الهندسة العصبية في الجسم الحي

Related Videos

6K Views

زرع الذرية القشرية الهندسية كيميائياً في عقول الفئران المبكرة بعد الولادة

06:09

زرع الذرية القشرية الهندسية كيميائياً في عقول الفئران المبكرة بعد الولادة

Related Videos

6.4K Views

في المختبر النمذجة للأمراض العصبية باستخدام التحويل المباشر من الخلايا الليفية إلى خلايا السلف العصبية والتمايز إلى الخلايا الفلكية

11:42

في المختبر النمذجة للأمراض العصبية باستخدام التحويل المباشر من الخلايا الليفية إلى خلايا السلف العصبية والتمايز إلى الخلايا الفلكية

Related Videos

5.4K Views

زرع داخل المخ وتتبع التلألؤ الحيوي في الجسم الحي للخلايا السلفية العصبية البشرية في دماغ الفأر

06:12

زرع داخل المخ وتتبع التلألؤ الحيوي في الجسم الحي للخلايا السلفية العصبية البشرية في دماغ الفأر

Related Videos

3.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code