-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
شبكات خلايا القلب المستمدة من iPSC البشرية على صفائف متعدد الأقطاب الكهربائية الصغيرة للتسجيلات ا...
شبكات خلايا القلب المستمدة من iPSC البشرية على صفائف متعدد الأقطاب الكهربائية الصغيرة للتسجيلات ا...
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Human iPSC-Derived Cardiomyocyte Networks on Multiwell Micro-electrode Arrays for Recurrent Action Potential Recordings

شبكات خلايا القلب المستمدة من iPSC البشرية على صفائف متعدد الأقطاب الكهربائية الصغيرة للتسجيلات المحتملة للعمل المتكرر

Full Text
12,212 Views
08:53 min
July 15, 2019

DOI: 10.3791/59906-v

Viviana Zlochiver*1, Stacie L. Kroboth*1, Christopher R. Beal1, Jonathan A. Cook1, Rosy Joshi-Mukherjee1,2,3

1Aurora Research Institute,Advocate Aurora Health Care, 2Department of Biomedical Engineering, College of Engineering and Applied Science,University of Wisconsin-Milwaukee, 3Department of Medicine-Cardiovascular, School of Medicine,Johns Hopkins University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents protocols for developing human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocyte networks on multiwell MEA plates. The methods include reversible electroporation for action potential measurements, enabling high-throughput recordings over multiple days.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cardiovascular Biology
  • Electrophysiology

Background

  • Human induced pluripotent stem cells (hiPSCs) can differentiate into cardiomyocytes.
  • Multiwell MEA plates allow for simultaneous recording of electrical activity from multiple cell sites.
  • Electroporation is a technique used to manipulate cell membranes for experimental purposes.
  • Action potential measurements are crucial for assessing cardiomyocyte function.

Purpose of Study

  • To establish a reliable protocol for culturing hiPSC-derived cardiomyocytes.
  • To facilitate action potential measurements using multiwell MEA technology.
  • To provide a framework for testing compounds in electrophysiological studies.

Methods Used

  • Thawing and plating hiPSC-derived cardiomyocytes on MEA plates.
  • Implementing a custom MATLAB workflow for data analysis.
  • Performing quality checks on electrical activity post-plating.
  • Using electroporation to induce action potentials for measurement.

Main Results

  • Successful establishment of cardiomyocyte networks with spontaneous beating.
  • High-quality action potential recordings obtained from multiple sites.
  • Robust data processing methods developed for analyzing electrophysiological signals.
  • Demonstrated viability of cardiomyocytes in multiwell MEA culture.

Conclusions

  • The protocols provide a reliable method for studying cardiomyocyte electrophysiology.
  • High-throughput capabilities enable extensive compound testing.
  • Future applications may include drug screening and disease modeling.

Frequently Asked Questions

What are hiPSC-derived cardiomyocytes?
They are cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells, capable of differentiating into heart cells.
How does electroporation work in this context?
Electroporation temporarily permeabilizes the cell membrane to allow for the introduction of substances for measurement.
What is the significance of action potential measurements?
They provide insights into the electrical activity and health of cardiomyocytes, crucial for understanding heart function.
What challenges are associated with multiwell MEA plates?
Key challenges include proper cell plating and maintaining the quality of the MEA surfaces.
How can the data be analyzed?
Data can be analyzed using a custom MATLAB workflow designed for processing electrophysiological signals.
What applications can arise from this research?
Potential applications include drug testing, disease modeling, and understanding cardiac physiology.

تحتوي هذه المقالة على مجموعة من البروتوكولات لتطوير الخلايا الجذعية المستمدة من الخلايا الجذعية (hiPSC-CM) الشبكات المستزرعة على لوحات MEA متعددة الآبار لقلب غشاء الخلية للعمل القياسات المحتملة. يتم الحصول على تسجيلات عالية الإنتاجية من نفس مواقع الخلايا مرارا وتكرارا على مدى أيام.

يصف البروتوكول التالي تطور شبكات cardiomyocyte المستمدة من الخلايا الجذعية المشتقة من الخلايا الجذعية التي يسببها الإنسان على ألواح MEA متعددة المستويات لتكترول أغشية الخلايا بشكل عكسي لإجراء قياسات محتملة. ويمكن بعد ذلك استخدام المعلمات المحتملة للعمل لتوليد منحنيات الاستجابة هذه لاختبار المركبات للفيزياء الكهربائية. متعددة الwell MEA الترميز وطلاء الخلايا هي الخطوات الأكثر تحديا التي تحتاج إلى اهتمام خاص.

يجب على المرء أن يؤدي هذه الخطوات بجد وبسرعة لمنع قطرات تنتشر وتجفيف. مع الممارسة، وهذا يمكن التغلب عليها بسهولة. قمنا بتطوير واجهة مستخدم رسومية مخصصة لتجزئة واحدة، وضمان الجودة واستخراج المعلمة.

تم تنفيذ سير العمل المتين القوي لـ MATLAB للحد بسرعة من كميات كبيرة من البيانات التجريبية الخام إلى مجموعة غير متحيزة من أشكال الموجات المحتملة للعمل. تبدأ من خلال ذوبان الخلايا القلبية المشتقة من الخلايا الجذعية المشتقة من الخلايا الجذعية التي يسببها الإنسان وفقاً لتوجيهات المخطوطات. قم بتعليق الخلايا بلطف باستخدام ماصة نقل لتفكك كتل الخلية.

ثم الاستغناء بعناية مليلترين من تعليق الخلية في كل بئر من صفيحة ستة جيدا المغلفة الركيزة ووضع لوحة في حاضنة ثقافة الخلية في 37 درجة مئوية و 5٪ ثاني أكسيد الكربون. يجب أن تلتزم الخلايا بمساحات الجل لمدة 24 ساعة وتضرب تلقائيًا في 48 ساعة بعد الطلاء. قبل يومين من الطلاء إضافة 0.5 ملليلتر من الإنسان iPSC القلبية المتوسطة لثقافة القلب إلى كل بئر من 24 جيدا متعدد الأقطاب صفيف، أو لوحة MEA، وإجراء تسجيل خط الأساس للتحقق من نسبة إشارة إلى الضوضاء كفحص جودة الاتفاقات البيئية المتعددة الأطراف.

ثم، التعرق وسائل الإعلام، وشطف الآبار مع الماء المعقم، وتعقيم تحت ضوء الأشعة فوق البنفسجية في غطاء محرك تدفق لارينار بين عشية وضحاها. في اليوم التالي، إضافة 0.1 ملليلتر من FBS إلى كل بئر للعلاج المائي من الأسطح MEA واحتضان لوحة في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة. ثم تُفطّن الـ FBS، وتشطف كل بئر مرتين بـ 0.5 ملليلتر من الماء المعقم.

اتركي اللوحة لتجف في غطاء تدفق الفارم بين عشية وضحاها. في اليوم التالي، الماصات خمسة ميكرولترات من تخفيف الليفية العمل والاستغناء بعناية القطيرات في وسط كل بئر لتغطية جميع الأقطاب 12. ضع على الفور الطبق على سطح مرفوع داخل غرفة ترطيب تحتوي على ما يكفي من المياه المعقمة لتغطية سطح الطبق بأكمله.

ضع الغرفة مع لوحة في الحاضنة ثقافة الخلية لمدة ثلاث ساعات ثم المضي قدما مع طلاء الخلايا. عندما تكون على استعداد لطبقة cardiomyocytes، وضبط كثافة الخلية إلى 6،000 الخلايا في microliter عن طريق تمييع لهم في القلب iPSC الإنسان ذوبان وسط. استخدم الخفقان اللطيف للحفاظ على الخلايا من الترسب.

جلب لوحة MEA في غطاء محرك تدفق لاريتار وإزالة بعناية قطرة فيبرومينكين مع ماصة P10 دون لمس الأقطاب الكهربائية. الاستغناء فورا عن قطرات خلية خمس ميكرولتر إلى وسط البئر مع التأكد من تغطية جميع الأقطاب الكهربائية 12. القيام بذلك بشكل جيد واحد في وقت واحد لمنع الليفي من التجفيف.

عند الانتهاء من الطلاء، ضع لوحة MEA مرة أخرى في غرفة الترطيب المغطاة بشكل فضفاض وإعادته إلى حاضنة ثقافة الخلية لمدة ثلاث ساعات. بعد الحضانة، واستخدام ماصة P200 لإضافة بعناية 200 ميكرولترات من القلب iPSC الإنسان ذوبان المتوسطة لكل بئر دون إزعاج الخلايا. ضع لوحة MEA مرة أخرى في حاضنة ثقافة الخلية واستبدل الثقافة المتوسطة بعد 24 ساعة من الطلاء.

عندما تكون جاهزة للحصول على إشارة من cardiomyocytes، بدء اقتناء البرمجيات وإدراج لوحة MEA وفقا لتوجيهات المخطوطات. انقر فوق الزر استكشاف لتصور الإشارة في جميع الآبار والتحقق من جودة الإشارة في ظروف ثابتة. تدوين الملاحظات على الأقطاب الكهربائية مع إمكانية الحقل، أو FP، إشارات في نطاق ميليفولت.

ثم انقر على نفس الزر لوقف الاستكشاف. ولم تسجل بيانات حتى هذه اللحظة. انقر فوق الزر الانتقال لبدء التسجيل.

الأقطاب الكهربائية في كل بئر سوف تظهر إشارات FP في نافذة البيانات الخام. بعد 30 ثانية من التسجيل، انقر على زر تنشيط والسماح للكهربة أن تجري على المواقع المختارة لمدة 30 ثانية. ثم انقر على نفس الزر لوقف المحاكاة ومواصلة التسجيل لمدة 60 ثانية.

استخدام برنامج مخصص MATLAB المستندة إلى قطاع واستخراج مختلف إمكانات الحقل والعمل المعلمات البيانات المحتملة. أولا ، تشغيل شفرة تحليل الموجي وانقر على ملف وحدد Process.h5. البحث عن وتحديد mwd التي تم إنشاؤها سابقا.

h5 ملف. انقر فوق الزر "حفظ الدليل" لتغيير موقع التخزين لملفات الإخراج. ثم إنشاء قائمة انتظار معالجة إشارة عن طريق تحديد القطب ومجموعات جيدا من الفائدة ومن ثم النقر فوق زر قائمة الانتظار.

كرر هذه الخطوة لإضافة المزيد من الأقطاب الكهربائية وتركيبات البئر إلى قائمة الانتظار. إذا تم علاج الخلايا بالعقاقير، يمكن تحرير قائمة الانتظار عن طريق النقر مباشرة على اسم ميد، ميد تركيز. بمجرد الانتهاء من قائمة الانتظار، انقر فوق الزر تهيئة الطول الموجي، الذي سيبدأ المعالجة الأولية حيث يتم تحديد الإشارات واستخراجها للتجزئة.

عند الانتهاء من المعالجة، انقر على الزر تكبير، وحدد إمكانية الإجراء، أو منطقة AP، التي تهمك. انقر على الزر الاحتفاظ، ثم راجع اللوحات. يتم الكشف عن القمم وأحواض لكل شكل موجي، ويتم فرضها على APs تطبيع.

عند الانتهاء، انقر فوق الزر Keep للانتقال إلى التتبع التالي في قائمة الانتظار، وكرر العملية لبقية الأقطاب الكهربائية وإشارات التركيبة جيداً. إن قابلية البقاء وكثافة الطلاء في عضلة القلب بعد ذوبانها أمر بالغ الأهمية لثقافة MEA متعددة الويل. ويؤدي الطلاء السليم إلى ثقافة أحادية الطبقة صحية مع الضرب العفوي في 48 ساعة، في حين أن ضعف قدرة الخلية على البقاء يؤدي إلى ثقافات ذات نسبة عالية من السكان غير الميوسيتيين.

يؤثر تشتت قطرات الخلية على كثافة الثقافة ويمكن أن يؤدي حتى إلى موت الخلايا ، لذلك من المهم وضع الخلايا الدقيقة. تخضع الخلايا المستزرعة على الاتفاقات المتعددة الثقافات لفحص جودة النشاط الكهربائي بعد 48 ساعة من الطلاء. إذا كان 50٪ من الأقطاب الكهربائية داخل شبكة و 70٪ من إجمالي الشبكات لا تنتج إشارات FP ، فإن الثقافة هي دون المستوى الأمثل.

يمكن الحصول على تسجيلات AP بوساطة كهربائية عدة مرات 48 ساعة بعد طلاء MEA. لم يكن للكهربة المتعددة لنفس موقع الخلية عند الصفر، 24، 48، 72، و96 ساعة أي تأثير كبير على شكل AP بمرور الوقت. بالإضافة إلى ذلك، لم يتم ملاحظة أي ارتباط بين FP و بعد السعة الكهربائية AP من نفس موقع الخلية.

ميزة هامة من هذا الأسلوب هو أن لوحة MEA متعددة المستويات يمكن إعادة استخدامها عدة مرات. وللتدليل على موثوقية هذه المصفوفة، يتم سحب الطول الموجي 3,815 AP من ثلاث دفعات استعادة، ويتم استخراج بيانات مدة AP لفحص تكرار النتائج. عندما تكون ذات فائدة ، فمن الممكن إجراء فحوصات إضافية ، مثل التعبير الجيني ، وقياسات الكالسيوم العابرة وتشبك التصحيح للتحقيق في سلوك التيارات الأيونية المحددة.

هذه التقنية تمهد الطريق للباحثين لتعزيز النضج الكهربائي وكذلك لفحص آثار الجرعة المزمنة على عضلة القلب.

Explore More Videos

الهندسة الحيوية العدد 149 خلايا القلب المشتقة من iPSC صفيف متعدد الأقطاب الكهربائية إمكانات العمل الإمكانات الميدانية الفيزيولوجيا الكهربائية القلبية الكهربائي فحص الأدوية

Related Videos

قياس النشاط الفيزيولوجي الكهربي للشبكات العصبية باستخدام مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة

02:05

قياس النشاط الفيزيولوجي الكهربي للشبكات العصبية باستخدام مصفوفات الأقطاب الكهربائية الدقيقة

Related Videos

714 Views

السريع العصبية تمايز الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات لقياس نشاط الشبكة على المصفوفات الدقيقة الكهربائي

09:20

السريع العصبية تمايز الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات لقياس نشاط الشبكة على المصفوفات الدقيقة الكهربائي

Related Videos

28.1K Views

تحليل الكهربية من الخلايا الجذعية المستمدة من الخلايا الجذعية البشرية (هسك-كمس) باستخدام صفائف متعدد القطب (مياس)

11:13

تحليل الكهربية من الخلايا الجذعية المستمدة من الخلايا الجذعية البشرية (هسك-كمس) باستخدام صفائف متعدد القطب (مياس)

Related Videos

21K Views

الفئران قصيرة محور البطين شرائح القلب للدراسات الكهربية

07:51

الفئران قصيرة محور البطين شرائح القلب للدراسات الكهربية

Related Videos

8K Views

تسجيلات إمكانات العمل البصرية الخاصة بالنوع الفرعي في الإنسان التي يسببها Pluripotent الخلايا الجذعية المشتقة من Cardiomyocytes البطين

06:59

تسجيلات إمكانات العمل البصرية الخاصة بالنوع الفرعي في الإنسان التي يسببها Pluripotent الخلايا الجذعية المشتقة من Cardiomyocytes البطين

Related Videos

7.6K Views

قياس إمكانات العمل البصري أحادي الخلية في خلايا القلب المشتقة من الخلايا الجذعية المتعددة القدرات

08:39

قياس إمكانات العمل البصري أحادي الخلية في خلايا القلب المشتقة من الخلايا الجذعية المتعددة القدرات

Related Videos

4.8K Views

التطبيقات التقنية لمصفوفة الأقطاب الدقيقة وتسجيلات المشبك التصحيحي على الخلايا العضلية القلبية المشتقة من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان

10:30

التطبيقات التقنية لمصفوفة الأقطاب الدقيقة وتسجيلات المشبك التصحيحي على الخلايا العضلية القلبية المشتقة من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان

Related Videos

3.6K Views

نظام تحليل الخلايا الهجينة لتقييم التغيرات الهيكلية والمقلصة لخلايا عضلة القلب البشرية المشتقة من iPSC لتقييم مخاطر القلب قبل السريرية

08:03

نظام تحليل الخلايا الهجينة لتقييم التغيرات الهيكلية والمقلصة لخلايا عضلة القلب البشرية المشتقة من iPSC لتقييم مخاطر القلب قبل السريرية

Related Videos

2.2K Views

قياسات تشبه إمكانات العمل المستحثة بالليزر لخلايا عضلة القلب على صفائف الأقطاب الكهربائية الدقيقة لزيادة التنبؤ بعلم الأدوية الآمن

10:41

قياسات تشبه إمكانات العمل المستحثة بالليزر لخلايا عضلة القلب على صفائف الأقطاب الكهربائية الدقيقة لزيادة التنبؤ بعلم الأدوية الآمن

Related Videos

2.6K Views

فحص السمية القلبية عالي الإنتاجية باستخدام أحاديات الخلايا العضلية القلبية الناضجة المستحثة بالخلايا الجذعية البشرية المشتقة من الخلايا الجذعية

14:03

فحص السمية القلبية عالي الإنتاجية باستخدام أحاديات الخلايا العضلية القلبية الناضجة المستحثة بالخلايا الجذعية البشرية المشتقة من الخلايا الجذعية

Related Videos

2.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code