-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
تحديد حجم الكبد في لارفال زيبرافيش باستخدام المجهر برايتفيلد
تحديد حجم الكبد في لارفال زيبرافيش باستخدام المجهر برايتفيلد
JoVE Journal
Developmental Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Developmental Biology
Quantifying Liver Size in Larval Zebrafish Using Brightfield Microscopy

تحديد حجم الكبد في لارفال زيبرافيش باستخدام المجهر برايتفيلد

Full Text
7,111 Views
07:35 min
February 2, 2020

DOI: 10.3791/60744-v

Srishti Kotiyal*1, Alexis Fulbright*1, Liam K. O'Brien*1, Kimberley J. Evason1

1Department of Pathology, Department of Oncological Sciences, and Huntsman Cancer Institute,University of Utah School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

هنا نبين طريقة لقياس حجم الكبد في سمك الحمار الوحشي اليرقان، وتوفير وسيلة لتقييم آثار التلاعب الجيني والدوائي على نمو الكبد والتنمية.

توفر هذه الطريقة طريقة لقياس حجم الكبد في سمك الحمار الوحشي اليرقات. كما أنه يسمح لتقييم آثار التلاعب الوراثي والصيدلة على نمو الكبد والتنمية. هذه التقنية توفر طريقة سريعة ودقيقة لتصور وقياس الكبد وكذلك الأمعاء والبنكرياس.

بالإضافة إلى قياس حجم الكبد، يمكن أن تكون طريقة التشريح هذه مفيدة لإعداد الكبد والأمعاء والبنكرياس للتهجين الموضعي أو التصوير confocal. قبل محاولة التدرب على اليرقات التجريبية، تأكد من أنك قضيت وقتًا طويلاً في ممارسة العينات غير التجريبية وأن يكون لديك معدل نجاح كبير. من المهم تصور التوجه السليم وحركة يرقات الحمار الوحشي والملوط من أجل إزالة الجلد دون إزعاج الأعضاء المحيطة.

في غضون ثلاثة إلى سبعة أيام بعد الإخصاب ، بعد القتل الرحيم اليرقات ، واستخدام الماصات الزجاجية ومضخة ماصة لجمع ما يصل الى 15 يرقة في أنبوب ملليلتر اثنين. غسل اليرقات مرتين مع ملليلتر واحد من PBS 1X الباردة على الجليد. إزالة أكبر قدر من برنامج تلفزيوني ممكن باستخدام ماصة زجاجية ومضخة ماصة وإضافة ملليلتر واحد من PFA أربعة في المئة الباردة في برنامج تلفزيوني.

احتضان في أربع درجات مئوية على الأقل بين عشية وضحاها مع هزاز لطيف. باستخدام ماصة زجاجية ومضخة ماصة، وإزالة PFA من الأنبوب وشطف ثلاث مرات مع ملليلتر واحد من برنامج تلفزيوني الباردة. صخرة لمدة خمس دقائق بين يشطف.

الماصات عدة يرقات في PBS في بئر واحد من تسعة بئرين طبق زجاجي مستدير القاع. تحت المجهر، وإزالة الجلد المحيط الكبد باستخدام ملقط غرامة لعقد يرقة واحدة على ظهرها، تجتاح على جانبي الرأس بلطف ممكن. ثم استخدام ملقط غرامة جدا في اليد الأخرى للاستيلاء على الجلد فقط فوق القلب.

سحب الجلد إلى أسفل قطريا نحو ذيل السمك في الجزء السفلي من الطبق على الجانب الأيسر أو الأيمن من الأسماك. كرر للجانب الآخر. مواصلة الاستيلاء على اللوحات من الجلد وسحب إلى أسفل حتى تم إزالة جميع الجلد والميلانوفورات الإفراط أو بالقرب من الكبد.

إذا كان الصفار موجودًا لمدة خمسة إلى ستة أيام في يرقات ما بعد الإخصاب ، فرفع صفار اليرقات في قطعة واحدة عن طريق حمل السمك مع ملقط ناعم على ظهره واستخدام ملقط ناعم جدًا لدفع الصفار برفق. لمدة ثلاثة إلى أربعة يرقات DPF ، أمسك السمك مع ملقط ناعم على ظهره واستخدم ملقطًا ناعمًا جدًا لسكتة صفار البدء من الجانب البطني. كشط صفار قبالة في قطع.

ضع اليرقات المُشرَّحة في برنامج PBS الطازج والبارد في أنبوب ملليلتر باستخدام ماصة زجاجية ومضخة ماصة. لتركيب اليرقات ، صب بضعة ملليلترات من ثلاثة في المئة ميثيلسيللوز على غطاء طبق بيتري نظيفة من البلاستيك. استخدام الماصات الزجاجية والميصة مضخة لإضافة اليرقات إلى ميثيل سيلولوز، مضيفا برنامج تلفزيوني أقل مع اليرقات قدر الإمكان.

تحت مجهر تشريح في التكبير منخفضة، واستخدام ملقط غرامة لتوجيه الأسماك حتى أنها تكمن على الجانب الأيمن التي تواجه اليسار. تأكد من أن الأسماك التي سيتم تصويرها تتماشى تماما مع عين واحدة مباشرة على رأس العين الأخرى. إذا كان ذيل السمكة عازمًا ، فأزل الذيل عن طريق قرصه بقوة باستخدام ملقط لإزالته بحيث تضع السمكة مسطحًا.

تكبير عالية في التكبير والتركيز على الكبد, التأكد من أن مخطط الكبد واضحة للعيان. اضغط على الزر التقاط صورة لالتقاط صورة وحفظ الملف. كرر جميع الأسماك، والتأكد من التكبير هو نفسه لكل صورة.

التقاط صورة من ميكرومتر باستخدام التكبير نفسه. لاستخدام البرنامج R لتعمي جميع صور الكبد لتجنب التحيز المحقق المحتملة وتعزيز الدقة العلمية، وإعادة تسمية الملفات عشوائيا وإنشاء ملف العشوائية التي تحتوي على قائمة بأسماء الملفات الأصلية وأسماء الملفات المكفوفين المقابلة. فتح الملفات العشوائية في النظام، بدءا من ملف واحد.

اختر أداة التحديدات الحرّة وحدد كل كبد. اضغط على التحكم-M لقياس مساحة كل كبد. لأية كبدات لا يمكن قياسها بدقة لأن لديها الجلد المتبقية، صفار، هي خارج التركيز، أو ليست سليمة، إدراج قياس العنصر النائب.

حفظ القياسات في ملف نصي. إلى unblind وتحليل البيانات، افتح ملف القياسات وملف التعشية في برنامج جدول البيانات. إدراج عمود جديد في ملف القياسات وإضافة أسماء الملفات الأصلية للملفات المكفوفين باستخدام ملف التعشية.

حفظ هذا الملف كملف قياسات غير معمَس. فرز البيانات حسب اسم الملف الأصلي. استبعاد أي قياسات الكبد التي لم تكن الصور كافية.

إذا لزم الأمر، تحويل قيم القياس إلى مقياس المطلوب في ملليمتر مربع. افتح شريط المقياس في برنامج معالجة الصور. استخدم أداة Straight Straight Line لقياس ملليمتر واحد على شريط المقياس.

ثم يقوم برنامج معالجة الصور بقياس نفس وحدات الكبد، مما يعطي عامل تحويل. استخدم عامل التحويل لتحويل القياسات في ملف القياسات غير المكفوفين. تحديد الانحراف المعياري والمتوسط ثم حساب قيم P.

في ستة أيام بعد الإخصاب ، أظهرت يرقات حمار وحشي غير معدلة وراثيا الموقف الطبيعي وشكل الكبد فوق الأمعاء. وقد زادت حمار وحشي المعدلة وراثيا بشكل كبير حجم الكبد بالمقارنة مع الأشقاء غير المعدلة وراثيا. وتظهر هنا بعض الأمثلة على الصور غير الكافية والميكروفيتر.

اليرقة مع الجلد الذي يغطي الكبد ، واليرقة مع صفار يحجب الكبد ، واليرقة مع أجزاء من الكبد مقروص قبالة ، واليرقة مع خلع الكبد والسقوط ، يرقة مع الكبد المفقود ، يرقة مع مخطط الكبد الذي يصعب تحديد ، واليرقة مع تحديد المواقع غير لائق. عند محاولة هذا الإجراء، من المهم استخدام حركات صغيرة وخاضعة للسيطرة لمنع تلف الكبد. بالإضافة إلى المجهر مشرق المجال، يمكننا أيضا استخدام اليرقات تشريح بهذه الطريقة، للمجهر confocal، لتصور البروتينات مراسل الفلورسنت أو تلطيخ الفلورسنت المناعي، والتهجين في الموقع.

الفورمالديهايد أو PFA هو مادة مسرطنة مهيجة ويشتبه. يجب ارتداء القفازات عند التعامل مع PFA وينبغي معالجة الحلول المركزة في غطاء أبخرة كيميائية.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأحياء التنموي العدد 156 سمك الحمار الوحشي اليرقات تشريح حجم الكبد تحليل اليرقات التصوير

Related Videos

الآلي التحليلات السلوكية عالية الإنتاجية في يرقات اسماك الزرد

09:28

الآلي التحليلات السلوكية عالية الإنتاجية في يرقات اسماك الزرد

Related Videos

15.8K Views

التصوير الآلي شبه الإسفار من الأنسجة محددة في الزرد الأجنة

07:06

التصوير الآلي شبه الإسفار من الأنسجة محددة في الزرد الأجنة

Related Videos

10.1K Views

التقاط إصلاح الأنسجة في الزرد اليرقات مع الوقت الفاصل بين Brightfield Stereomicroscopy

14:29

التقاط إصلاح الأنسجة في الزرد اليرقات مع الوقت الفاصل بين Brightfield Stereomicroscopy

Related Videos

11.4K Views

باستخدام ورقة ضوء مضان المجهري لصورة التنمية الزرد العين

13:01

باستخدام ورقة ضوء مضان المجهري لصورة التنمية الزرد العين

Related Videos

34.7K Views

ارتفاع الدهون تغذية النموذج لليرقات اسماك الزرد: التغذية، يعيش التصوير، والكمي لتناول الطعام

11:30

ارتفاع الدهون تغذية النموذج لليرقات اسماك الزرد: التغذية، يعيش التصوير، والكمي لتناول الطعام

Related Videos

11K Views

استئصال الهيباتيك الجزئي في سمك الحمار الوحشي البالغ

06:06

استئصال الهيباتيك الجزئي في سمك الحمار الوحشي البالغ

Related Videos

4.5K Views

جيل من يرقات حمار وحشي Xenografts وتحليل سلوك الورم

12:08

جيل من يرقات حمار وحشي Xenografts وتحليل سلوك الورم

Related Videos

13.9K Views

تحليل البيئة الدقيقة للكبد أثناء التقدم المبكر لسرطان الخلايا الكبدية المرتبط بمرض الكبد غير الكحولي في أسماك الزرد

09:27

تحليل البيئة الدقيقة للكبد أثناء التقدم المبكر لسرطان الخلايا الكبدية المرتبط بمرض الكبد غير الكحولي في أسماك الزرد

Related Videos

4K Views

في الوقت الحقيقي والقياس المتكرر لنمو العضلات الهيكلية في أسماك الزرد الحية الفردية المعرضة لنشاط كهربائي متغير

11:41

في الوقت الحقيقي والقياس المتكرر لنمو العضلات الهيكلية في أسماك الزرد الحية الفردية المعرضة لنشاط كهربائي متغير

Related Videos

2.4K Views

في الجسم الحي تصوير الدماغ بالكامل ليرقات الزرد باستخدام المجهر الفلوري ثلاثي الأبعاد

06:27

في الجسم الحي تصوير الدماغ بالكامل ليرقات الزرد باستخدام المجهر الفلوري ثلاثي الأبعاد

Related Videos

5.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code