ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

نشكر يشي جين وأندرو تشيشولم على الدعم الأولي والإجهاد المستخدم في الدراسة. تم الاستفادة من سلالة البكتيريا OP50 تجاريا من مركز علم الوراثة Caenorhabditis (CGC) بتمويل من مكتب المعاهد القومية للصحة لبرامج البنية التحتية للبحوث (P40 OD010440). كما نشكر دارميندرا بوري على توحيد الإجراءات التجريبية. يتم تمويل الدراسة من المنحة الأساسية للمركز الوطني لأبحاث الدماغ (بدعم من إدارة التكنولوجيا الحيوية، الحكومة الهندية)، DBT/Wellcome Trust India Alliance في وقت مبكر منحة مهنية (منحة # IA/E/18/1/504331) إلى S.D.، ويلكوم ترست-DBT الهند التحالف منحة وسيطة (منحة # IA/I/13/1/500874) إلى A.G.-R ومنحة من مجلس البحوث العلمية والهندسية (الصربية: CRG/2019/002194) إلى A.G.R.

ولا يعلن صاحبا البلاغ عن وجود تضارب في المصالح.

كان فهم ديناميكيات الميكروتبول محور تركيز رئيسي في مجال أبحاث الهيكل الخلوي على مر السنين. Microtubules الخضوع للنوى وكارثة جنبا إلى جنب مع عملية مستمرة من عدم الاستقرار الديناميكي44،45،46،47. وقد تم الحصول على الكثير من هذه المعلومات من خلال المقايسات في المختبر مثل قراءات التشتت الخفيفة من توبولين الحرة مقابل البوليمرات، ميكروتوبوال نمو المقايسات من توبولين الفلور...

الخلايا العصبية لديها بنية متقنة مع مقصورات متخصصة مثل التشعبات، والهيئات الخلية، محاور عصبية، ونقاط الاشتباك العصبي. هيكل الخلايا العصبية الخلوية تتكون من microtubules، microfilaments، و neurofilaments وتنظيمها متميزة تدعم مقصورات الخلايا العصبية هيكليا ووظيفيا1،2،3،4،5،6،7،8،9،10 . على مر السنين، تم تحديد منظمة microtubule كمحدد رئيسي للقطب العصبية وظيفة. كما الخلايا العصبية الخضوع لإعادة عرض الهيكلية أثناء التنمية أو التجديد, ديناميات microtubule والتوجه تحديد الهوية, استقطاب النقل, نمو, وتطوير مختلف مقصورات الخلايا العصبية7. ولذلك، فمن الضروري لتقييم ديناميات microtubule والتوجه في الجسم الحي لربط مع عملية إعادة عرض الخلايا العصبية.
وتتكون microtubules من protofilaments من α β توبولين heterodimers مع نهايات زائد ديناميكية ومستقرة نسبيا ناقص ينتهي11،12. وقد مكن اكتشاف مجمع تلميح زائد والبروتينات المرتبطة ملزمة نهاية منصة لتقييم منظمة microtubule13. نهاية ملزمة البروتينات (EBP) ترتبط عابر مع نهايات زائد المتزايد من microtubule وديناميات ارتباطها لنمو protofilaments microtubule14،15. بسبب الارتباط المتكرر والتفكك من مجمع تلميح زائد مع microtubule، وظيفة انتشار نقطة من EBP GFP الموسومة يظهر على أنه "المذنب" في فيلم الفاصل الزمني15،16. منذ الملاحظة الرائدة في الخلايا العصبية الثديية16، تم استخدام بروتينات الربط النهائي الموسومة بالبروتينات الفلورية لتحديد ديناميات microtubule عبر أنظمة نموذجية مختلفة وأنواع الخلايا العصبية17و18و19و20و21و22و23.
نظرا لنظامه العصبي البسيط وجسمه الشفاف ، أثبت C. elegans أنه نظام نموذجي ممتاز لدراسة إعادة عرض الخلايا العصبية أثناء التطوير والتجديد في الجسم الحي. هنا نحن وصف أساليب لتسمية, صورة, وتحليل ديناميات microtubule والنمو أثناء تطوير وتجديد الخلايا العصبية التي تعمل باللمس في C. elegans. باستخدام ترميز وراثيا EBP-2::GFP, صورنا microtubules في الخلايا العصبية PLM, مما سمح لنا لتحديد قطبية microtubules في اثنين من neurites مختلفة من هذه الخلايا العصبية24. تسمح هذه الطريقة بمراقبة المذنبات EBP وتحديد كميتها كمقياس لديناميكيات microtubule في سياقات خلوية مختلفة ، على سبيل المثال ، يمكن تقييم التغيرات المحلية في سلوك microtubule الذي يبدأ تجديد المحور بعد استئصال الاكستوم باستخدام بروتوكولنا. يمكن تكييف هذا المقايسة للتحقيق في تنظيم ديناميات microtubule في مختلف العمليات الخلوية في أنواع الخلايا المتنوعة والخلفيات الوراثية.

<table><tbody><tr><td>سلالة دودة</td><td>CZ18975 CZ18975</td><td>مختبر Yishi</td><td>Jin تم إنشاؤها بواسطة Anindya Ghosh-Roy</td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Sigma</td><td>A9539</td><td>غطاء الديدان المتصاعدة</td></tr><tr><td>(18 مم × 18 مم)</td><td>Zeiss</td><td>474030-9010-000</td><td>الديدان المتصاعدة</td></tr><tr><td>حمام جاف مع كتلة تسخين</td><td>Neolab</td><td></td><td>ديدان متصاعدة</td></tr> شرائح <tr><td>زجاجية (35 مم × 25 مم)</td><td>نجمة</td><td></td> <td>زرقاءالديدان المتصاعدة</td></tr><tr><td>محلول حبة البوليسترين (4.55 × 10 ^ 13 جسيما / مل في وسط مائي مع الحد الأدنى من الفاعل بالسطح)</td> <td>شركة Polysciences Inc.</td><td>00876</td><td>الديدان المتصاعدة</td></tr><tr><td>أنابيب</td><td></td><td></td> الاختبار <td>الديدان المتصاعدة</td></tr><tr><td>OP50 السلالة البكتيرية</td><td>Caenorhabditis مركز علم الوراثة (CGC)</td><td>OP50</td><td>معالجة الدودة</td></tr><tr><td>60 مم لوحات بتري</td><td>Praveen Scientific</td><td>20440</td><td>شفاط مناولة الدودة</td></tr><tr><td>/ الشعيرات الدموية</td><td>VWR</td><td>53432-921</td> حاضنة <td>مناولة الدودة</td></tr><tr><td></td><td>باناسونيك</td><td>MIR554E</td><td>معالجة الدودة</td></tr><tr><td>سلك</td><td></td><td></td> البلاتين <td>التعامل مع الدودة</td></tr><tr><td>مجهر مجسم مع مرفق مضان</td><td>Leica</td><td>M165FC</td><td>معالجة الدودة</td></tr><tr><td>0.3٪ كلوريد الصوديوم</td><td>سيجما</td><td>71376</td><td>نمو الديدان الخيطية متوسط</td></tr><tr><td>0.25٪ الببتون</td><td>تي إم وسائل الإعلام</td><td>1506</td><td>نمو الديدان الخيطية متوسط</td></tr><tr><td>10 مجم / مل الكوليسترول</td><td>سيجما</td><td>C8667</td><td>نمو الديدان الخيطية المتوسطة</td></tr><tr><td>1 ملي مولار كلوريد الكالسيوم ثنائي هيدرات</td><td>سيجما</td><td>223506</td><td>نمو الديدان الخيطية متوسط</td></tr><tr><td>1 ملي كبريتات المغنيسيوم سباعي هيدرات</td><td>سيجما</td><td>M2773</td><td>نمو الديدان الخيطية متوسط</td></tr><tr><td>2٪ أجار</td><td>تي إم ميديا</td><td>1202</td><td>نمو الديدان الخيطية متوسط</td></tr><tr><td>25 ملي فوسفات ثنائي هيدروجين البوتاسيوم أحادي القاعدة</td><td>سيجما</td><td>P9791</td><td>وسط نمو الديدان الخيطية</td></tr><tr><td>0.1M أحادي القاعدة فوسفات ثنائي هيدروجين البوتاسيوم</td><td>Sigma</td><td>P9791</td><td>1X M9 عازلة</td></tr><tr><td>0.04M كلوريد الصوديوم</td><td>Sigma</td><td>71376</td><td>1X M9 عازلة</td></tr><tr><td>0.1M كلوريد الأمونيوم</td><td>فيشر Scientific</td><td>21405</td><td>1X M9 عازلة</td></tr><tr><td>0.2M ثنائي القاعدة ثنائي الصوديوم فوسفات الهيدروجين سباعي هيدرات</td><td>Sigma</td><td>S9390</td><td>1X M9 عازلة</td></tr><tr><td>زجاجات</td><td>Borosil</td><td></td><td>تخزين عازل</td></tr><tr><td>488 نانومتر ليزر</td><td>Zeiss</td><td></td><td>Imaging</td></tr><tr><td>5X الهدف</td><td>Zeiss</td><td></td><td>Imaging</td></tr><tr><td>63X الهدف</td><td>Zeiss</td><td></td><td>Imaging</td></tr><tr><td>Camera</td><td>Photometrics</td><td>Evolve 512 Delta</td><td></td></tr><tr><td>Imaging Computer System for Spinning Disk Unit</td><td>HP</td><td>Intel & reg; Xeon CPU E5-2623 3.00GHz</td><td>التصوير</td></tr><tr><td>مجهر التألق</td><td>Zeiss</td><td>Observer.Z1</td><td>التصوير</td></tr><tr><td>مصباح الهالوجين</td><td>Zeiss</td><td></td><td>التصوير</td></tr><tr><td>Mercury Arc lamp</td><td>Zeiss Imaging Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Imaging Spinning Disk Unit</td><td>Yokogawa</td><td>CSU-X1</td><td>Imaging</td></tr><tr><td>ZEN2</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Imaging Image J (فيجي الإصدار)</td><td></td><td></td><td>تحليل الصور ومعالجتها</td></tr><tr><td>Adobe Creative Cloud</td><td></td><td></td><td>Adobe تحليل الصور ومعالجتها</td></tr><tr><td>نظام الكمبيوتر لتحليل الصور</td><td>Dell</td><td>Intel & reg; النواة والتجارة; i7-9700 وحدة المعالجة المركزية 3.00 جيجا هرتز</td><td>معالجة الصور / التمثيل</td></tr></tbody></table>

في الجسم الحي تقييم ديناميات microtubule والتوجه في caenorhabditis elegans الخلايا العصبية

In vivo Assessment of Microtubule Dynamics and Orientation in Caenorhabditis elegans Neurons

في الخلايا العصبية، كان التوجه microtubule مقيم رئيسي لتحديد المحاور التي لديها زائد نهاية من microtubules و dendrites التي لديها عموما اتجاه مختلط. هنا نحن وصف أساليب لتسمية, صورة, وتحليل ديناميات microtubule والنمو أثناء تطوير وتجديد الخلايا العصبية التي تعمل باللمس في C. elegans. باستخدام المراسلين الفلورسنت المشفرة وراثيا من نصائح microtubule، ونحن صورت microtubules أكسنال. يمكن قياس التغيرات المحلية في سلوك microtubule الذي يبدأ تجديد المحور بعد استئصال الاكستوم باستخدام هذا البروتوكول. هذا المقايسة قابلة للتكيف مع الخلايا العصبية والخلفيات الوراثية الأخرى للتحقيق في تنظيم ديناميات microtubule في مختلف العمليات الخلوية.

وكمثال تمثيلي، وصفنا في المراقبة الحية لمذنبات EBP في الحالة الثابتة وتجديد محاور عصبية لخلايا PLM العصبية. وتقع الخلايا العصبية PLM في منطقة الذيل من الدودة مع عملية طويلة الأمامية التي تشكل المشبك وعملية قصيرة الخلفي. تنمو الخلايا العصبية PLM في الاتجاه الأمامي الخلفي بالقرب من البشرة وهي مسؤولة عن الإحساس باللمس اللطيف في الديدان. نظرا لهيكلها المبسط، وقابليتها للتصوير وmicrosurgery، وقد تم التحقيق على نطاق واسع الخلايا العصبية PLM لهيكلها الخلوي microtubule29،axonal النقل30،<...

وقد تم تقديم بروتوكول لتصوير microtubules الحيوية في الجسم الحي باستخدام البروتين ملزمة نهاية المسمى fluorescently. وصفنا أساليب لتسمية, صورة, وتحليل microtubules الحيوية في الخلايا العصبية الميكروتبول الجانبي الخلفي (PLM) من C. elegans.

في الجسم الحي تقييم ديناميات Microtubule والتوجه في Caenorhabditis elegans الخلايا العصبية

In neurons, microtubule orientation has been a key assessor to identify axons that have plus-end out microtubules and dendrites that generally have mixed ...

والهدف من هذا الإجراء هو تقييم تنظيم microtubule والديناميات في الجسم الحي. الخلايا العصبية هي خلايا مستقطبة مع مقصورات عصبية وdendritic ومتشابكة متميزة ، يتم الحفاظ عليها من خلال الهيكل الخلوي الأساسي. تشكل الخلايا الدقيقة غالبية الهيكل الخلوي العصبي ، وتحدد الديناميكيات والتوجه الأحداث الرئيسية أثناء تطور الخلايا العصبية ونضجها.تتكون الأنابيب الدقيقة من، ألفا وبيتا توبولين heterodimers، ومستقطبة بطبيعتها مع نهايات زائد ديناميكية للغاية ومستقرة ناقص نهايات. خلال البلمرة في الغايات الزائدة ، وهو مجمع متعدد الجزيئيات من البروتينات ملزمة نهاية ، والمنتسبين عابرة مع protofilaments وتعزيز تجميع الدرنات dimers. هذه التقنية ستساعدنا على تصور الميكروبات العصبية في الجسم الحي.باستخدام هذه التقنية، يمكن للمرء تحديد اتجاه والمعلمات الأخرى من microtubules الحيوية أثناء تطوير وتجديد الخلايا العصبية C.elegans. نحن عادة استخدام هذا المراسل لتصور ديناميات microtubule في الخلايا العصبية الحسية. ومع ذلك، يمكن للمرء أن يعبر عن هذا المراسل في أنواع الخلايا الأخرى مثل العضلات والجلد لتصور microtubules ديناميكية في هذه الخلايا.Fluorescently المسمى نهاية ملزمة البروتينات مثل EBP إلى GFP هنا ، تظهر كمذنبات. وقد ارتبطت ديناميات هذه المذنبات بالنمو المصاحب للميكروبات، ومؤشر رئيسي لقياس ديناميات الميكروتبول واتجاهه. من أجل مراقبة هذه المذنبات في نوع معين من الخلايا، يتم التعبير عن المتحولين جنسيا مع الحمض النووي من EBP-2 و GFP تحت مروج معين.للتعبير في الخلايا العصبية PLM، يتم التعبير عن هذا المتحول تحت جعل للمروج. يمكن مشاهدة هذه الديدان المعدلة وراثيا تحت مجهر ستيريو ، مع إعداد الفلورسينس قبل الفرز أو التركيب. لتركيب الديدان لتصوير المذنبات EBP، ونحن جعل 10٪ أرغوس في المخزن المؤقت M9.ووضع قطرة على شريحة زجاجية. يتم استخدام شريحة أخرى للضغط على قطرة في فيلم أن يتماسك في لوحة. نحن نستخدم 0.1 ميكرون، حبات البوليسترين كوسيلة تصاعد، يتم انتقاؤها عدد قليل من الديدان وإعادة تعليقها في حل حبة.يتم صيد زلة غطاء لشل حركة الديدان وتؤخذ للتصوير. يمكن تصوير تلك المثبتة على أي مجهر مضان مع كاميرا للتصوير عالي الدقة. تم تجهيز الإعداد مع وحدة القرص الغزل للحصول على أسرع وتقليل تبييض الصور وسمية الصورة.يتم الاحتفاظ الشريحة على خشبة المسرح ومجال الديدان تركز وتتركز باستخدام الإضاءة مشرق الميدان. يمكن استخدام هدف التكبير المنخفض مثل 5X أو 10X لهذا الغرض. يمكن إعادة تركيز الديدان على هدف تكبير عالي مثل 63X باستخدام نفس الإضاءة.ويوفر هذا الهدف دقة مكانية مثالية لتصوير المذنبات. يتم توسيط ثابت للخلية العصبية PLM تحت الإضاءة الفلورية لمنع التعرض للضوء لا مبرر له وتبييض الصورة من prum. للحصول على صورة نستخدم إرسال البرامج من المواقع.باستخدام تكوين التصوير الحي في قناة brightfield ، نركز منطقة ذيل الدودة ونركزها في حقل العرض. ويتبع ذلك تركيز الخلايا العصبية PNM باستخدام تكوين التصوير الضوئي مع ضوء الإثارة 488 نانومتر. بالنسبة لاكتساب الفاصل الزمني، يتم إنشاء إعداد تجريبي حيث يحدد وقت التعرض ومدة الفاصل الزمني والفاصل الزمني بين الإطارات المهارات الزمنية للتصوير.للقياسات الكمية بعض الأفلام من المذنبات EBP هي التي يتعين تحليلها على صورة J، وهو برنامج مفتوح المصدر. يفتح الفاصل الزمني المكتسب كخيط متعدد الصور ، يمكن معاينته كفيلم. في هذه الفاصل الزمني خاصة، يمكن رؤية المذنبات في جسم الخلية، عملية الأمامي والخلفي من الخلايا العصبية PLM.المذنبات التي تبتعد عن جسم الخلية تصنف على أنها زائد نهاية التدريجي، وتلك التي تتحرك نحو جسم الخلية تصنف على أنها ناقص نهاية التدريجي. لبدء التحليل يتم رسم خط مجزأة على المنطقة ذات الاهتمام، والتي في هذه الحالة هي العملية الداخلية للخلية العصبية PLM. يتم تحويل هذا الجزء الخط إلى kymograph باستخدام وظيفة إعادة تشريح الصور.وkymograph هو صورة الوقت المسافة مع التجاعيد قطري تمثل المذنبات تتحرك. يمكن رسم شرائح الخط المستقيم على هذه الآثار ويمكن تعيين معلمات القياس باستخدام قائمة التحليل. يمكن تحويل هذه المعلمات إلى كميات ووحدات قياسية قابلة للقياس في برنامج تحليل البيانات مثل Excel.عرض التتبع يتوافق مع طول النمو. يمثل hight مدة النمو ، وزاوية التجعد تعطي اتجاه المذنبات. ويمكن تصنيف هذه المذنبات كذلك إلى زائد نهاية التدريجي وناقص نهاية التدريجي، للعثور على التوجه النسبي لل microtubules.يمكن تكييف التعبير المعدل وراثيا عن EBTA GFP لمراقبة ديناميكيات microtubule في سياق خلوي مختلف ، مثل التجديد الجديد. لمراقبة ديناميات microtubule في المنطقة تصنيف المحاور، وأصيب المحور باستخدام ليزر femtosecond، والتي يمكن أن تقطع المحور على وجه التحديد دون التسبب في أضرار جانبية هائلة. بعد الإصابة ، يمكن استرداد الديدان على لوحات المحرك المصنفة للملاحظات اللاحقة.تظهر الخلايا العصبية PLM تجديدا قويا للكفر ، والذي يمكن ملاحظته في وقت مبكر بعد ست ساعات من الإصابة. لمنع السمية الضوئية لتجديد حقوق جديدة ، يتم إجراء التصوير الحي في مجهر قرص الغزل. ويمكن فيما بعد تحويل عمليات اقتناء المحاور المتجددة إلى كيموغراف لتحليل المذنبات.ويمكن بعد ذلك تفسير مدة واتجاه المسافة للمذنبات من حيث اتجاه وديناميات microtubule. توجهي الحرج وديناميات هي العوامل الرئيسية للعمليات الخلوية المدنية مثل تقسيم الخلية والهجرة وصيانة العمارة الخلوية. على الرغم من أن هناك العديد من الأدوات المتاحة لقياس ديناميات microtubule في قياس الجسم الحي يمكن أن يكون تحديا.Autoflorescence، سمية الصورة، على قطعة أثرية التعبير، وكثافة متغير المبلغ عنها هي بعض الصعوبات التي واجهتها أثناء المراقبة الحية للبروتينات ملزمة نهاية، لتقييم ديناميات microtubule. باستخدام معدل وراثيا متكامل مع تركيز منخفض من الحمض النووي المرحل والتصوير الإضاءة المنخفضة، وقد تناولت هذه الدراسة أساليب للتخفيف من بعض هذه التحديات. يمكن توسيع وحدات التصوير والتحليل الموصوفة هنا لتشمل المراسلين الآخرين القائمين على microtubule ونقل البروتين.هذا لا ينطبق فقط على الخلايا العصبية C.elegance، ولكن يمكن تطبيقها على أنواع الخلايا الأخرى وأنظمة النموذج.

in-vivo-assessment-microtubule-dynamics-orientation-caenorhabditis

Research

JoVE Journal

Neuroscience

علم الأعصاب

المصدر: Doser، R.، et al. التصوير تحت الخلوي لمعالجة الكالسيوم العصبي في الجسم الحي. J. Vis. Exp. (2023)يوضح هذا الفيديو التصوير في الجسم الحي لتدفق الكالسيوم تحت الخلوي في الخلايا العصبية في الحبل العصبي البطني لسلالات Caenorhabditis elegans المعدلة وراثيا. يتم استخدام مؤشرين متميزين للكالسيوم: مؤشر سيتوبلازمي في سلالة واحدة ومؤشر الميتوكوندريا في سلالة أخرى. لوحظت الخلايا العصبية تحت المجهر الفلوري لمراقبة التغيرات في الوقت الفعلي في شدة التألق داخل السيتوبلازم العصبي والميتوكوندريا ، مما...

تصوير ديناميكيات الكالسيوم تحت الخلايا في الخلايا العصبية لالتهاب الغدة المائية

مع صغر الجسم التشريح العصبي شفافة موثقة جيدا، ومجموعة من التقنيات الجينية قابلة...

الكالسيوم في الجسم الحي التصوير الخلايا العصبية في C. ايليجانس

بعد التعرض لضغوط بيئية محددة ، تخضع الديدان الخيطية Caenorhabditis elegans لدونة نمطية مظهرية واسعة النطاق للدخول في مرحلة الأحداث "dauer" المقاومة للإجهاد.  نقدم طرقا للتحريض الخاضع للرصدة وتصوير المرونة العصبية أثناء الدوير.

في فيفو التصوير من داور محددة العصبية في إعادة عرض C. ايليجانس

ايليجانس كاينورهابديتيس (C. ايليجانس) نموذج جيد لدراسة النقل محواري وداخل الخلايا. وهنا أصف على بروتوكول في فيفو تسجيل وتحليل للنقل محواري وإينترافلاجيلار في C. ايليجانس.

التثبيت من ايليجانس كاينورهابديتيس "تحليل النقل داخل الخلايا" في الخلايا العصبية

يصف هذا البروتوكول استخدام جينياً المرمزة Ca2 + الصحفيين لتسجيل التغييرات في النشاط العصبي في التصرف ايليجانس كاينورهابديتيس الديدان.

تصوير راتيوميتريك الكالسيوم من الخلايا العصبية الفردية في التصرف ايليجانس كاينورهابديتيس

هذا الأسلوب يوفر وسيله للزوجين optogenetics والمشفرة وراثيا مجسات الكالسيوم إلى مستويات الكالسيوم القاعدية صوره الأساس والتغيرات في العابرين الكالسيوم أثارت في عضلات الجسم الجدار من الكائن الحي النموذجي c. اليجنتس.

في فيفو الكالسيوم التصوير في c. الهيئة عضلات الجدار الجسم

هنا ، نقدم نهج التوافقية باستخدام المجهر عاليه الدقة ، والاداات الحسابية ، ووضع العلامات خليه واحده في الاجنه c. ايليجنس المعيشة لفهم ديناميات خليه واحده اثناء النمو العصبي.

المجهر الضوئي ورقه الخفيفة والمؤتمتة الخلايا النسب تحليلات لكتالوج Caenorhabditis الاجنه الجنينية مع القرار تحت الخلوية

توضح هذه الدراسة القياسات الكمية لحجم متشابك والتعريب، ومورفولوجيا العضلات، وشكل الميتوكوندريا في C. elegans باستخدام أدوات معالجة الصور المتاحة بحرية. يسمح هذا النهج للدراسات المستقبلية في C. elegans بمقارنة كمية مدى التغيرات الهيكلية للأنسجة والأعضاء نتيجة للطفرات الوراثية.

المناهج الكمية لدراسة الهياكل الخلوية ومورفولوجيا الأعضاء في الكنورهابدية

تصف الطرق الحالية نهجا غير متناسب لتصوير الكالسيوم عالي الدقة وشبه المجزأ في الجسم الحي في Caenorhabditis elegans باستخدام مؤشرات الكالسيوم المشفرة وراثيا المتاحة بسهولة.

التصوير تحت الخلوي للتعامل مع الكالسيوم العصبي في الجسم الحي

تصف الورقة تحسين معلمات اكتساب الفحص المجهري الفلوري لتصور النقل المحوري للشحنات الموسومة الداخلية بدقة خلية عصبية واحدة في الديدان الخيطية الحية.

تحسين تصور النقل المحوري للبضائع الداخلية بواسطة الفحص المجهري الفلوري في التهاب Caenorhabditis elegans الحي

اكتشف تقنية تصوير ديناميات الأنابيب الدقيقة في الخلايا العصبية لـ Caenorhabditis elegans باستخدام بروتين EBP المُصَوَّر بالفلورسنت. تُمكِّن هذه الطريقة الباحثين من دراسة التوجه والسلوك الديناميكي للهيكل الخلوي أثناء التطور والتجدد العصبي.

في الجسم الحي تقييم ديناميات Microtubule والتوجه في Caenorhabditis elegans الخلايا العصبية

استكشف المزيد من الفيديوهات