RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ar
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/62795-v
Francesco Giardini*1, Erica Lazzeri*1, Camilla Olianti*1, Giada Beconi1, Irene Costantini1,2, Ludovico Silvestri1,3,4, Elisabetta Cerbai1,5, Francesco S. Pavone1,3,4, Leonardo Sacconi1,3,6
1European Laboratory for Non-Linear Spectroscopy, 2Department of Biology,University of Florence, 3National Institute of Optics, National Research Council, 4Department of Physics and Astronomy,University of Florence, 5Department of Neurosciences, Psychology, Drugs and Child Health,University of Florence, 6Institute for Experimental Cardiovascular Medicine, Faculty of Medicine,University of Freiburg
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
نبلغ عن طريقة لإعادة البناء الميزوسكوبي لقلب الفأر بالكامل من خلال الجمع بين التطورات الجديدة في تحويل الأنسجة وتلطيخها مع تطوير مجهر ورقة ضوئية ممسوحة محوريا.
تجمع هذه المنهجية بين تحسين بروتوكول المقاصة وقدرة العين على التقسيم البصري لتقنية Mesos PIM مما يسمح لنا بإجراء عمليات إعادة بناء متوسطة المنظار بدقة ميكرومترية. يوفر إمكانية تصوير أنسجة القلب الضخمة أو حل قلوب الفأر بالكامل في مسح واحد دون فقدان تنظيم الأنسجة ثلاثي الأبعاد الأصلي. بعد أن يتم تقليب القلب بواسطة الشريان الأورطي القريب المغسول في محلول تيرو وتثبيته في 4٪ ألدهيد بارافورم في 0.01 مولار PBS ، يكون جاهزا لبدء بروتوكول المقاصة.
اغسل القلب ثلاث مرات في 0.01 مولار PBS عند أربع درجات مئوية لمدة 15 دقيقة. بعد هذه الخطوة ، يمكن تخزين القلب في PBS و 0.01٪ أزيد الصوديوم عند أربع درجات مئوية لعدة أشهر. احتضان القلب في 20 ملليلتر من محلول هيدروجيل في حالة اهتزاز عند 15 دورة في الدقيقة لمدة ثلاثة أيام عند أربع درجات مئوية.
قم بإزالة الغاز من العينة في درجة حرارة الغرفة باستخدام مجفف ومضخة تفريغ ونظام أنبوب يربط المجفف بكل من شريط المضخة وخط أنابيب النيتروجين. ضع العينة في المجفف وافتح القارورة مع إبقاء الغطاء عليها. أغلق المجفف وأزل الأكسجين من الأنبوب عن طريق فتح خط أنابيب النيتروجين.
قم بتشغيل مضخة التفريغ لإزالة الأكسجين من المجفف لمدة 10 دقائق. قم بإيقاف تشغيل المضخة وافتح مقبض المجفف إلى خط أنابيب النيتروجين. ثم افتح صنبور النيتروجين.
بمجرد أن يكون الضغط مساويا للضغط الجوي ، افتح المجفف بعناية وأغلق القارورة بسرعة. احتفظ بالقلب في محلول هيدروجيل منزوع الغازات عند 37 درجة مئوية لمدة ثلاث ساعات تقريبا في حالة راحة. عندما يتم بلمرة الهيدروجيل بشكل صحيح ويبدو جيلاتينيا تماما ، قم بإزالة القلب منه بعناية ووضعه في محلول مقاصة في القارورة بمحلول تطهير.
قم بتغيير محلول المقاصة في القارورة مرة كل ثلاثة أيام لتسريع إجراء التوضيح. بمجرد أن يظهر القلب واضحا تماما ، أخرجه من القارورة واغسله في 50 ملليلتر من برنامج تلفزيوني دافئ لمدة 24 ساعة في حالة اهتزاز. اغسل مرة أخرى في 50 ملليلتر من X PBS T لمدة 24 ساعة في حالة الاهتزاز.
احتضان العينة في 0.01 ملليغرام لكل ملليلتر جنين القمح aglutinin أرضية Alexa 633 في ثلاثة ملليلتر من واحد X PBS T في حالة اهتزاز عند 50 دورة في الدقيقة في درجة حرارة الغرفة لمدة سبعة أيام. بعد الحضانة لمدة سبعة أيام ، اغسل العينة في 50 ملليلتر من X PBS T في درجة حرارة الغرفة في الاهتزاز لمدة 24 ساعة. احتضان العينة في 4٪ PFA لمدة 15 دقيقة ثم اغسلها ثلاث مرات في 0.01 مولار PBS لمدة خمس دقائق لكل منها.
احتضان القلب على التوالي في 20 و 47٪ TDE في 0.01 PBS المولي لمدة ثماني ساعات لكل منهما. ثم أخيرا عند 68٪ TDE في 0.01 المولي PBS لتوفير معامل الانكسار المطلوب 1.46. املأ برفق حوالي 80٪ من كوارتز الكوارتز الخارجي بوسط معامل الانكسار.
املأ كوارتز الكوارتز الداخلي بنفس وسيط معامل الانكسار. اغمر العينة داخل quvet الداخلي. حرك العينة برفق إلى أسفل الكوفيت باستخدام ملاقط رفيعة ورتب القلب بمحوره الطولي الموازي للمحور الرئيسي للكوفيت لتقليل مسار ضوء الإثارة عبر الأنسجة أثناء المسح.
قم بإصلاح القابس المخصص بعناية فوق quvet الداخلي بمسمارين. قم بتركيب العينة على مرحلة المجهر باستخدام المغناطيس. قم بترجمة مرحلة العينة الرأسية يدويا لغمر quvet الداخلي في المرحلة الخارجية.
قم بتشغيل مصدر ضوء الإثارة بطول موجي يبلغ 638 نانومتر واضبطه على طاقة منخفضة في حدود ثلاثة ملي واط. حرك العينة باستخدام المترجم الآلي لإضاءة لوحة داخلية من الأنسجة. قم بتشغيل برنامج الكاميرا الحية لصورة HC واضبط مشغل الكاميرا على وضع ورقة ضوء مشغل الحافة الخارجية لدفع مشغل الاستحواذ للكاميرا بواسطة البرنامج المخصص الذي يتحكم في الإعداد بالكامل.
قم بتمكين الحفظ التلقائي في برنامج الكاميرا وقم بتعيين مجلد الإخراج حيث يجب حفظ الصور. اضبط موضع العينة يدويا في المستوى X Y باستخدام المترجمين الخطيين لنقل العينة إلى مركز مجال رؤية مستشعر الكاميرا. حرك العينة على طول المحور Z باستخدام المترجم الخطي الميكانيكي لتحديد حدود القلب لإعادة البناء المقطعي.
قم بزيادة طاقة الليزر إلى حوالي 20 ملي واط قبل البدء في جلسة التصوير. ابدأ الاستحواذ المقطعي بالنقر فوق زر البدء في لوحة الالتقاط الخاصة ببرنامج التصوير ، وفي نفس الوقت ابدأ في تحريك العينة على طول المحور Z بسرعة ثابتة تبلغ ستة ميكرومتر في الثانية باستخدام المترجم الآلي. إن الجمع بين منهجية الوضوح مع TDE كوسيط معامل الانكسار لا يغير بشكل كبير الحجم النهائي للعينة ولا يؤدي إلى تشوه الخواص للعينة.
أنتجت بصريات الإثارة ورقة ضوئية بحد أدنى من النفايات يبلغ حوالي ستة ميكرومتر تباعدت حتى 175 ميكرومتر على حافة مجال الرؤية. تضمن مزامنة مصراع الكاميرا المتداول مع المسح المحوري لنفايات ورقة الضوء جمع إشارة الانبعاث فقط في جزء العينة المتحمس مع نفايات ورقة الضوء مما يؤدي إلى متوسط F W H M يبلغ حوالي 6.7 ميكرومتر على طول مجال الرؤية بأكمله. تم أيضا تقدير وظيفة انتشار نقطة Z للمجهر من خلال إعادة بناء التصوير المقطعي للغلاف النانوي الفلوري وتم تقدير F W H M من 6.4 ميكرومتر بواسطة الملاءمة.
كما تم تأكيد قدرة النظام على حل الأغشية الخلوية المفردة في ثلاثة أبعاد مع إشارة كافية إلى نسبة الضوضاء في العضو بأكمله. إجراء إزالة الغازات هو الخطوة الأكثر أهمية في البروتوكول. إذا لم يتم تنفيذه بشكل صحيح ، فقد تواجه الأنسجة أضرارا تشير أثناء الحضانة في محلول التنظيف.
يمكن دمج البروتوكول المقدم مع بروتوكول متعدد التلوين لتحقيق إعادة بناء الأعضاء بالكامل التي تدمج الهياكل البيولوجية المختلفة ويمكن تطبيقها لدراسة النماذج المرضية.
Related Videos
09:00
Related Videos
36.5K Views
08:13
Related Videos
27.7K Views
09:49
Related Videos
16.9K Views
12:24
Related Videos
10.1K Views
11:07
Related Videos
16.2K Views
08:42
Related Videos
9.5K Views
11:32
Related Videos
6.4K Views
07:16
Related Videos
5.7K Views
05:58
Related Videos
1.2K Views
09:43
Related Videos
1.5K Views