-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
توصيف الوصلات العصبية العضلية في الفئران عن طريق الفحص المجهري المتحدي البؤري والفائق الدقة
توصيف الوصلات العصبية العضلية في الفئران عن طريق الفحص المجهري المتحدي البؤري والفائق الدقة
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Characterization of Neuromuscular Junctions in Mice by Combined Confocal and Super-Resolution Microscopy

توصيف الوصلات العصبية العضلية في الفئران عن طريق الفحص المجهري المتحدي البؤري والفائق الدقة

Full Text
4,373 Views
11:03 min
December 8, 2021

DOI: 10.3791/63032-v

Martina Marinello*1,2, Jérémie Cosette*1, Caroline Bogni1,2, Jérôme Denard1,2, Daniel Stockholm*1,3, Ana Buj-Bello*1,2

1Genethon, 91000, Evry, France, 2Université Paris-Saclay, Univ Evry, Inserm, Genethon, Integrare research unit UMR_S951, 91000, Evry, France, 3Ecole Pratique des Hautes Etudes, PSL Research University, 75014, Paris, France

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol describes a method for morphometric analysis of neuromuscular junctions utilizing combined confocal and STED microscopy. The approach is designed to quantify pathological changes in mouse models of spinal muscular atrophy (SMA) and ColQ-related congenital myasthenic syndromes (CMS).

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Neuromuscular junction analysis
  • Microscopy techniques

Background

  • Neuromuscular junctions are critical for motor neuron signal transmission.
  • Pathological changes in these junctions are observed in various motor disorders.
  • Confocal and STED microscopy offer high-resolution imaging for structural analysis.

Purpose of Study

  • To establish a streamlined protocol for analyzing neuromuscular junction morphology.
  • To evaluate structural alterations in mouse models of muscle disorders.
  • To facilitate future adaptations for assessing other subcellular structures.

Methods Used

  • The protocol involves muscle sample preparation and immunolabeling for imaging.
  • Mouse models of SMA and ColQ-related CMS were utilized.
  • Key steps include teasing muscle fibers, blocking, and applying primary and secondary antibodies.
  • Image acquisition was performed using confocal and STED microscopes, followed by image analysis with Image J macros.

Main Results

  • Quantitative analysis revealed a decrease in post-synaptic motor end plate volume and fragmentation in mutant mouse lines.
  • Changes in maximum intensity projection and tortuosity were observed through customized Image J macros.
  • These results contribute to understanding the structural deficits in neuromuscular junctions associated with SMA and CMS.

Conclusions

  • This study demonstrates an effective method for quantifying neuromuscular junction alterations.
  • The protocol enables researchers to assess the morphological impacts of genetic mutations on neuromuscular function.
  • Insights gained could inform strategies for understanding and treating neuromuscular diseases.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using confocal and STED microscopy for this analysis?
These techniques provide high-resolution imaging of neuromuscular junctions, allowing for detailed morphometric assessment vital for understanding pathological changes.
How are muscle samples prepared for imaging?
Muscle fibers are carefully teased into bundles and processed with immunolabeling techniques to visualize specific components at the junctions.
What types of data are obtained from this protocol?
The analysis yields quantitative measurements of neuromuscular junction structure, including volume, intensity projection, and tortuosity, which are essential for assessing disease impact.
How can this method be adapted for other studies?
The morphological quantification approach can be tailored to study various subcellular structures beyond neuromuscular junctions, enhancing its application across different research contexts.
What key results were observed in the study?
Mutant mouse lines exhibited smaller and more fragmented motor end plates, indicating significant morphological changes associated with neuromuscular diseases.
What are the important considerations when using this protocol?
Careful attention to sample preparation and imaging settings is crucial, as these directly influence the accuracy and reliability of the morphological measurements obtained.

يصف هذا البروتوكول طريقة للتحليل المورفومتري للوصلات العصبية العضلية عن طريق الفحص المجهري متحد البؤر و STED المشترك الذي يستخدم لتحديد التغيرات المرضية في نماذج الفئران من SMA و ColQ-related CMS.

يساعد هذا البروتوكول على التحليل الكمي لبنية 3D للوصلات العصبية العضلية بدقة قريبة من المجهر الإلكتروني باستخدام إجراء بسيط. الميزة الرئيسية لهذا البروتوكول هي أن عينات العضلات تتم معالجتها بشكل مشابه وموسومة مناعيا للفحص المجهري متحد البؤر و STED ، مما يقلل من الوقت اللازم لتقييم بنية الوصلة العصبية العضلية الدقيقة في النماذج الحيوانية. يمكن تكييف القياس الكمي المورفولوجي الذي طورناه بسهولة لتحليل الهياكل تحت الخلوية الأخرى.

إنه لمن دواعي سروري أن أقدم الدكتورة مارتينا مارينيلو ، عالمة من فريقي ستوضح كيفية إجراء إغاظة العضلات وتلطيخ المناعة وتقديم بعض التوصيات للتطبيق الناجح لهذا البروتوكول. يسعدني أن أقدم الدكتور جيريمي كوزيت من منصة التصوير في Genethon الذي سيعرض الحصول على الصور وتحليلها باستخدام المجاهر متحدة البؤر و STED. بعد القتل الرحيم ، ابدأ في إغاظة عضلات الظنبوب الأمامية في حزم ألياف صغيرة يبلغ عرضها حوالي ملليمتر واحد باستخدام ملقطين مسنين دقيقين.

بعد ذلك ، انقل حزم العضلات هذه إلى صفيحة مكونة من 24 بئرا تحتوي على 1٪ Triton X-100 محضرة في PBS واتركها تهيج بلطف لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة أو خمس ساعات عند أربع درجات مئوية. بعد غسل العينات ثلاث مرات لمدة خمس دقائق باستخدام PBS في درجة حرارة الغرفة ، قم باحتضان العينات بمحلول مانع يتكون من 4٪ BSA محضر في PBS مع 1٪ Triton X-100 لمدة أربع ساعات عند أربع درجات مئوية تحت تحريض لطيف. بعد ذلك ، احتضان العينات طوال الليل بنفس محلول الحجب الذي يحتوي على أجسام مضادة أولية وحيدة النسيلة ضد الخيوط العصبية M أو البروتين السكري الحويصلي المشبكي 2 لتسمية نهايات المحور العصبي قبل المشبكي أو المناطق النشطة ، على التوالي.

في اليوم التالي ، اغسل حزم العضلات المصنفة ثلاث مرات لمدة خمس دقائق باستخدام PBS تحت التحريض اللطيف. بعد ذلك ، احتضنها بأجسام مضادة ثانوية مناسبة عن طريق وضعها على شاكر لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة. بعد غسل حزم العضلات مرة أخرى ، ضعها على شريحة مع وسيط التركيب.

بعد ذلك ، ضع غطاء زجاجي بدرجة 1.5 درجة على الجزء العلوي ، متبوعا بمغناطيس أسطواني على جانبي الشريحة للضغط وتسطيح العضلات. للحصول على الصور باستخدام المجهر متحد البؤر ، قم بتشغيل برنامج المجهر واختر الجهاز كوضع تكوين وجمع أكوام الصور للتقاطعات العصبية العضلية في كل مجموعة تجريبية وفقا للإعدادات المذكورة في مخطوطة النص. في نهاية الجلسة ، انقر فوق فتح في عارض ثلاثي الأبعاد واختر ممثل تقاطع عصبي عضلي لمجموعة تجريبية لتصور وضع العلامات ثلاثية الأبعاد.

لحساب الوصلة العصبية العضلية بعد المشبكي وحجم اللوحة ، ومنطقة إسقاط الكثافة القصوى ، والتعرج النسبي ، اسحب الماكرو وأفلته لتحديد حجم الوصلة العصبية العضلية إلى نافذة Image J ، وعندما يفتح الماكرو في نافذة ثانية ، انقر فوق وحدات الماكرو وتشغيل الماكرو. حدد المجلد الأصلي الذي يحتوي على المجلدات الفرعية للتقاطع المراد تحليلها وانقر فوق تحديد. ثم ، في القائمة المنبثقة لمجلد الحفظ ، حدد مجلد التخزين وانقر فوق تحديد.

في القائمة المنبثقة الجديدة المسماة نوع الصورة، حدد تنسيق عمليات الاستحواذ على مكدس Z. حدد قناة RGB المقابلة لتلطيخ الاهتمام وحدد حجم X و Y بكسل وخطوة Z. إذا تم تحديد تنسيقات ملفات خاصة ، فإن الماكرو يقرأ مباشرة حجم البكسل والخطوة Z.

لتحديد تراكم الخيوط العصبية قبل المشبكي ، اسحب الماكرو وأفلته لتحديد كمية تراكم الوصلة العصبية العضلية إلى نافذة Image J ، وانقر فوق وحدات الماكرو وتشغيل الماكرو. حدد المجلدات الفرعية للوصلة ومجلد التخزين وتنسيق عمليات الاستحواذ على مكدس Z كما هو موضح سابقا. بعد ذلك ، في النافذة المنبثقة Staining Infos ، أشر إلى التسمية واللون قبل المشبكي وما بعد المشبكي وانقر فوق OK.In النافذة المنبثقة Pixel Size ، وحدد حجم البكسل X ، Y على أنه 0.072 ميكرومتر ، والخطوة Z على أنها 0.5 ميكرومتر ، وانقر فوق موافق. إذا تم تحديد تنسيقات ملفات خاصة ، فإن الماكرو يقرأ مباشرة حجم البكسل والخطوة Z.

لحساب المسافة بين خطوط مستقبلات الأسيتيل كولين ، حدد قائمة Quantify أعلى النافذة المركزية. انقر فوق علامة التبويب أدوات ، وحدد الكثافة ، وانقر على أيقونة ملف تعريف الخط. اضبط أخذ العينات الزائدة على واحدة وحدد فرز القنوات.

انقر فوق علامة التبويب Open Projects وحدد الصورة التي تمت تصفيتها ليتم تحليلها. ثم ، انقر فوق رمز خط الرسم وتتبع خطا يتقاطع بشكل عمودي عدة خطوط أو طيات وصلة. انقر فوق الجزء العلوي من القمة الأولى وحرك مؤشر الماوس أثناء الضغط على زر الماوس الأيسر حتى يتم الوصول إلى القمة القصوى التالية.

لاحظ قيمة DX ، والتي تتوافق مع المسافة بين القمتين. انقر بزر الماوس الأيمن على الماوس أثناء وجودك في صورة النافذة اليمنى وحدد حفظ عائد الاستثمار. بعد النقر على أيقونة السهم ، انقر فوق عائد الاستثمار واحذفه بالنقر فوق رمز bin.

لحساب عرض شريط مستقبلات الأسيتيل كولين ، حدد الكثافة في اللوحة العلوية اليسرى ضمن علامة التبويب الأدوات ، وانقر فوق رمز تحديد FWHM ، وحدد قنوات الفرز. ثم انقر فوق علامة التبويب فتح المشاريع وحدد الصورة التي تمت تصفيتها ليتم تحليلها. بعد ذلك ، انقر فوق رمز رسم المستطيل في القائمة العلوية للنافذة اليمنى.

حدد شريطا أفقيا أو رأسيا وارسم مستطيلا بشكل عمودي على الشريط. يظهر ملف تعريف في النافذة المركزية. انقر فوق رأسي أو أفقي من قائمة متوسط العرض الموجودة في اللوحة اليمنى ، اعتمادا على ما إذا كان اتجاه الشريط رأسيا أو أفقيا.

انقر فوق الإحصائيات في النافذة المركزية لقراءة قيمة FWHM ثم احفظ وحذف عائد الاستثمار كما هو موضح سابقا. بدت لوحة نهاية المحرك بعد المشبكي ، الموسومة ب alpha-Bungarotoxin الفلورية ، أصغر حجما ومجزأة في طفرات خطين من الفئران. كشف القياس الكمي لمداخن الوصلة العصبية العضلية Z باستخدام وحدات ماكرو Image J المخصصة عن انخفاض ملحوظ في حجم اللوحة الطرفية ، وإسقاط الكثافة القصوى ، والتعرج النسبي في كلا نموذجي فأر المرض مقارنة بعناصر التحكم ، مما يشير إلى عيوب نضج الوصلة العصبية العضلية.

كشف القياس الكمي لتوزيع فرع المحور المحوري قبل المشبكي باستخدام الماكرو المخصص Image J عن نمط متغير في توزيع الخيوط العصبية M في النموذجين الحيوانيين مع زيادة وضع العلامات المناعية. من خلال تلطيخ البروتين السكري الحويصلي المشبكي 2 ، لوحظ انخفاض بنسبة 43٪ في نسبة إشغال المناطق المحتوية على مستقبلات الأسيتيل كولين مع المناطق النشطة الطرفية العصبية المجاورة في Smn 2B / الفئران. تم تصور جانب لوحات نهاية ما بعد المشبكي للوصلة العصبية العضلية بوضوح من خلال وضع العلامات على السموم الفلورية ألفا بونجاروتوكسين وتحليل ملف تعريف الشدة.

كشف تقييم معلمات الوصلة العصبية العضلية عن زيادة في مسافة الطيات الموصلة وعرض خطوط مستقبلات الأسيتيل كولين في عضلة الساق للمتحولات. للحصول على نتائج موثوقة ، من الضروري ندف العضلات بشكل صحيح ، مع إيلاء اهتمام خاص للقوة المطبقة لفصل حزم العضلات. يمكن أن يساعد هذا البروتوكول في الحصول على توصيف مورفولوجي أكثر تعمقا للوصلة العصبية العضلية ، والتي كانت تحسب في السابق فقط من خلال إجراءات معقدة وتستغرق وقتا طويلا ، مثل المجهر الإلكتروني النافذ.

مهد إجراء التصوير STED الطريق للتحقيق في رؤى جديدة تتعلق بعلامات ما قبل وبعد المشبكي ، والتي تساهم في الفيزيولوجيا المرضية للأمراض التي تؤثر على الموصل العصبي العضلي.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 178

Related Videos

تشريح والتصوير من المناطق النشطة في ذبابة الفاكهة الوصل العصبي العضلي

06:05

تشريح والتصوير من المناطق النشطة في ذبابة الفاكهة الوصل العصبي العضلي

Related Videos

16K Views

صور متتابعة تبيض لتحديد خلايا شوان واحدة عند تقاطع الاعصاب

11:12

صور متتابعة تبيض لتحديد خلايا شوان واحدة عند تقاطع الاعصاب

Related Videos

11K Views

التصوير الفلوري لديناميكيات الكالسيوم عند التقاطعات العصبية العضلية في الحجاب الحاجز للفأر المعدل وراثيا

02:48

التصوير الفلوري لديناميكيات الكالسيوم عند التقاطعات العصبية العضلية في الحجاب الحاجز للفأر المعدل وراثيا

Related Videos

531 Views

توصيف الوصلات العصبية العضلية في الفئران عن طريق الفحص المجهري المشترك متحد البؤر والفائق الدقة

04:07

توصيف الوصلات العصبية العضلية في الفئران عن طريق الفحص المجهري المشترك متحد البؤر والفائق الدقة

Related Videos

376 Views

تشريح العضلات Abdominis المستعرض لتحليل تقاطع العصبية والعضلية جبل كامل

06:12

تشريح العضلات Abdominis المستعرض لتحليل تقاطع العصبية والعضلية جبل كامل

Related Videos

12.3K Views

على الموصل العصبي العضلي: قياس المشبك الحجم، التغييرات تجزئة ومتشابك الكثافة البروتين عن طريق متحد البؤر مضان المجهر

12:18

على الموصل العصبي العضلي: قياس المشبك الحجم، التغييرات تجزئة ومتشابك الكثافة البروتين عن طريق متحد البؤر مضان المجهر

Related Videos

22.6K Views

التصوير فائق الدقة لدراسة التعريب المشترك للبروتينات وعلامات متشابك في الخلايا العصبية الأولية

14:02

التصوير فائق الدقة لدراسة التعريب المشترك للبروتينات وعلامات متشابك في الخلايا العصبية الأولية

Related Videos

6.2K Views

تشريح ألياف العضلات الهيكل العظمي واحد للتحليلات Immunofluorescent ومورفومتري من تقاطعات العضلات العصبية جبل كامل

08:41

تشريح ألياف العضلات الهيكل العظمي واحد للتحليلات Immunofluorescent ومورفومتري من تقاطعات العضلات العصبية جبل كامل

Related Videos

10K Views

تسجيل انتقالات الكالسيوم في الوصلة العصبية العضلية للفأر بدقة زمنية عالية باستخدام المجهر البؤري

11:12

تسجيل انتقالات الكالسيوم في الوصلة العصبية العضلية للفأر بدقة زمنية عالية باستخدام المجهر البؤري

Related Videos

2.3K Views

تصور الخصائص المورفولوجية للوصلة العصبية العضلية في عضلة الجرذ الإنسية المعدية

08:42

تصور الخصائص المورفولوجية للوصلة العصبية العضلية في عضلة الجرذ الإنسية المعدية

Related Videos

5.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code