-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
جيل قوي وقابل للتكرار للغاية من عضويات الدماغ القشرية لنمذجة الشيخوخة العصبية الدماغية في الم...
جيل قوي وقابل للتكرار للغاية من عضويات الدماغ القشرية لنمذجة الشيخوخة العصبية الدماغية في الم...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Robust and Highly Reproducible Generation of Cortical Brain Organoids for Modelling Brain Neuronal Senescence In Vitro

جيل قوي وقابل للتكرار للغاية من عضويات الدماغ القشرية لنمذجة الشيخوخة العصبية الدماغية في المختبر

Full Text
4,547 Views
05:40 min
May 5, 2022

DOI: 10.3791/63714-v

Mohammed R. Shaker*1, Zoe L. Hunter*1, Ernst J. Wolvetang1

1Australian Institute for Bioengineering and Nanotechnology,The University of Queensland

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a novel and efficient cortical organoid culture system designed to model brain senescence in vitro. Using standard feeder-free human pluripotent stem cell (hPSC) cultures, the protocol emphasizes robustness and reproducibility, enabling insights into neuronal aging.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Stem Cell Biology
  • Cell Culture Techniques

Background

  • Cortical organoids are vital for studying brain development and aging.
  • Heterogeneity and reproducibility have been persistent challenges in organoid generation.
  • This protocol aims to address these issues by detailing a step-by-step guide.

Purpose of Study

  • To develop a reliable technique for generating cortical organoids.
  • To investigate neuronal aging processes using the organoid platform.
  • To facilitate research on human brain senescence in vitro.

Methods Used

  • The protocol involves differentiating hPSCs into neuroectodermal colonies and then into 3D neuroectodermal spheroids.
  • The generated organoids are cultured and assessed for signs of senescence over time.
  • Key steps include careful washing with HBSS, dispase treatment, and immunofluorescence staining.
  • Organoids exhibit significant proliferation and budding characteristics within three weeks.

Main Results

  • Organoids displayed typical signs of senescence, such as increased beta-galactosidase activity and expression of senescence markers.
  • Neural stem cells formed structured neural rosettes, demonstrating apical-basal polarity.
  • The study established the platform's utility for investigating aging-related processes in neurons.

Conclusions

  • This research provides a robust method for generating cortical organoids that can model neuronal aging.
  • The findings hold implications for understanding human brain development and age-related neurodegenerative processes.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of the cortical organoid model?
The cortical organoid model allows for a more accurate representation of human brain tissue, enabling the study of neuronal aging and development in a controlled laboratory setting.
How is the neuroectodermal differentiation implemented?
Neuroectodermal differentiation involves plating hPSC colonies, inducing with N2 medium and dual SMAD inhibitors, and transitioning from 2D to 3D spheroids.
What types of outcomes can be observed from this method?
Researchers can observe structural characteristics, expression of neuronal markers, and signs of cellular senescence through molecular and imaging techniques.
How can this method be applied to other areas of research?
This organoid culture system can be adapted for studies on various neurological diseases, offering insights into development and aging in different contexts.
Are there any limitations to this protocol?
Key limitations include the technical skill required for precise differentiation and the need for thorough washing to ensure no residual enzymes affect organoid health.

في هذه الدراسة ، نقدم تقنية مفصلة لنظام زراعة عضوي قشري بسيط ولكنه قوي باستخدام ثقافات hPSC القياسية الخالية من التغذية. هذا بروتوكول سريع وفعال وقابل للتكرار لتوليد المواد العضوية التي تشكل جوانب شيخوخة الدماغ في المختبر.

يعالج هذا البروتوكول بعض القضايا الرئيسية الموجودة في توليد المواد العضوية مثل المتانة والموثوقية ، وتمكنا من تطبيق هذه المواد العضوية المحسنة على الأبحاث المبتكرة حول الشيخوخة العصبية. عدم التجانس والتكاثر هي قضايا مهمة عند توليد عضويات الدماغ القشرية . للتغلب على هذه ، نقوم أولا بتمييز hPSCs إلى مستعمرات عصبية خارجية ثم كرويات ظهارية عصبية ، والتي تولد بنية أنسجة قابلة للتكرار.

تبدأ هذه المواد العضوية القشرية في الدماغ في إظهار علامات نموذجية للشيخوخة بعد زراعة طويلة في المختبر ، مما يجعلها منصة مفيدة لدراسة العمليات العصبية المرتبطة بالشيخوخة. للبدء ، قم بلوحة مستعمرات hPSC على مصفوفة غشاء قبو مؤهل hESC من بئر واحد من لوحة من ستة آبار عند التقاء 60٪ في ثلاثة آبار لتحقيق كثافة 20 إلى 30٪ ثم المضي قدما في تحريض المستعمرات العصبية ثنائية الأبعاد. أضف وسيط N2 طازجا مكمل بمثبطات SMAD مزدوجة يوميا إلى كل بئر خلال الأيام الثلاثة القادمة.

لتوليد كرويات ثلاثية الأبعاد عصبية خارجية الجلد من مستعمرات ثنائية الجلد العصبية المستحثة ، قم بإزالة ملليلتر من وسط N2 من لوحة البئر الستة واغسلها مرة واحدة باستخدام HBSS لضمان إزالة كل وسط N2. أضف ملليلتر واحد من dispase إلى كل مستعمرة تحتوي على بئر. احتضن الطبق لمدة 20 إلى 25 دقيقة عند 37 درجة مئوية وتحقق من انفصال المستعمرة بانتظام.

في نهاية الحضانة ، لوقف نشاط إنزيم dispase ، أضف ملليلتر واحد من وسط N2 إلى البئر. باستخدام طرف ماصة P1000 واسع التجويف أو طرف ماصة P1000 معدل مقطوع بمقص معقم ، انقل المستعمرات إلى أنبوب 15 ملليلتر واسمح لكتل المستعمرة بالغرق في قاع الأنبوب بجاذبية. ثم باستخدام طرف ماصة P1000 قياسي ، قم بإزالة السوبرناتانت بعناية.

استبدله بملليلتر واحد من وسط N2 الطازج وكرر الغسيل ثلاث مرات لضمان الإزالة الكاملة للديسباس. بعد تعليق كتل الخلايا ووسط N2 ، انقل تعليق الخلية إلى بئر واحد من صفيحة البئر الستة وأضف 40 نانوغرام لكل ملليلتر من bFGF. بعد التقسيم المبرد للعضويات ، قم بإزالة محلول التركيب الزائد عن طريق نقل الشرائح إلى حاوية تلطيخ الشرائح بغطاء وغسل الأنسجة العضوية المجزأة ثلاث مرات باستخدام PBS لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة.

ثم احتضن الشرائح بين عشية وضحاها عند 37 درجة مئوية باستخدام محلول تلطيخ بيتا غالاكتوزيداز الطازج. اغسل الأنسجة الملطخة ثلاث مرات باستخدام PBS لمدة 10 دقائق لكل منها في درجة حرارة الغرفة لإزالة محلول بيتا غالاكتوزيداز. الآن قم بتركيب الأنسجة المغسولة باستخدام حامل زجاجي مضاد للتلاشي واسمح لمحلول التركيب بالتصلب لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة قبل مشاهدته تحت المجهر.

قبل التمايز العصبي الخارجي ، أظهرت مستعمرات hPSC مورفولوجيا أحادية الطبقة مسطحة ضيقة دون خلايا متمايزة تلوث المستعمرات. أكد تعبير NANOG أيضا تعدد قدرات مستعمرات hPSC. بعد تمايز مستعمرات hPSC إلى مستعمرات عصبية ، لوحظ مورفولوجيا أطول على شكل عمود ، وكانت سلبية ل NANOG.

بعد العلاج المنفصل والتعرض ل FGF2 في N2 ، تكاثرت الخلايا الجذعية العصبية في هذه الكرويات وشكلت عددا كبيرا من الورود العصبية التي أظهرت القطبية القمية القاعدية للكروية عن طريق التعبير عن Z01 في الخلايا في المركز والحافة الخارجية للكروية. بمجرد تضمينه ، يتكاثر الكروي بسرعة ويبدأ في التبرعم ، كما يتضح من وجود عقد الأنسجة المدمجة وتمددها إلى الخارج من الجسم الرئيسي بين أسبوع إلى ثلاثة أسابيع ، وهو ما أكده التحليل الكمي وزاد قطر الكروية بشكل كبير على مدى ثلاثة أسابيع. أكد تلطيخ التألق المناعي وجود خلايا السلف العصبية وعلامات الطبقة القشرية في المواد العضوية ذات الطبقات الواضحة ، والتي كان يمكن ملاحظتها عبر نقاط زمنية مختلفة.

كما تمت دراسة تأثير العمليات المتعلقة بالشيخوخة العصبية على الدماغ. مع مرور الوقت ، لوحظت زيادة كبيرة في وجود الشيخوخة المرتبطة بيتا غالاكتوزيداز وفي الأسبوع 13 ، تم الكشف عن وجود p21 ، مما يدل على الشيخوخة. من المهم التأكد من إزالة جميع الفراغات الزائدة وفصل المستعمرات العصبية الجلدية السليمة وإعادة زرعها بلطف لتشكيل كرويات صحية.

هذه المنصة من فرصتنا الفريدة لدراسة بيولوجيا شيخوخة الدماغ البشري ، كما أنها تسمح بإجراء بحث حول تطور الدماغ الحرج ، شريطة أن يتم استزراع هذه المواد العضوية باستخدام مفاعل حيوي.

Explore More Videos

علم الأعصاب العدد 183

Related Videos

طريقة في المختبر لتوليد عضيات الدماغ البشري

03:33

طريقة في المختبر لتوليد عضيات الدماغ البشري

Related Videos

787 Views

توليد العضيات الدماغية المستحثة متعددة القدرات المشتقة من الخلايا الجذعية

05:44

توليد العضيات الدماغية المستحثة متعددة القدرات المشتقة من الخلايا الجذعية

Related Videos

784 Views

توليد الكرات من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

03:00

توليد الكرات من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

Related Videos

565 Views

الكشف عن شيخوخة الخلايا العصبية في قسم العضوية القشرية

02:04

الكشف عن شيخوخة الخلايا العصبية في قسم العضوية القشرية

Related Videos

498 Views

جيل المستمدة IPSC-Organoids الدماغ البشري لنموذج اضطرابات النمو العصبي في وقت مبكر

07:40

جيل المستمدة IPSC-Organoids الدماغ البشري لنموذج اضطرابات النمو العصبي في وقت مبكر

Related Videos

21.5K Views

جيل أورجانويدس الدماغي موحدة واستنساخه من نوع فوريبرين من الإنسان فعل الخلايا الجذعية Pluripotent

10:25

جيل أورجانويدس الدماغي موحدة واستنساخه من نوع فوريبرين من الإنسان فعل الخلايا الجذعية Pluripotent

Related Videos

22.3K Views

طريقة ثابتة ذاتية التوجيه لتوليد الأعضاء الدماغية من الخلايا الجذعية الجنينية البشرية

08:30

طريقة ثابتة ذاتية التوجيه لتوليد الأعضاء الدماغية من الخلايا الجذعية الجنينية البشرية

Related Videos

9.4K Views

جيل من الأعضاء الدماغ البشري لنمذجة مرض الميتوكوندريا

08:09

جيل من الأعضاء الدماغ البشري لنمذجة مرض الميتوكوندريا

Related Videos

6.8K Views

تصنيع قوي للأنسجة من أجل زراعة طويلة الأمد لعضويات الدماغ المشتقة من iPSC لأبحاث الشيخوخة

08:20

تصنيع قوي للأنسجة من أجل زراعة طويلة الأمد لعضويات الدماغ المشتقة من iPSC لأبحاث الشيخوخة

Related Videos

4.3K Views

الحفظ بالتبريد من كتل الأنسجة القشرية للجيل الثقافات متعلق بالخلايا العصبية التخصيب

09:13

الحفظ بالتبريد من كتل الأنسجة القشرية للجيل الثقافات متعلق بالخلايا العصبية التخصيب

Related Videos

14.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code