-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
عد وحدة تشكيل مستعمرة سريعة بتنسيق لوحة 96 بئرا مطبقة على ميكروبيوم ذبابة الفاكهة
عد وحدة تشكيل مستعمرة سريعة بتنسيق لوحة 96 بئرا مطبقة على ميكروبيوم ذبابة الفاكهة
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Fast Colony Forming Unit Counting in 96-Well Plate Format Applied to the Drosophila Microbiome

عد وحدة تشكيل مستعمرة سريعة بتنسيق لوحة 96 بئرا مطبقة على ميكروبيوم ذبابة الفاكهة

Full Text
8,867 Views
12:55 min
January 13, 2023

DOI: 10.3791/64298-v

Ren Dodge1, William B. Ludington1,2

1Department of Embryology,Carnegie Institution for Science, 2Department of Biology,Johns Hopkins University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study introduces a rapid and automated method for quantifying microbial abundance using a 96-well plate format, significantly improving the speed of colony forming unit (CFU) counting. The technique is applied to examine the gut microbiome of Drosophila, providing important insights into the methodology used for analyzing small animal models.

Key Study Components

Research Area

  • Microbial abundance quantification
  • Gnotobiotic studies in small animal models

Background

  • Traditional CFU counting methods are time-consuming and require numerous agar plates.
  • This method allows for a more efficient workflow, particularly relevant in microbiology.

Methods Used

  • Automated image analysis software for counting CFUs
  • Whole fly homogenate samples from Drosophila
  • DIY-fabricated instrumentation for image acquisition

Main Results

  • The protocol offers a hundred-fold time advantage over traditional methods for plating and counting.
  • Demonstrated efficient handling of gnotobiotic flies and automated counting thresholds.

Conclusions

  • The study validates an effective protocol for microbiome analysis in small organisms.
  • This method enhances potential applications in various microbiological experiments.

Frequently Asked Questions

What is the primary advantage of this methodology?
The primary advantage is its efficiency, offering a hundred-fold improvement in time compared to traditional CFU counting methods.
Which organism was used in this study?
Drosophila (fruit flies) were used as the model organism to analyze the gut microbiome.
What techniques were utilized in this study?
The study utilized automated imaging software and DIY instrumentation to measure microbial abundance accurately.
Why is automated counting important?
Automated counting reduces human error and significantly speeds up the process of quantifying CFUs.
What stage of the research process does this protocol apply to?
This protocol is applicable during the quantification phase of microbial analysis in experiments.
Can this method be adapted for other organisms?
Yes, the methodology can be adapted to other microbiological studies where efficient CFU counting is beneficial.

تحدد هذه الطريقة الوفرة الميكروبية باستخدام تنسيق لوحة 96 بئرا لوحدات تشكيل مستعمرة الألواح (CFUs) ويتم تطبيقها على ميكروبيوم ذبابة الفاكهة في عينات متجانسة كاملة من الذباب. يتم حساب CFUs باستخدام برنامج تحليل الصور الآلي المقدم هنا.

يعد عد وحدات تشكيل المستعمرات ، أو CFUs ، تقنية قياسية في علم الأحياء الدقيقة ، لكنها بطيئة وتتطلب الكثير من ألواح الآجار. توفر تقنيتنا ميزة مائة ضعف على طرق عد CFU التقليدية في كل من لوحات أجار الوقت. لقد طبقنا المنهجية لقياس ميكروبيوم الأمعاء لنماذج الحيوانات الصغيرة ، وخاصة ذباب الفاكهة.

هذا البروتوكول هو طريقة بسيطة وسريعة وآلية لتحديد CFUs في ذباب gnotobiotics. يوفر هذا البروتوكول سير عمل مع أجهزة مصنعة DIY لتصوير وحدات CFU والبرامج المخصصة لأتمتة عدها. يمكن استخدام هذا البروتوكول في أي تجربة في علم الأحياء الدقيقة حيث يمكن أن تكون الطرق الأكثر كفاءة للطلاء وعد CFU مفيدة.

يتطلب التعامل مع الذباب بكفاءة واكتشاف اللوحات براعة يدوية ، لذلك يجب ممارسة ذلك. يتطلب استخدام برنامج العد الآلي حكما حول العتبة ، لذلك يجب مقارنة الإيصالات بالعد اليدوي لتحديد أفضل المعلمات لتجربتك سيكون Ren Dodge ، الباحث من مختبري الذي طور هذه التقنية ، يوضح الإجراء ذلك. للبدء ، صب حبات زجاجية 0.5 ميكرون على صينية قياس الخرزة.

انشر الخرز على الدرج بحيث تمتلئ جميع الآبار وتسويتها. ثم قم بإزالة الخرز الزائد في أنبوب مخروطي. الآن ، ضع لوحة PCR شبه ملتفة رأسا على عقب على صينية القياس وقم بمحاذاتها مع الآبار عن طريق تركيبها في المسافة البادئة على درج القياس.

ثم اقلبها بسرعة لنقل الخرز. قم بإزالة الخرز الزائد من سطح لوحة PCR. تأكد من أن جميع الآبار تحتوي على الخرز.

إذا لزم الأمر ، استخدم مغرفة وزن لإضافة حبات إلى بئر واحدة. ثم قم بتغطية اللوحة بورق الألمنيوم والأوتوكلاف. قبل استخدام اللوحة ، أضف 100 ميكرولتر من PBS إلى كل بئر مباشرة قبل إضافة الذباب باستخدام آلة السحب ذات 96 قناة.

لتعقيم الذباب المخدر على السطح ، انقل الذباب من القارورة إلى أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 1.5 ملليلتر باستخدام قمع صغير. رش على الفور ملليلتر واحد من 70٪ من الإيثانول في الأنبوب ، وأغلق الأنبوب ، واخلطه بالانقلاب لمدة 10 ثوان. بعد ذلك ، قم بشفط الإيثانول باستخدام ماصة P-1000 مع تجنب استنشاق أي ذباب.

بعد غسل PBS النهائي ، أغلق الأنبوب واضغط عليه بقوة على المقعد عدة مرات مع وضع جانب الغطاء لأسفل حتى يدخل الذباب في الغطاء. بعد فتح الأنبوب ، قم بتوزيع الذباب في الآبار باستخدام ملقط وضع ذبابة واحدة في كل بئر. حافظ على تخدير الذباب عن طريق إبقاء الطبق على الجليد أثناء التحميل.

قم بإزالة الخرز الشارد بالقرب من الآبار ، حيث يمكن أن يؤدي ذلك إلى كسر ختم الرقاقة والتسبب في التسرب. تأكد من أن الجانب الباهت من رقائق الختم موجه لأسفل على اللوحة وأن الجانب اللامع مواجه لأعلى نحو مانع التسرب الحراري. اضغط على مانع التسرب الحراري بإحكام لمدة خمس ثوان وقم بتلميعه باستخدام قضيب اليد لتأمين الرقاقة.

تجانس الذباب لمدة خمس دقائق. تأكد من أن الذباب متجانس تماما وأن المحلول يتحول إلى لون. لإزالة السائل من رقائق الختم ، قم بتدوير لوحة الخرز لأسفل لمدة 30 ثانية في لوحة دوارة صغيرة عند 350 جم ، وقم بإزالة الرقاقة أثناء الإمساك باللوحة لتجنب تناثر قطرات من تجانس الذباب.

ضع ثلاث لوحات نمو مستطيلة MRS agar مع فتح أغطيتها في خزانة السلامة الحيوية لتجف لمدة 10 دقائق على الأقل. قم بإعداد لوحين للتخفيف عن طريق إضافة 100 ميكرولتر من PBS إلى كل بئر من لوحة معقمة ذات 96 بئرا باستخدام ماصة 96 قناة. قم بتحميل رف من أطراف P-20 على آلة السحب ذات 96 قناة.

قم بعمل تخفيف بنسبة 1:10 عن طريق استنشاق 11.1 ميكرولتر من التجانس من لوحة العينة. الآن ، قم بتوزيعه في أول لوحة تخفيف تحتوي على 100 ميكرولتر من PBS المعقم لكل بئر. احتفظ بلوحة التخفيف على شاكر اللوحة لمدة 10 ثوان عند 600 دورة في الدقيقة.

امزج مرة أخرى عن طريق السحب لأعلى ولأسفل 10 مرات على الأقل. انقل 11.1 ميكرولتر من لوحة التخفيف الأولى إلى لوحة التخفيف الثانية وكرر خطوات الخلط لأي تخفيفات أخرى. لاكتشاف الألواح ، قم بتحميل ميكرولتر من كل بئر في آلة السحب ذات 96 قناة.

اخفض رأس آلة التقطيع ببطء على الطبق ، وتجنب الطعن في الآجار ، وتأكد من توزيع جميع البقع. بعد ذلك ، تأكد من أن البقع السائلة تنقع بسرعة في الآجار ولا تعمل معا. كرر عملية الطلاء لألواح التخفيف المتبقية كما هو موضح في المخطوطة.

بمجرد امتصاص السائل بالكامل في الأجار ، اقلب الألواح واحتضانها حتى تصل المستعمرات إلى الحجم الأمثل. تنظيم اللوحات بشكل منطقي والاحتفاظ بها في ترتيب معين أثناء التصوير. قم بتوجيهها بحيث يكون A1 في الزاوية اليسرى العليا لجميع اللوحات.

بعد إزالة غطاء اللوحة ، ضع اللوحة على المسرح مع توجيه A1 في الزاوية الصحيحة. صورة اللوحات. انقل الصور إلى جهاز كمبيوتر وأعد تسميتها ، بما في ذلك اسم التجربة ونوع الوسائط وعامل التخفيف والتفاصيل الأخرى ذات الصلة.

تنظيم الصور المراد معالجتها للقياس الكمي في مجلد. تصبح أسماء الملفات التي تميز اللوحات عناوين أعمدة لكل مجموعة من الأعداد في جدول بيانات المخرجات. قم بإنشاء مجلدات فرعية باسم اقتصاص والإيصالات في المجلد.

ستتلقى هذه المجلدات ملفات الإخراج. الآن قم بتشغيل المكون الإضافي Croptacular من ImageJ وانقر فوق "موافق" لبدء الاقتصاص. سيظهر مربع حوار لاختيار المجلد المصدر.

انقر فوق موافق. حدد المجلد المصدر وانقر فوق فتح. ثم انقر فوق "موافق" في مربع الحوار لاختيار الدليل الوجهة. حدد المجلد الوجهة واضغط على فتح.

إذا كانت الصورة مستقيمة بالفعل ، فما عليك سوى الضغط على Space. خلاف ذلك ، قم بتصويب الصورة عن طريق رسم خط على طول حافة يجب أن تصبح أفقية. أعد رسم الخط عدة مرات حسب الحاجة إذا لم تظهر الصورة بشكل مستقيم.

بعد ذلك ، ارسم مربعا حدوديا لمنطقة العد واضبط حجمه ونسبته حتى تصبح جميع البقع داخل خلاياها. اسحب المؤشر خارج مربع الحدود لتحديث الشبكة. عندما تبدو الشبكة جيدة، اضغط على Space.

نظرا لأن المكون الإضافي يفترض محاذاة جميع الصور بشكل متطابق ، فتأكد من أن الصورة التالية تدور تلقائيا إلى نفس زاوية الصورة الأولى. إذا كان هذا دقيقا، فاضغط على مفتاح المسافة للمتابعة. خلاف ذلك ، قم بتصويب الصورة كما كان من قبل.

تتذكر الشبكة أيضا نفس موضع الصورة السابقة. اضبط إذا لزم الأمر واضغط على المسافة. قم بتشغيل Count-On-It وحدد Gridiron.

قم بتعيين كثافة مستعمرة العتبة بناء على قيمة كثافة البكسل العلوية والسفلية. اجعل العتبة صارمة قدر الإمكان ، مع الاستمرار في اختيار جميع المستعمرات. انقر فوق موافق في مربع الحوار الإجراء المطلوب عندما يكون الحد مرضيا، ثم انقر فوق موافق للمتابعة.

في الصورة الأولى ، يتم إعطاء الخيار للمتابعة أو العودة إلى قائمة الإعداد. لمتابعة عملية الدفعات، انقر فوق موافق. ثم حدد مجلدا للاحتفاظ بجدول الإيصالات والنتائج. استخدم مجلد الإيصالات الذي تم إنشاؤه مسبقا.

بعد الصورة الأولى ، سيتم تعيين الصور التالية افتراضيا على نفس عتبة الإعدادات السابقة. انقر فوق موافق لاستخدام هذه الإعدادات أو ضبط الإعدادات. راجع إيصالات العد التي ينتجها البرنامج وقم بتصحيح أي أخطاء عد يدويا.

المكون الإضافي ImageJ دقيق إحصائيا ، ولكن تحدث أخطاء. إثبات الإيصالات لفحص القيم المتطرفة وتحديد العد الخاطئ. يحفظ البرنامج بيانات CFU كملف CSV في نفس المجلد مثل الإيصالات.

بالنسبة للذباب المستعمر ب Lactobacillus plantarum ، كان هناك انخفاض كبير في البكتيريا للذباب التي إما تم نقلها يوميا إلى طعام معقم ، أو نقلها يوميا ، أو الاحتفاظ بها على طعام معقم قبل أربع ساعات من التحليل ، أو نقلها يوميا والاحتفاظ بها على أجار معقم قبل أربع ساعات من التحليل مقارنة بالذباب الذي لم يتم نقله أبدا إلى طعام معقم بعد التلقيح. لوحظت نتائج مماثلة في الذباب الذي يتغذى على Acetobacter indonesiensis ، حيث أظهر الذباب المنقول ، وبعد النقل ، والذباب الذي تم تطهيره انخفاضا كبيرا في CFUs ، لكن الغسيل لم يكن له تأثير قابل للقياس ، مما يشير إلى أن الانخفاض في CFUs كان بسبب إزالة البكتيريا من الأمعاء بدلا من بشرة. لم يظهر عدد CFU في البقع التي تحتوي على 2 إلى 25 مستعمرة لكل بقعة أي فرق مقارنة بالطريقة التقليدية.

أظهرت البقع التي يبلغ متوسطها 35 مستعمرة وحدات CFU أقل من لوحات انتشار التحكم. قد يكون هذا الانخفاض بسبب تداخل المستعمرات في البقع الكثيفة. في صور اللوحة ، كانت كثافة المستعمرة أعلى بنسبة 300٪ من الخلفية.

أظهرت المستعمرات الموجبة Lactobacillus plantarum mCherry كثافة حمراء أعلى بنسبة 1،000٪ من المستعمرات السلبية mCherry. أظهرت مستعمرات Acetobacter indonesiensis الإيجابية GFP كثافة خضراء أعلى بنسبة 200٪ من المستعمرات السلبية ل GFP. يقوم المكون الإضافي Count-On-It ل ImageJ بأتمتة عد CFU من صور اللوحة.

يتم الكشف عن المستعمرات بدقة ، مع أعداد مماثلة للعد اليدوي. يمكن استخدام إيصالات العد لتحديد العد الخاطئ. يسمح تغيير عتبات الحجم والأطوال الموجية الفلورية بحساب أشكال مستعمرة مختلفة بشكل منفصل.

من الضروري التأكد من أن اللوحة محكمة الغلق قبل خرزها. من المهم أيضا تصميم عناصر تحكم إيجابية لمعايرة قياساتك. نستخدم هذه التقنية أيضا لدراسة مجموعات البكتيريا في المختبر في 96 لوحة بئر ، مما يتيح لنا دراسة المجتمعات المختلطة من البكتيريا.

تسمح هذه التقنية بنهج فحص عالية الإنتاجية لقياس استعمار الأمعاء وكذلك التباين البيولوجي في الاستعمار.

Explore More Videos

علم الأحياء العدد 191

Related Videos

عد وحدات تشكيل المستعمرة (CFUs): تحديد البكتيريا من أجسام الذباب

03:55

عد وحدات تشكيل المستعمرة (CFUs): تحديد البكتيريا من أجسام الذباب

Related Videos

6.2K Views

القياس الكمي للوحدات المكونة للمستعمرة للبكتيريا المرتبطة بالقناة الهضمية في ذبابة الفاكهة

06:37

القياس الكمي للوحدات المكونة للمستعمرة للبكتيريا المرتبطة بالقناة الهضمية في ذبابة الفاكهة

Related Videos

358 Views

قياس الحمل البكتيري للإشريكية القولونية في ذبابة الفاكهة السوداء بعد عدوى الإشريكية القولونية

03:40

قياس الحمل البكتيري للإشريكية القولونية في ذبابة الفاكهة السوداء بعد عدوى الإشريكية القولونية

Related Videos

1K Views

العدوى البكتيرية النظامية والمناعة الظواهر الدفاع في الدروسوفيلاميلانوجاستر

10:12

العدوى البكتيرية النظامية والمناعة الظواهر الدفاع في الدروسوفيلاميلانوجاستر

Related Videos

25.4K Views

تربية ذبابة الفاكهة ذبابة الفاكهة تحت ممحوضة ومعروف المعايشات شروط

09:34

تربية ذبابة الفاكهة ذبابة الفاكهة تحت ممحوضة ومعروف المعايشات شروط

Related Videos

22.6K Views

تجميع وتتبع التنمية المجتمعية الميكروبية داخل منصة ميكرويل صفيف

09:24

تجميع وتتبع التنمية المجتمعية الميكروبية داخل منصة ميكرويل صفيف

Related Videos

9.7K Views

تصوير حي عالي الإنتاجية للمستعمرات الدقيقة لقياس التغايرية في النمو والتعبير الجيني

12:52

تصوير حي عالي الإنتاجية للمستعمرات الدقيقة لقياس التغايرية في النمو والتعبير الجيني

Related Videos

5.5K Views

A عالية الإنتاجية ميكروبليت المغذية المقايسة للقياس الكمي للاستهلاك في Drosophila

08:55

A عالية الإنتاجية ميكروبليت المغذية المقايسة للقياس الكمي للاستهلاك في Drosophila

Related Videos

3.8K Views

استخدام بيانات الدودة المفردة لقياس عدم التجانس في التفاعلات البكتيرية Caenorhabditis elegans

09:54

استخدام بيانات الدودة المفردة لقياس عدم التجانس في التفاعلات البكتيرية Caenorhabditis elegans

Related Videos

3.7K Views

فحص وحدة تشكيل المستعمرات الدقيقة لتقييم فعالية اللقاحات ضد السل

06:26

فحص وحدة تشكيل المستعمرات الدقيقة لتقييم فعالية اللقاحات ضد السل

Related Videos

3.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code