-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
الاستئصال بالليزر والفحص المجهري داخل الجسم لدراسة إعادة تشكيل الأمعاء
الاستئصال بالليزر والفحص المجهري داخل الجسم لدراسة إعادة تشكيل الأمعاء
JoVE Journal
Biology
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Laser Ablation and Intravital Microscopy to Study Intestinal Remodeling

الاستئصال بالليزر والفحص المجهري داخل الجسم لدراسة إعادة تشكيل الأمعاء

Full Text
2,073 Views
09:42 min
June 9, 2023

DOI: 10.3791/64756-v

Dimitrios Laskaris*1,2, Maria Azkanaz*1,2, Mijke A. de Vreij-Kruidenier3, Doreen van Rijswoud-Ram3, Hendrik A. Messal1,2, Jacco van Rheenen1,2

1Department of Molecular Pathology,The Netherlands Cancer Institute, 2Oncode Institute, 3Animal Laboratory Facility,The Netherlands Cancer Institute

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a method for visualizing the intestinal recovery process following laser-induced wounding in mice. By utilizing intravital microscopy, researchers induce localized damage at the crypt level and monitor the regenerative response over weeks, capturing real-time dynamics of tissue recovery.

Key Study Components

Research Area

  • Intestinal regeneration
  • In vivo imaging techniques
  • Tissue repair mechanisms

Background

  • Challenges in studying intestinal regeneration in vivo
  • Need for longitudinal imaging protocols
  • Existing methods lack spatial and temporal control

Methods Used

  • Intravital microscopy for tracking intestinal recovery
  • Mouse model with localized laser ablation
  • Repeated imaging over extended periods

Main Results

  • Successful induction of intestinal damage at the crypt level
  • Long-term tracking of crypt dynamics during recovery
  • Detailed observation of tissue regeneration processes

Conclusions

  • This study demonstrates a novel imaging approach to elucidate intestinal regeneration
  • Provides insights applicable to broader fields in biology and tissue engineering

Frequently Asked Questions

What is intravital microscopy?
Intravital microscopy is a live imaging technique that allows for the observation of biological processes in intact organisms.
Why is studying intestinal regeneration important?
Understanding intestinal regeneration can provide insights into the mechanisms of tissue repair and inform therapeutic strategies for intestinal diseases.
What model organism was used in this study?
The study utilized a mouse model to investigate intestinal recovery processes.
How does laser ablation help in this research?
Laser ablation allows for precise induction of tissue damage, enabling detailed study of localized regenerative responses.
What are crypts in the intestine?
Crypts are glandular structures in the intestinal epithelium that play a crucial role in digestion and regeneration.
What is the significance of monitoring recovery over weeks?
Long-term monitoring provides a comprehensive understanding of the dynamics and timeline of intestinal tissue recovery.
How does this research contribute to biology?
It offers a new framework for studying tissue repair mechanisms and understanding regeneration in vivo.

هنا ، نقدم طريقة للحصول على صور للأمعاء عند الجرح الناجم عن الليزر. من خلال تعريض أمعاء الفأر لليزر متعدد الفوتونات ، يتم إحداث فقدان سرداب (سرداب) واحد أو عدة مرات محليا. من خلال تصوير المنطقة المتضررة بشكل متكرر على مدار أشهر ، يتم التقاط ديناميكيات الوقت الفعلي للتعافي المعوي.

لا غنى عن نماذج الإصابة لدراسة التجدد في الجسم الحي ، ومع ذلك ، ثبت أن التحقيق في التجدد في الأمعاء يمثل تحديا تقنيا. أدى الافتقار إلى بروتوكولات التصوير الطولي إلى منع رؤية أعمق لديناميكيات مقياس الخلايا والأنسجة التي تنظم تجديد الأمعاء. في هذا البروتوكول ، نصف طريقة الفحص المجهري داخل الجسم التي تحفز محليا تلف الأنسجة على نطاق سرداب واحد ، وتتبع الاستجابة التجديدية لظهارة الأمعاء في الفأر الحي لتلف الاجتثاث بالليزر القائم على الفوتون من سرداب واحد أو حقول معوية أكبر بطريقة يتم التحكم فيها في الزمان والمكان.

يتيح التصوير اللاحق والطويل الأجل والمتكرر داخل الجسم تتبع المنطقة المتضررة بمرور الوقت ، ويسمح بمراقبة ديناميكيات القبو أثناء استعادة الأنسجة على مدى عدة أسابيع. حث الفئران عن طريق حقن عقار تاموكسيفين المذاب في زيت عباد الشمس في أربعة إلى ستة أسابيع قبل الجراحة. تطبيق تسكين ، حقن 200 ميكرولتر من البوبرينورفين تحت الجلد قبل 30 دقيقة من الجراحة.

تطبيق الكاربروفين في مياه الشرب قبل 24 ساعة من الجراحة. إدخال أدوات جراحية معقمة معقمة في خزانة المخاطر البيولوجية. قم بتشغيل وسادة التدفئة ، واضبط درجة الحرارة على 37 درجة مئوية.

قم بتشغيل غرفة التحكم في درجة حرارة المجهر قبل أربع ساعات على الأقل من التصوير. حافظ على درجة الحرارة داخل غرفة المناخ مستقرة عند 37 درجة مئوية. قم بتشغيل مجهر الفوتون والماسح الضوئي والليزر.

قم بتشغيل برنامج التصوير. اضبط الطول الموجي لليزر على 960 نانومتر وافتح الغالق. تخدير الماوس باستخدام اثنين إلى 3٪ إيزوفلوران ، ووضعه على وسادة تدفئة مغطاة بقطعة قماش معقمة.

تحقق من عمق التخدير من خلال تقييم تواتر وجودة التنفس نفسا واحدا في الثانية ، وعن طريق التحقق من رد فعل الماوس. تغطية عيون الماوس مع مرهم العين. حقن 200 ميكرولتر من المياه المالحة المعقمة قبل التسخين تحت الجلد.

حلق البطن وإزالة الشعر. تغيير قطعة القماش المعقمة في منطقة الجراحة. أدخل مسبار المستقيم لمراقبة درجة حرارة الماوس.

يجب أن تكون درجة الحرارة حوالي 37 درجة مئوية. ارتد زوجا جديدا من القفازات المعقمة. نظف المنطقة الجراحية بطريقة دائرية باستخدام مقشرات متناوبة من محلول مطهر متبوعة ب 80٪ إيثانول ثلاث مرات.

تغطية الماوس مع ستارة جراحية معقمة. تحقق من رد فعل الماوس. قم بعمل شق عمودي في خط الوسط بطول 10 ملم عبر الجلد باستخدام مشرط معقم.

شق خط ألبا باستخدام المقص لفصل عضلات البطن المستقيمة وفتح البطن. ابحث عن الأعور للفأر باستخدام قطعة قطن معقمة مبللة بمحلول ملحي تم تسخينه مسبقا لاستخدامه كنقطة مرجعية. اصنع قطعا صغيرا في قطعة من الشاش ، بللها في محلول ملحي معقم مسخن مسبقا ، وضعه فوق الشق.

أخرج الأمعاء بمسحات قطنية معقمة مبللة بمحلول ملحي معقم تم تسخينه مسبقا. حافظ على رطوبة الأمعاء عن طريق إضافة محلول ملحي معقم تم تسخينه مسبقا. انقل الماوس إلى صندوق تصوير معقم مسخن مسبقا.

ضع الأمعاء على الزجاج المعقم. ضع رأس الماوس داخل أنبوب الاستنشاق في صندوق التصوير. إذا لزم الأمر ، قم بتأمين الماوس بفيلم وشريط مرن معقمين.

ضع صندوق التصوير الذي يحتوي على الماوس في غرفة المجهر. راقب الماوس أثناء التصوير عن طريق التحقق من تواتر وعمق التنفس ودرجة الحرارة عبر مسبار المستقيم كل 15 دقيقة. يجب أن تبقى إيزوفلوران بين واحد إلى 2٪ابحث عن منطقة في الأمعاء باستخدام عناوين IP للمجهر.

احصل على رؤية ميدانية واسعة للمنطقة محل الاهتمام باستخدام الكاميرا الداخلية للمجهر. تخيل منطقة الاهتمام باستخدام ليزر 960 نانومتر للمجهر متعدد الفوتونات. ضبط قوة الليزر والطول الموجي وفقا للأشكال الفلورية المستخدمة في التجربة.

في هذا المثال ، الخبايا المعبر عنها الغشاء هي بروتين الفلورسنت الأحمر ، ويتم تمييزها عشوائيا ببروتين الفلورسنت الأخضر عند الحث بجرعة نهائية منخفضة من عقار تاموكسيفين. احصل على مكدس Z من 10 إلى 20 خطوة من ثلاثة ميكرون من المنطقة محل الاهتمام. اختر موضع واحد أو مواضع متعددة من صورة التجانب سابقا.

استخدم وظيفة معايرة نقطة الخرق في برنامج التصوير عند التكبير / التصغير 32 ودقة 124 × 124 بكسل مع سرعة مسح 400 هرتز باستخدام خاصية المسح ثنائي الاتجاه لمدة ثلاث إلى 10 ثوان ، اعتمادا على حجم الضرر المستهدف. يمكن التعرف على بدء الضرر في منطقة القبو من خلال زيادة التألق الذاتي في كل من القناة الخضراء والحمراء. بعد الاجتثاث ، احصل على مداخن Z للمناطق المتضررة لتأكيد الموقع ومدى الضرر.

كرر الخطوتين السابقتين لمناطق متعددة في نفس الماوس. ضع الفأر وهو لا يزال تحت التخدير على منطقة خياطة معقمة وقم بتغطيته بستارة معقمة. أدخل الأمعاء المكشوفة مرة أخرى في البطن باستخدام مسحات قطنية معقمة مبللة بمحلول ملحي معقم مسخن مسبقا.

خياطة خط ألبا عن طريق إجراء خياطة مستمرة بسيطة باستخدام خياطة قابلة للامتصاص. أغلق أطراف الخيط بعقدة جراحية. كرر نفس الخطوة مع طبقة الجلد.

قم بإيقاف تشغيل محطة isoflurane ، وقم بتنظيف وتعقيم صندوق التصوير والبطانة. دع الفأر يتعافى من الجراحة أثناء وضع القفص على وسادة التدفئة لمدة ساعة واحدة. حقن 200 ميكرولتر من البوبرينورفين تحت الجلد بعد ست إلى 12 ساعة من الجراحة.

تطبيق الكاربروفين في مياه الشرب لمدة 72 ساعة بعد الجراحة. وزن الماوس ومراقبة الرفاهية كل يوم لمدة أسبوع واحد بعد الجراحة. في النقطة الزمنية الثانية بعد أسبوع واحد على الأقل من جلسة التصوير الأولى ، كرر الجراحة والتصوير داخل الجسم.

استخدم نمط الأوعية الدموية للعثور على صورة المناطق نفسها موضع الاهتمام في النقطة الزمنية الأولى. إذا لم يكن من المفترض تصوير الفأر في نقطة زمنية أخرى ، فقم بالتضحية بالفأر عن طريق إجراء خلع عنق الرحم تحت التخدير. خلاف ذلك ، استمر في إغلاق موقع الجراحة والرعاية بعد الجراحة.

تم حقن الفئران K19-Cre ERT mTmG بعقار تاموكسيفين للحث على وضع العلامات العشوائية للخلايا باستخدام GFP قبل أربعة إلى ستة أسابيع من الجراحة وجلسة التصوير الأولى. بعد تعريض أمعاء الفأر جراحيا والحصول على صور الكاميرا والفلورسنت للمنطقة محل الاهتمام ، يتم استخدام إعدادات نقطة الخرق لليزر متعدد الفوتونات لاستئصال الخبايا. يمكن التعرف على بدء الضرر من خلال زيادة التألق الذاتي في كل من القناة الخضراء والحمراء.

يتم تكرار نفس الإجراء بعد شهر واحد ، ويتم استخدام الأوعية الدموية كمعلم للعثور على نفس المنطقة. باستخدام نموذج قصاصات الورق Lgr5-eGFP ، يمكن متابعة الخبايا الموسومة بألوان مختلفة بمرور الوقت لتعيين ديناميكيات الاسترداد. في هذا المثال ، تعبر الخبايا باللون الأخضر عن Lgr5 Cre ، ويتم تمييز سرداب باللون الأرجواني بلون قصاصات الورق.

لوحظت طرق مختلفة للتجديد بعد أسبوعين من الاجتثاث بالليزر. تظل بعض المناطق دون تغيير ، بينما تظهر مناطق أخرى إعادة تشكيل في أشكال انشطار القبو ، وبالتالي فإن تقسيم سرداب واحد إلى اثنين ، أو الاندماج ، أو دمج سردبين في واحد ، أو اختفاء السرداب. الاجتثاث بالليزر جنبا إلى جنب مع طريقة الفحص المجهري داخل الجسم يحد من الضرر الذي يلحق بمنطقة محددة من الاهتمام.

يتيح لنا ذلك التحكم في موقع الضرر وكذلك مدى الضرر. يمكن تعديل شدة الضرر لاستئصال الخبايا أو الحقول المعوية بأكملها لإبلاغنا بالاستجابة التجديدية على نطاق السرداب. بالإضافة إلى التحكم المكاني ، يسمح الاجتثاث بالليزر أيضا بتحديد وقت ظهور الضرر بدقة بالإضافة إلى تصوير نفس العضو في ظل ظروف الاستتباب والتجديد في نفس الماوس ، وبالتالي تجاوز دقة نماذج الإصابة السابقة.

يمكن استخدام تطبيق الاستئصال بالليزر والتصوير المتكرر داخل الجسم كمنصة للعديد من الأسئلة البحثية والمجالات العلمية المتنوعة التي تشمل التجديد وعلم المناعة وأبحاث السرطان.

Explore More Videos

علم الأحياء العدد 196 الاستئصال بالليزر الفحص المجهري داخل الجسم الأمعاء التجديد الضرر إعادة عرض القبو

Related Videos

التشريح المجهري بالليزر: تقنية لعزل خلايا سرطان القولون والمستقيم الغازية من نموذج ثقافة النمط العضوي ثلاثي الأبعاد

03:53

التشريح المجهري بالليزر: تقنية لعزل خلايا سرطان القولون والمستقيم الغازية من نموذج ثقافة النمط العضوي ثلاثي الأبعاد

Related Videos

1.5K Views

التصور داخل الحيوية للخلايا الليمفاوية داخل الظهارة في دلتا جاما

05:47

التصور داخل الحيوية للخلايا الليمفاوية داخل الظهارة في دلتا جاما

Related Videos

570 Views

حيوي داخلي المجهري للهياكل التصوير التحت خلوية في الفئران لايف تعرب عن البروتينات الفلورية

08:23

حيوي داخلي المجهري للهياكل التصوير التحت خلوية في الفئران لايف تعرب عن البروتينات الفلورية

Related Videos

24.3K Views

التصوير في الوقت الحقيقي من خلايا الدم النخاعي في ديناميات APC مين / + الأورام المعوية التي كتبها غزل القرص متحد البؤر المجهر

05:21

التصوير في الوقت الحقيقي من خلايا الدم النخاعي في ديناميات APC مين / + الأورام المعوية التي كتبها غزل القرص متحد البؤر المجهر

Related Videos

10.1K Views

التصوير العدلات وحيدات في مساريقي الأوردة التي كتبها حيوي داخلي المجهري على الفئران مخدرة في الوقت الحقيقي

09:28

التصوير العدلات وحيدات في مساريقي الأوردة التي كتبها حيوي داخلي المجهري على الفئران مخدرة في الوقت الحقيقي

Related Videos

11K Views

الأسفار بوساطة التصوير المقطعي للكشف والتحديد الكمي لالتهاب الأمعاء مورين المتصلة بلعم

07:05

الأسفار بوساطة التصوير المقطعي للكشف والتحديد الكمي لالتهاب الأمعاء مورين المتصلة بلعم

Related Videos

8.8K Views

الأمعاء C. ايليجانس "كنموذج" ل Morphogenesis التجويف بين الخلايا و في فيفو الاستقطاب نشوء غشاء حيوي على مستوى الخلايا المفردة: وضع العلامات تلطيخ جسم والخسارة [رني] من وظيفة تحليل وتصوير

12:15

الأمعاء C. ايليجانس "كنموذج" ل Morphogenesis التجويف بين الخلايا و في فيفو الاستقطاب نشوء غشاء حيوي على مستوى الخلايا المفردة: وضع العلامات تلطيخ جسم والخسارة [رني] من وظيفة تحليل وتصوير

Related Videos

14.2K Views

التصوير داخل الظهارة من الخلايا الليمفاوية داخل الظهارة في الميورين الأمعاء الدقيقة

08:00

التصوير داخل الظهارة من الخلايا الليمفاوية داخل الظهارة في الميورين الأمعاء الدقيقة

Related Videos

8.7K Views

نهج المجهر الداخلي القائم على تقييم نفاذية المعوية وخلية الظهارية ذرف الأداء

07:32

نهج المجهر الداخلي القائم على تقييم نفاذية المعوية وخلية الظهارية ذرف الأداء

Related Videos

6.4K Views

عمليات الاستئصال العميقة والتحكم المكانية في الحجم باستخدام مجهر فوتونين في زيبرافيش غاسترولا

09:50

عمليات الاستئصال العميقة والتحكم المكانية في الحجم باستخدام مجهر فوتونين في زيبرافيش غاسترولا

Related Videos

2.3K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code