-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
إنتاج الخلايا العصبية البشرية Neurogenin 2-inducible في مفاعل حيوي معلق ثلاثي الأبعاد
إنتاج الخلايا العصبية البشرية Neurogenin 2-inducible في مفاعل حيوي معلق ثلاثي الأبعاد
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Production of Human Neurogenin 2-Inducible Neurons in a Three-Dimensional Suspension Bioreactor

إنتاج الخلايا العصبية البشرية Neurogenin 2-inducible في مفاعل حيوي معلق ثلاثي الأبعاد

Full Text
2,036 Views
07:21 min
March 17, 2023

DOI: 10.3791/65085-v

Jeanette Wihan1, Isabell Karnatz1, Isabelle Sébastien1, Ralf Kettenhofen1, Benjamin Schmid2, Christian Clausen2, Benjamin Fischer1, Rachel Steeg3, Heiko Zimmermann1,4,5,6, Julia C. Neubauer1,4

1Fraunhofer Project Center for Stem Cell Process Engineering,Fraunhofer Institute for Biomedical Engineering IBMT, 2Bioneer A/S, 3Fraunhofer UK Research Ltd, Technology and Innovation Centre, 4Fraunhofer Institute for Biomedical Engineering IBMT, 5Department of Molecular and Cellular Biotechnology,Saarland University, 6Facultad de Ciencias del Mar,Universidad Católica del Norte

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article describes a protocol for generating human induced pluripotent stem cell-derived neurons using a benchtop 3D suspension bioreactor. The method facilitates high cell yield and rapid neuronal differentiation in a physiological environment, offering potential for large-scale applications.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Stem Cell Biology
  • Cell Culture Techniques

Background

  • Human induced pluripotent stem cells can differentiate into various cell types.
  • 3D culture systems improve cell interactions and viability.
  • Large-scale applications are necessary for efficient cell production.
  • Previous methods primarily utilized 2D culture systems.

Purpose of Study

  • To develop a cost-effective protocol for rapid neuronal differentiation.
  • To enhance cell yield and maintain low batch-to-batch variability.
  • To lay the groundwork for automated large-scale bioreactor systems.

Methods Used

  • The study utilizes a benchtop 3D suspension bioreactor.
  • Human induced pluripotent stem cells are the biological model for differentiation.
  • The protocol includes critical steps for cell detachment, resuspension, and differentiation.
  • Neuronal differentiation is induced after a pre-cultivation phase, followed by media changes.
  • Cells are cryopreserved after two days of differentiation for subsequent maturation.

Main Results

  • The protocol resulted in neuronal cells that maintained viability and functionality.
  • Cell aggregates grew substantially during the initial days of differentiation.
  • Distinct neuronal markers confirmed the identity of cryopreserved cells.
  • The study found that prolonged culture beyond a certain point did not increase cell yield.

Conclusions

  • This study demonstrates a scalable approach for producing neurons from iPSCs.
  • The methods introduced may advance our understanding of neuronal development.
  • Future applications could significantly benefit from automation in bioreactor environments.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using a 3D bioreactor for neuronal differentiation?
3D bioreactors improve cell-cell and cell-matrix interactions, resulting in higher yields and more physiologically relevant cellular environments compared to 2D cultures.
How is the induction of neuronal differentiation achieved?
Neuronal differentiation is initiated by replacing the culture medium with a neural induction medium after pre-cultivation of aggregates.
What are the key steps in the protocol?
Key steps include detaching human iPSCs, resuspending aggregates, inducing differentiation, and performing media changes regularly.
What types of data are obtained from this method?
The method yields neuronal cells that can be characterized by molecular markers and viability assessments, providing insights into their maturity.
How can this protocol be scaled for larger studies?
The approach is suited for automation in bioreactors, allowing for increased throughput and efficiency in cell production for research and therapeutic applications.
What are the limitations of this study?
Prolonged cultivation past optimal time frames may not enhance yields, as aggregates can become resistant to enzymatic detachment.

توضح هذه المقالة بروتوكولا لتوليد الخلايا العصبية المشتقة من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان في مفاعل حيوي معلق 3D على الطاولة.

يتيح استخدام المفاعلات الحيوية لترجمة الخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات أو بروتوكولات زراعة IPSC من 2D إلى 3D توليد الخلايا بأعداد كبيرة للتطبيقات واسعة النطاق مثل الفحوصات عالية الإنتاجية. يعمل بروتوكول التمايز العصبي السريع هذا في بيئة 3D الفسيولوجية على تحسين تفاعلات الخلايا البادئة ويعطي إنتاجية عالية للخلايا على مدى فترة أقصر مع اختلاف منخفض من دفعة إلى = دفعة وبالتالي تقليل التكلفة والوقت. يطبق البنك الأوروبي للخلايا الجذعية المستحثة متعددة القدرات مناهج مماثلة للتوليد السريع والفعال من حيث التكلفة للخلايا المتمايزة عبر سلالات متعددة ، بما في ذلك خلايا الدماغ الأخرى وخلايا عضلة القلب.

ابدأ مرحلة ما قبل الزراعة عندما تكون الخلية الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان ، أو ثقافة iPSC البشرية ، متقاربة بنسبة 60 إلى 80٪. نضح الوسط تماما من iPSCs البشرية وشطف الخلايا برفق باستخدام 1X DPBS مرتين. أضف ملليلتر من محلول EDTA التربسين المسخن مسبقا إلى طبق بتري الذي يبلغ طوله ستة سنتيمترات واحتضان الخلايا لمدة ثلاث دقائق عند 37 درجة مئوية في حاضنة.

ثم اضغط برفق على الأطباق لتسهيل انفصال الخلايا أو احتضانها لمدة دقيقة إلى دقيقتين أطول إذا لم تنفصل الخلايا. بعد ذلك ، أعد تعليق الخلايا في كل طبق عن طريق إضافة خمسة ملليلتر من وسيط صيانة IPSC الخالي من وحدة التغذية مع مثبط ROCK. انقل معلق الخلية إلى أنبوب سعة 15 ملليلتر أو 50 ملليلتر واخلطه برفق عن طريق السحب لضمان تفرد الخلية.

حدد أعداد الخلايا في 100 ميكرولتر من تعليق الخلية باستخدام عداد خلية آلي ونقل الحجم المطلوب من تعليق الخلية إلى أنبوب سعة 50 ملليلتر. أجهزة الطرد المركزي الخلايا في 300 غرام لمدة ثلاث دقائق. بعد ذلك ، قم بشفط المادة الطافية وإعادة تعليق الخلايا في ملليلتر من وسيط صيانة IPSC الخالي من وحدة التغذية مع مثبط ROCK.

املأ كل أنبوب سعة 50 ملليلترا ب 18 ملليلترا من الوسط. ثم قم بتوزيع 20 ملليلتر من تعليق الخلية في كل أنبوب مفاعل حيوي. ضع الأنابيب في نظام المفاعل الحيوي واضبط معلمات الزراعة لمدة غير محدودة.

ابدأ برنامج ما قبل الزراعة عبر شاشة المفاعل الحيوي. لتغيير الوسائط في اليوم التالي ، اترك الركام يستقر في أنابيب المفاعل الحيوي لمدة خمس دقائق تقريبا قبل استنشاق المادة الطافية بعناية. أضف 15 ملليلترا من وسط صيانة IPSC الطازج الخالي من التغذية بدون مثبط ROCK لكل أنبوب واستمر في الزراعة في المفاعل الحيوي الموضوعة على الطاولة لمدة 24 ساعة.

لبدء التمايز العصبي ، دع الركام يستقر في أنابيب المفاعل الحيوي ويستنشق بعناية المادة الطافية من الخلايا ، تاركا حوالي خمسة ملليلتر من المادة الطافية في الأنبوب. ثم أضف 35 ملليلتر من وسط الحث العصبي الذي يتكون من وسط عصبي قاعدي واثنين ميكروغرام لكل ملليلتر من الدوكسيسيكلين. ضع الأنابيب مرة أخرى في المفاعل الحيوي الموجود على مقاعد البدلاء واستمر في الزراعة.

قم بإجراء تغييرات الوسائط كل يوم لمدة يومين ، كما هو موضح سابقا. بعد استنشاق المادة الطافية كما هو موضح سابقا ، انقل الركام إلى أنبوب معقم سعة 15 ملليلتر أو 50 ملليلتر وشطف الركام برفق مرتين باستخدام DPBS. استنشاق بعناية طاف قدر الإمكان دون إزعاج الركام.

ثم أضف 2 إلى 5 ملليلتر من إنزيم تفكك الخلايا المسخن مسبقا إلى الحبيبات ، اعتمادا على حجم الحبيبات ، واحتضان الخلايا لمدة 10 دقائق تقريبا عند 37 درجة مئوية في حمام مائي. أعد تعليق الركام المترسب برفق كل دقيقتين حتى ينفصل الركام. أضف وسطا عصبيا قاعديا مدفئا مسبقا ، ثلاثة أضعاف حجم إنزيم تفكك الخلايا المضاف سابقا ، وأعد تعليق الخلايا بعناية لضمان تفرد الخلية.

حدد أعداد الخلايا وانقل الحجم المناظر من معلق الخلية للحفظ بالتبريد إلى أنبوب سعة 15 ملليلترا أو 50 ملليلتر. أجهزة الطرد المركزي إلى الخلايا في 300 غرام لمدة ثلاث دقائق. نضح المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية برفق في الحجم المقابل لوسط التجميد الذي يحتوي على 10٪ ثنائي ميثيل سلفوكسيد.

قسمة تعليق الخلية في قوارير مناسبة للحفظ بالتبريد. انقل القوارير على الفور إلى حاوية تجميد بطيئة التبريد مسبقا مملوءة ب 2-بروبانول وضع الحاوية عند 80 درجة مئوية تحت الصفر طوال الليل. ضع القوارير عند 150 درجة مئوية تحت الصفر في اليوم التالي للتخزين طويل الأجل.

بعد فصل الثقافات الملتصقة ب iPSCs البشرية ، وتفريغها ، ونقلها إلى التعليق ، تشكلت الركام في غضون 24 ساعة واستمرت في النمو. بعد يومين من تحريض الجينات المحورة ، يمكن حفظ الخلايا العصبية المبكرة بالتبريد للنضج اللاحق. لوحظ الانتشار المستمر ل iPSCs البشرية خلال الأيام الأولى في التعليق ، وبلغ عدد زراعة الخلايا ذروته بعد يومين من التحريض.

ومع ذلك ، فإن الزراعة المطولة لأكثر من أربعة أيام في التعليق لم تحسن إنتاج الخلايا ، حيث أصبحت الركام مقاومة بشكل متزايد للتفرد الأنزيمي. علاوة على ذلك ، مقارنة باليوم صفر ، زاد القطر الإجمالي بنسبة 50٪ في اليوم الثاني وتضاعف تقريبا في اليوم الخامس. على الرغم من أن زيادة القطر تحد من إمدادات المغذيات إلى الركام ، إلا أن صلاحية الخلايا لم تتأثر في اليوم الثاني أو الخامس من التمايز.

أكد ملف تعريف التعبير الجيني الزمني بالإضافة إلى التلوين الكيميائي المناعي للعلامات العصبية بيتا ثلاثة توبولين والبروتين المرتبط بالأنابيب الدقيقة ، أو MAP2 ، هوية الخلايا العصبية للخلايا المحفوظة بالتبريد في اليوم الثاني. بالإضافة إلى ذلك ، تم إثراء الثقافات العصبية في نسخ بروتين تاو المرتبط بالأنابيب الدقيقة ، أو MAPT ، وأظهرت انخفاضا مصاحبا في التعبير عن عامل النسخ المنظم متعدد القدرات POU5F1 تم تشكيل شبكة عصبية كثيفة خلال الأسبوع الأول بعد ذوبان الجليد ، مما يشير أيضا إلى زيادة نضج الثقافات العصبية. يضع هذا البروتوكول الأساس للترجمة إلى مفاعلات حيوية واسعة النطاق ومؤتمتة بالكامل ، والتي تظهر زيادة كبيرة أخرى في قدرة إنتاج الخلايا للتطبيقات المستقبلية واسعة النطاق.

بمجرد إثبات ذلك باستخدام neurogenin 2 ، تم تطبيق استخدام عوامل النسخ المحددة الخطية لتسريع التمايز على العديد من أنواع الخلايا والأمراض المختلفة لتسهيل نمذجة iPSC.

Explore More Videos

هذا الشهر في JoVE العدد 193

Related Videos

كفاءة اشتقاق أسلاف الإنسان متعلق بالخلايا العصبية والخلايا العصبية من افرة القوة الخلايا الجذعية الجنينية البشرية التعريفي مع جزيء صغير

10:47

كفاءة اشتقاق أسلاف الإنسان متعلق بالخلايا العصبية والخلايا العصبية من افرة القوة الخلايا الجذعية الجنينية البشرية التعريفي مع جزيء صغير

Related Videos

15.9K Views

زراعة خلايا العصبية السلف في هيدروجيل 3 الابعاد الذاتي تجميع الببتيد

11:01

زراعة خلايا العصبية السلف في هيدروجيل 3 الابعاد الذاتي تجميع الببتيد

Related Videos

17K Views

بسرعة وكفاءة توليد الخلايا العصبية من الخلايا الجذعية المحفزة الإنسان في تنسيق اللوحة Multititre

07:27

بسرعة وكفاءة توليد الخلايا العصبية من الخلايا الجذعية المحفزة الإنسان في تنسيق اللوحة Multititre

Related Videos

44.1K Views

توليد العضيات العصبية الدوبامينية من الخلايا الجذعية الجنينية البشرية

04:55

توليد العضيات العصبية الدوبامينية من الخلايا الجذعية الجنينية البشرية

Related Videos

664 Views

الكمي ثلاثي الأبعاد من شجيري العمود الفقري من الخلايا العصبية الهرمية المستمدة من صنع الإنسان المحفزة الخلايا الجذعية

10:18

الكمي ثلاثي الأبعاد من شجيري العمود الفقري من الخلايا العصبية الهرمية المستمدة من صنع الإنسان المحفزة الخلايا الجذعية

Related Videos

13.3K Views

جيل بسيطة من ثقافة عالية الغلة المستحث الخلايا العصبية من الخلايا الليفية الجلد الكبار البشرية

09:07

جيل بسيطة من ثقافة عالية الغلة المستحث الخلايا العصبية من الخلايا الليفية الجلد الكبار البشرية

Related Videos

10.9K Views

النمذجة سليكون متشابك مع 3D كوكولتوريس أستروسيتيس والخلايا العصبية من الخلايا الجذعية Pluripotent البشرية

08:48

النمذجة سليكون متشابك مع 3D كوكولتوريس أستروسيتيس والخلايا العصبية من الخلايا الجذعية Pluripotent البشرية

Related Videos

12.8K Views

الأعضاء العصبية البشرية لدراسة سرطان الدماغ والأمراض العصبية

09:36

الأعضاء العصبية البشرية لدراسة سرطان الدماغ والأمراض العصبية

Related Videos

10.6K Views

الإنتاج الآلي من الإنسان المستحثة الخلايا الجذعية المشتقة الخلايا الجذعية الخلايا العصبية القشرية والدوبامين مع المتكاملة مراقبة الخلايا الحية

09:34

الإنتاج الآلي من الإنسان المستحثة الخلايا الجذعية المشتقة الخلايا الجذعية الخلايا العصبية القشرية والدوبامين مع المتكاملة مراقبة الخلايا الحية

Related Videos

7.8K Views

توليد الخلايا العصبية البشرية والخلايا قليلة التغصن من الخلايا الجذعية متعددة القدرات لنمذجة تفاعلات الخلايا العصبية قليلة التغصن

10:53

توليد الخلايا العصبية البشرية والخلايا قليلة التغصن من الخلايا الجذعية متعددة القدرات لنمذجة تفاعلات الخلايا العصبية قليلة التغصن

Related Videos

5.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code