يونيو 24, 2025
من الصعب تحديد الخلايا الدبقية الصغيرة (MG) والضامة المتسللة المحيطية (Mø) في الحبال الشوكية المصابة. في هذا البروتوكول ، تم استخدام قياس التدفق الخلوي (FCM) لتحديد MG الشبيه ب M1 ، و M2 مثل MG ، و M1 مثل Mø ، و Mø الشبيه ب M2 ، على التوالي. يمكن أيضا تطبيق هذه التقنية على أمراض الجهاز العصبي المركزي الأخرى لفهم دور MG و Mø.
يحدد بحثنا الخلايا الدبقية الصغيرة والضامة المتسللة في إصابة الحبل الشوكي لتوضيح أدوارها في التهاب الأعصاب باستخدام قياس التدفق الخلوي الأمثل. يعد قياس التدفق الخلوي والطرد المركزي بتدرج الكثافة أمرا أساسيا لعزل الخلايا المناعية للجهاز العصبي المركزي وتنميطها بخصوصية وكفاءة عالية. التمييز بين الخلايا الدبقية الصغيرة والضامة المتشابهة شكليا ، وتقليل فقدان الخلايا أثناء العزل ، والخصوصية الدقيقة الأدنى في البيئات الدقيقة للإصابة الديناميكية لا تزال عقبات رئيسية. تفشل الطرق الحالية في فصل الخلايا الدبقية الصغيرة المقيمة بشكل موثوق عن البلاعم المتسللة. يحل نهجنا القائم على العلامات هذا القيد الحرج في دراسات إصابات الحبل الشوكي.
[مقدم] للبدء ، قم بتحليل أنبوب التحكم في النمط المتماثل باستخدام مقياس التدفق الخلوي مع البرنامج المتوافق. اضبط جهد التشتت الأمامي والجهد الجانبي لوضع مجموعة الخلايا ضمن نطاق مناسب. قم بإعداد رسمين بيانيين إضافيين، أحدهما مزود ب IgG APC على المحور X وIgG PE على المحور Y، والآخر مع IgG-FITC على المحور X، وIgG APC-Cy7 على المحور Y. ثم اضبط الفولتية القنائية الفلورية ل IgG APC و IgG PE و IgG FITC و IgG APC-Cy7 لوضع مجموعة الخلايا داخل 10 لقوة ثلاثة من المنطقة السالبة المزدوجة. بعد تأكيد الفولتية المحسنة باستخدام أنبوب التحكم في النمط المتماثل ، احتفظ بجميع الإعدادات. استمر في تحليل الأنابيب التجريبية الملطخة بالأجسام المضادة. قم بإنشاء رسم بياني باستخدام CD11b PE على المحور X والتشتت الجانبي على المحور Y. قم بإعداد رسم بياني آخر باستخدام CD68 FITC و CCR7 APC-Cy7. باستخدام عنصر تحكم النمط المتماثل كمرجع ، حدد المنطقة الموجبة CD11b وحددها على أنها بوابة P1. حدد الرسم البياني CD68 FITC و CCR7 APC-Cy7. انقر بزر الماوس الأيمن لفتح إظهار السكان، وقم بتعيين العمود F4 إلى P1. بعد الحصول على البيانات ، اضبط تعويض التألق حسب الحاجة. قم بتحليل وتسجيل النسبة المئوية لمجموعات الخلايا السلبية CD11b CD68 CCR7 و CD11b CD68 الإيجابية CCR7. ابدأ في تحليل الأنابيب التجريبية باستخدام إعدادات الجهد من أنبوب التحكم في النمط المتماثل. قم بإنشاء رسم بياني باستخدام CD45 APC و CD11b PE. ثم قم بإعداد رسمين بيانيين باستخدام CD68 FITC و CCR7 APC-Cy7. احصل على 50,000 حدث لكل عينة واضبط تعويض التألق بعد جمع البيانات. في مخططات الألوان الزائفة ل CD45 و CD11b ، حدد وحلل مناطق الخلايا العالية CD11b الإيجابية ، والمنخفضة السلبية CD45 ، وخلايا CD11b الإيجابية CD45. ثم قم بتحليل المجموعات السكانية السلبية إيجابية ل CCR7 إيجابية CD68 و CD68 الإيجابية CCR7 داخل كل منطقة. دمج جميع التحليلات لتحديد النسبة المئوية للدبقية الصغيرة والبلاعم الشبيهة ب M1 والشبيهة ب M2 عبر المناطق المحددة. قم بتشغيل برنامج تحليل قياس التدفق الخلوي. اسحب ملفات تجربة قياس التدفق الخلوي إلى قسم جميع العينات في الواجهة. انقر نقرا مزدوجا فوق نموذج التحكم في النمط المتماثل لفتح مخطط نقطي ثنائي الأبعاد. حدد FSCA للمحور X و SSCA للمحور Y ، وانقر فوق زر البوابة المستطيلة واستخدمه لتحديد المنطقة باستثناء الحطام الخلوي. انقر نقرا مزدوجا فوق المنطقة المسورة لفتح مخطط رسم بياني جديد. ثم حدد FITC للمحور X والرسم البياني للمحور Y. انقر فوق زر بوابة المنطقة لتحديد العتبة بين إشارات الفلورسنت السالبة والموجبة. لكل من الأجسام المضادة الفلورية الأربعة ، حدد العتبة بين الإشارات السالبة والإيجابية باستخدام عينة التحكم في النمط المتماثل. قم بتغيير فلوروكروم المحور X بالتتابع إلى PE-APC و APC-Cy7 مع الحفاظ على الرسم البياني للمحور Y. استخدم أداة بوابة المنطقة في كل رسم بياني لوضع اللمسات الأخيرة على البوابات لتمييز إشارات الفلورسنت السلبية والإيجابية للأجسام المضادة الأربعة. بعد ذلك ، انقر نقرا مزدوجا فوق العينة التجريبية لفتح مخطط نقطي. حدد FSCA للمحور X و SSCA للمحور Y ، انقر فوق زر البوابة المستطيلة لبوابة السكان بعد إزالة الحطام. انقر نقرا مزدوجا فوق المنطقة المسورة لفتح مخطط نقطي جديد. حدد CD11b PE للمحور X و SSCA للمحور Y. انقر فوق زر البوابة المستطيلة واستخدم عتبة PE من عنصر تحكم النمط المتماثل لتحديد البوابة الموجبة CD11b. الآن انقر نقرا مزدوجا فوق المنطقة الموجبة CD11b لفتح مخطط نقطي آخر ، وحدد CD68 FITC للمحور X و CCR7 APC-Cy7 للمحور Y. انقر فوق زر البوابة المتقاطعة واستخدم عتبات FITC و APC-Cy7 المشتقة من النمط المتماثل لتصنيف الخلايا إلى أنواع شبيهة ب M1 ومثل M2. زادت نسبة الخلايا الإيجابية CD11b CD68 الإيجابية CD45 بشكل ملحوظ في مجموعة المركبات إصابة الحبل الشوكي ، أو SCI ، مقارنة بالمجموعة الزائفة ، ولم يغير علاج CRID3 هذا المستوى. كانت نسبة الخلايا الإيجابية CD45 المنخفضة الإيجابية CD11b CD68 أعلى بشكل ملحوظ في مجموعة مركبات اصابات النخاع الشوكي مقارنة بالوهمية ، وانخفضت بشكل ملحوظ بعد علاج CRID3. زادت نسب الخلايا الإيجابية CD11b إيجابية CD68 CCR7 بشكل ملحوظ في مجموعة مركبة اصابات النخاع الشوكي مقارنة بالوهمية وانخفضت بشكل ملحوظ بعد علاج CRID3. انخفضت نسب الخلايا السلبية CD11b إيجابية CD68 الإيجابية CCR7 و CD45 المنخفضة الإيجابية CD11b الإيجابية CD68 - CCR7 بشكل ملحوظ في كل من مجموعتي مركبات اصابات النخاع الشوكي مقارنة بالزائفة وزادت بعد علاج CRID3.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تبحث هذه الدراسة في كيفية تحديد الخلايا الدبقية الصغيرة والبلعميات المتسللة المحيطية في الحبال الشوكية المصابة باستخدام تقنية قياس التدفق الخلوي المحسنة. ومن خلال فحص الأنماط الظاهرية الشبيهة بـ M1 والشبيهة بـ M2، يهدف البحث إلى توضيح أدوارها في الالتهاب العصبي وتداعياتها المحتملة على أمراض الجهاز العصبي المركزي الأخرى.
يعد التمييز الموثوق بين الخلايا الدبقية الصغيرة والبلاعم المتسللة في نماذج إصابات النخاع الشوكي أمراً حاسماً لتقليل المخاطر المرتبطة بأهداف الالتهاب العصبي وتوضيح مساهمات الخلايا المناعية في اعتلال الجهاز العصبي المركزي. يتيح سير عمل قياس التدفق الخلوي القائم على هذه العلامات التنميط الظاهري الكمي للمجتمعات الشبيهة بـ M1/M2، مما يدعم الثقة التنبؤية في مراحل الاكتشاف المبكر والأبحاث الانتقالية. ويعالج هذا النهج عقبة رئيسية في التحقق من الأهداف والدراسات الميكانيكية لخطوط تطوير علاجات الأمراض الالتهابية والتنكسية العصبية.
يُدمج بروتوكول قياس التدفق الخلوي هذا ضمن التسلسل الممتد من مرحلة الاكتشاف إلى المرحلة ما قبل السريرية لبرامج التهاب الأعصاب وإصابات الجهاز العصبي المركزي.