-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
في الجسم الحي تصوير النشاط العصبي في ذبابة الفاكهة البالغة غير المخدرة
في الجسم الحي تصوير النشاط العصبي في ذبابة الفاكهة البالغة غير المخدرة
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
In Vivo Imaging of Neural Activity in Unanesthetized Drosophila Adult Flies

في الجسم الحي تصوير النشاط العصبي في ذبابة الفاكهة البالغة غير المخدرة

Full Text
1,106 Views
09:15 min
June 20, 2025

DOI: 10.3791/68332-v

Prachi Shah1, Isaac Cervantes-Sandoval1,2

1Department of Biology,Georgetown University, 2Interdisciplinary Program in Neuroscience,Georgetown University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study investigates the molecular and cellular mechanisms underlying memory forgetting using adult Drosophila, particularly how the brain actively suppresses memories for cognitive flexibility. By developing a novel anesthesia-free in vivo imaging protocol, the researchers aim to uncover the neural correlates of both memory formation and active forgetting.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cognitive processes
  • Behavioral biology

Background

  • Forgetting is an active biological process, not mere memory decay.
  • Understanding the neuronal activity related to memory suppression is crucial.
  • Previous models showed anesthesia impacts cognition adversely.
  • Drosophila provides a useful model for studying these processes due to genetic manipulability.

Purpose of Study

  • To explore the circuits involved in active memory forgetting.
  • To establish a preparation method for imaging Drosophila without the confounding effects of anesthesia.
  • To link neuronal activity with memory dynamics during forgetting.

Methods Used

  • In vivo imaging without anesthesia using Drosophila as the model organism.
  • Utilization of a custom-built setup for immobilizing the flies and performing neural recordings.
  • The protocol enables observing activity in specific neurons linked to memory processes.

Main Results

  • The study identifies specific dopaminergic neurons necessary for regulated forgetting.
  • Calcium imaging revealed significantly altered responses in key neuronal populations post-training.
  • Data suggest that forgetting is mediated through specific patterns of neuronal activity.

Conclusions

  • This study offers a novel approach to imaging in Drosophila, allowing for clearer insights into cognitive processes without anesthesia.
  • The findings highlight the active role of specific neurons in memory dynamics.
  • The study advances our understanding of how memories are selectively suppressed to maintain cognitive flexibility.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using Drosophila for this research?
Drosophila serves as an excellent model organism due to its genetic manipulability, allowing researchers to investigate specific neuronal circuits involved in memory processes.
How is the anesthesia-free imaging method implemented?
The method involves a custom assembly to immobilize the flies for in vivo imaging, circumventing the cognitive impairment caused by traditional anesthetics.
What types of data outcomes can be obtained from this study?
The study focuses on electrophysiological recordings and calcium imaging to assess neuronal responses related to memory formation and forgetting.
How can this method be adapted for other studies?
The anesthesia-free preparation technique can be adapted for various neuronal studies in Drosophila or potentially other organisms where anesthesia impacts behavior and cognition.
What are some limitations of this research?
While the method improves imaging reliability, the complexity of circuitry and behavioral contexts may still pose challenges in interpreting results comprehensively.

من العوائق الكبيرة لدراسة النشاط الخلوي أثناء العمليات المعرفية مثل التعلم والذاكرة استخدام التخدير لإعداد التصوير في الجسم الحي . يضعف التخدير الذاكرة والإدراك على المدى القصير في نماذج متعددة ، بما في ذلك ذبابة الفاكهة. تقدم هذه الدراسة طريقة فريدة لتحضير ذبابة الفاكهة للبالغين للتصوير في الجسم الحي بدون تخدير.

نحن نحاول فهم الأساس الجزيئي والخلوي والدائري لنسيان الذاكرة الطبيعية ، بهدف الكشف عن كيفية محو الدماغ أو قمعه بنشاط للذكريات للحفاظ على المرونة المعرفية. أظهرت الأبحاث الحديثة أن النسيان ليس مجرد اضمحلال سلبي للذكريات ، بل هو عملية بيولوجية نشطة عالية التنظيم تتطلب أنماطا محددة من النشاط العصبي.

يتمثل التحدي الرئيسي في ربط التلاعب بدوائر معينة بعمليات الذاكرة الديناميكية مع دمج البيانات الشبكية والوراثية والسلوكية بطريقة صارمة وقابلة للتفسير. لقد ساعدنا في إثبات أن النسيان هو عملية نشطة منظمة بيولوجيا. حدد عملنا الخلايا العصبية الدوبامين المحددة والمسارات الجزيئية اللازمة للنسيان الطبيعي في ذبابة الفاكهة الدماغ. يتيح بروتوكولنا التصوير الوظيفي للذباب بدون تخدير ، مما يمنع التأثيرات غير المحددة غير المرغوب فيها بواسطة التخدير. نستخدم هذا النهج للتحقيق في الارتباطات العصبية الكامنة وراء تكوين الذاكرة ونسيان الذاكرة النشطة.

[الراوي] للبدء ، استخدم أدوات Dremel وشفرة المنشار الماسية لقطع أنبوب معدني تحت الجلد عيار 22 بطول 10 سم تقريبا. باستخدام عجلة القطع Dremel 420 ، قم بتلميع طرفي الأنبوب لإنشاء فتحة ناعمة ونظيفة يمكن أن تستوعب خرطوم الذبابة. لف الأنبوب المقطوع حول أنبوب طرد مركزي سعة 15 مليلتر لتشكيل الشكل المنحني المطلوب. ثم قم بقطع قطعة بطول 7 سم من أنابيب معدنية تحت الجلد قياس 12. استخدم الآن شفرة حلاقة لتقليم نهاية طرف الماصة سعة 2 ميكرولتر لتناسب الأنابيب المعدنية قياس 22. ضع الأنبوب قياس 12 في الطرف الآخر من طرف الماصة. بعد ذلك ، اخلطي كمية صغيرة من راتنجات الايبوكسي والمقسى معا. ضع الإيبوكسي على التقاطعات حيث يلتقي الأنبوب المعدني الصغير بطرف الماصة وحيث يتصل الأنبوب الأكبر بالطرف الآخر. اسمح للإيبوكسي بالشفاء الكامل طوال الليل قبل توصيل التجميع بحامل مناور دقيق وضبط الزاوية حسب الضرورة. لبناء ماصة توصيل الصدمات والرائحة، قم بقطع 1 ملليلتر من ماصة زجاجية 1 × 100 عند علامة 3 ملليلتر باستخدام أداة Dremel الماسية. ثم قم بقص لوح أكريليك صغير مستطيل الشكل بقياس 24.5 ملم × 8 ملم بسمك 1/8 بوصة. قم بقص شبكة صدمات نحاسية لتناسب قطعة الأكريليك المستطيلة. لحام سلكين كهربائيين على طرفي نقيض من الشبكة النحاسية. الآن ضع الشبكة النحاسية على قطعة الأكريليك وثنيها قليلا لاستيعاب بطن الذبابة وساقيها. استخدم شريطا كهربائيا لربط الشبكة النحاسية بقطعة الأكريليك. ثم استخدم مسدس الغراء الساخن لتوصيل الماصة الزجاجية بشبكة الصدمات ، مما يضمن أنها مستقيمة ومركزية. لبناء غرفة التسجيل ، خذ شريحة مجهر زجاجي كقاعدة للغرفة. امزج الراتنج وغراء الايبوكسي معا. باستخدام غراء الايبوكسي ، قم بإرفاق مغناطيس النيوديميوم على جميع الزوايا الأربع لغرفة الأكريليك السوداء. ضع مغناطيسا إضافيا فوق كل مغناطيس لاصق. ثم قم بلصق المغناطيس الموضوع حديثا على شريحة زجاجية باستخدام الايبوكسي. امسك التجميع في مكانه باستخدام مشابك الورق أثناء المعالجة. قم بإزالة طرف الماصة سعة 200 ميكرولتر من الشفاطة. أدخل الشفاط في قارورة تحتوي على ذبابة الفاكهة واستنشق ذبابة واحدة في طرف الماصة سعة 1,000 ميكرولتر. أعد تركيب طرف الماصة سعة 200 ميكرولتر مرة أخرى على الشفاطة. ثم قم بنفخ الشفاط ونقره برفق حتى يتم تثبيت الذبابة رأسا على عقب في الجزء العلوي من طرف الماصة سعة 200 ميكرولتر. بعد ذلك ، ضع غرفة التشريح على حامل المناور. قم بتوصيل المكنسة الكهربائية بأنبوب تثبيت الذبابة واضبط معدل التدفق إلى حوالي 500 مل في الدقيقة. الآن انقل الأنبوب المعدني المفرغ إلى مركز مجال رؤية المجهر. قم بشفط خرطوم الذباب برفق في حامل الفراغ. اضبط المناور لمحاذاة رأس الذبابة مع فتحة الغرفة. قم بتشغيل مصدر طاقة التيار المباشر. باستخدام سلك مقاومة البلاتين ، ضع حمض الميريستيك المذاب للصق العينين والصدر على الغرفة. بمجرد تأمينه، افصل أنبوب التفريغ. قم بإزالة غرفة التسجيل من وصلة التفريغ باستخدام المناور واقلب الغرفة رأسا على عقب. ثم قم بلصق خرطوم من الأسفل باستخدام مقاومة البلاتين. عندما يتم لصق كل شيء ، قم بإيقاف تشغيل مصدر الطاقة الحالي المباشر. ثم اقلب الغرفة في وضع مستقيم. اربط الغرفة بقاعدة الشريحة الزجاجية. اقطع قطعة صغيرة من الشريط بالمقص وضعها أمام وخلف رأس الذبابة. قم بتدوير الغرفة بحيث يواجه رأس الذبابة المجرب بزاوية 90 درجة. باستخدام إبرة تشريح ، قم بعمل شقوق رأسية على جانبي العينين. قم بتدوير الغرفة أفقيا. ثم قم بعمل قطع أفقي عبر بشرة. أضف الآن 100 ميكرولتر من المحلول الملحي إلى الجزء العلوي من رأس الذبابة. باستخدام ملقط حاد ، قم بإزالة نافذة البشرة ، ثم قم بإزالة أي دهون متبقية أو قصبة هوائية بالملقط. ضع ذبابة معدة على مرحلة المجهر في مجهر متحد البؤر مزود بالليزر وهدف الغمر في الماء. باستخدام مناور دقيق ، اضبط موضع شبكة الصدمات وماصة الرائحة بحيث يتم وضع الذبابة بشكل صحيح على شبكة الصدمات. استخدم مقبض ضبط الدورة التدريبية z للمسح الضوئي من خلال المحور z للدماغ وتحديد منطقة الدماغ التي تهمك. اضبط حجم الإطار على 512 × 512 بكسل. ابدأ التسجيل من الخلايا العصبية ذات الأهمية باستخدام نظام توصيل رائحة مخصص أو متاح تجاريا. اضبط مدة التسجيل على دقيقتين. ابدأ بروتوكول التدريب باستخدام نظام توصيل الرائحة بعد 5 دقائق من جمع استجابات ما قبل التدريب. ثم سجل استجابات ما بعد التدريب بعد حوالي 5-15 دقيقة من التدريب. تم التعبير عن مؤشر الكالسيوم GCaMP6f والبروتين الفلوري الأحمر tdTomato بشكل انتقائي في الخلايا العصبية الناتجة لجسم الفطر مع التشعبات البارزة في فصوص جاما وألفا اندفاعة في جسم الفطر ، وتم تصور الخلايا العصبية باستخدام خط تشغيل MB077C split-GAL4. انخفضت استجابات الكالسيوم في الخلايا العصبية الناتجة لجسم الفطر إلى 3-أوكتانول بشكل ملحوظ بعد 5 دقائق من التكييف العكسي دون تخدير وظلت مكبوتة في 15 دقيقة. في المقابل ، تم تعزيز استجابات الكالسيوم ل 4-methylcyclohexanol بشكل كبير بعد 5 دقائق من التدريب وظلت مرتفعة في 15 دقيقة. أظهرت الصور الملونة الزائفة تغيرات مضان مميزة قبل التدريب وبعده. في الذباب المخدر ، انخفضت استجابات الكالسيوم بعد التدريب ل CS + جزئيا فقط ولم تختلف الاستجابات ل CS- اختلافا كبيرا عن خط الأساس. أكد التحليل الكمي أن استجابة CS + كانت مكتئبة بشكل كبير بعد التدريب في الذباب المخدر ، لكن استجابات CS ظلت دون تغيير إحصائيا. كانت اللدونة أعلى بشكل ملحوظ في الذباب غير المخدر مقارنة بالذباب المخدر.

Explore More Videos

هذا الشهر في JoVE العدد 220

Related Videos

في التصوير من يرقات ذبابة الفاكهة فيفو سليمة الفرعية الخلوية في القرار

17:51

في التصوير من يرقات ذبابة الفاكهة فيفو سليمة الفرعية الخلوية في القرار

Related Videos

15.1K Views

في وقت واحد من تسجيل إشارات الكالسيوم من الخلايا العصبية التي تم تحديدها وسلوك التغذية من ذبابة الفاكهة السوداء البطن

06:55

في وقت واحد من تسجيل إشارات الكالسيوم من الخلايا العصبية التي تم تحديدها وسلوك التغذية من ذبابة الفاكهة السوداء البطن

Related Videos

16.1K Views

ذبابة الفاكهة في الجسم الحي تصوير الكالسيوم: طريقة للتصوير الوظيفي للنشاط العصبي

04:02

ذبابة الفاكهة في الجسم الحي تصوير الكالسيوم: طريقة للتصوير الوظيفي للنشاط العصبي

Related Videos

4.8K Views

في الجسم الحي تصوير الكالسيوم باستخدام مستشعرات الكالسيوم الموضعية بشكل متشابك في ذبابة الفاكهة السوداء

03:39

في الجسم الحي تصوير الكالسيوم باستخدام مستشعرات الكالسيوم الموضعية بشكل متشابك في ذبابة الفاكهة السوداء

Related Videos

663 Views

التصوير المباشر ل ذبابة الفاكهة اليرقات Neuroblasts

09:50

التصوير المباشر ل ذبابة الفاكهة اليرقات Neuroblasts

Related Videos

15.8K Views

في فيفو الدماغ أسلوب التصوير النهج القائم على الكالسيوم إضاءة الحيوية المؤشر GFP-aequorin

12:15

في فيفو الدماغ أسلوب التصوير النهج القائم على الكالسيوم إضاءة الحيوية المؤشر GFP-aequorin

Related Videos

13K Views

في فيفو تتبع في محطة Presynaptic الأعصاب الحركية المورفولوجية جزيء واحد

06:45

في فيفو تتبع في محطة Presynaptic الأعصاب الحركية المورفولوجية جزيء واحد

Related Videos

9K Views

في فيفو البصرية الكالسيوم التصوير من اللدونة متشابك الناجمة عن التعلم في دروفوميلا ميلغاستر

06:35

في فيفو البصرية الكالسيوم التصوير من اللدونة متشابك الناجمة عن التعلم في دروفوميلا ميلغاستر

Related Videos

9.8K Views

إعداد الكبار Drosophila melanogaster لتصوير الدماغ كله أثناء السلوك والمحفزات الاستجابات

07:51

إعداد الكبار Drosophila melanogaster لتصوير الدماغ كله أثناء السلوك والمحفزات الاستجابات

Related Videos

7.2K Views

في الجسم الحي تصوير الكالسيوم للاستجابات العصبية الناجمة عن التذوق في ذبابة الفاكهة البالغة

06:30

في الجسم الحي تصوير الكالسيوم للاستجابات العصبية الناجمة عن التذوق في ذبابة الفاكهة البالغة

Related Videos

1.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code