-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
نموذج Ex Vivo Explant لدراسة التفاعلات الدبقية في شبكية العين الفأر
نموذج Ex Vivo Explant لدراسة التفاعلات الدبقية في شبكية العين الفأر
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
An Ex Vivo Explant Model for Studying Glial Interactions in the Mouse Retina

نموذج Ex Vivo Explant لدراسة التفاعلات الدبقية في شبكية العين الفأر

Full Text
1,446 Views
09:46 min
July 15, 2025

DOI: 10.3791/68482-v

Paul F. Cullen1, Yixi Xue1, Milica A. Margeta1

1Department of Ophthalmology, Schepens Eye Research Institute of Massachusetts Eye and Ear,Harvard Medical School

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study investigates neuroinflammation in glaucoma, focusing on glial support cells in the retina and their influence on neuronal loss during disease progression. A detailed methodology for isolating the retina from the mouse eye is provided, facilitating ex vivo experimentation and better preservation of the natural environment for retinal cells.

Key Study Components

Research Area

  • Neuroinflammation in glaucoma
  • Retinal glial cells and neuronal loss
  • Ex vivo retinal experimentation

Background

  • Glaucoma is the leading cause of irreversible blindness
  • Glial cells like astrocytes and microglia play crucial roles in disease progression
  • Traditional methods may not adequately study glial functions

Methods Used

  • Detailed retina isolation protocol from mouse eyes
  • Mouse model for retinal studies
  • Explant culture to study glial function in a natural environment

Main Results

  • Protocol provides easier access to study retinal glial functions
  • Better preservation of the inner retinal environment compared to traditional cell cultures
  • Enables accurate investigation into physiological functions of retinal cells

Conclusions

  • This study provides a crucial method for retinal research in the context of neuroinflammation
  • Highlights the importance of glia in retinal health and disease

Frequently Asked Questions

What is the significance of studying glial cells in glaucoma?
Glial cells are thought to significantly impact neuronal survival and disease progression in glaucoma.
How does the method improve upon traditional approaches?
The method preserves the natural environment of retinal cells, allowing for more relevant biological conclusions.
What type of mouse model is used in the studies?
The studies utilize mouse eye models to explore retinal dynamics related to neuroinflammation.
What are the main components of the isolation protocol?
The protocol includes dissection techniques, cleaning of the retinal surface, and proper handling to avoid damage.
Is this method suitable for all types of retinal studies?
While it is designed for studying glial cells and neuroinflammation, applications may vary based on research goals.
What precautions are taken during the procedure?
Aseptic techniques are emphasized to prevent contamination during the isolation process.
Can this method be adapted for other species?
The protocol primarily focuses on mice; adaptations may be necessary for other species.

هنا ، نقدم منهجية مفصلة لعزل شبكية العين عن عين الفأر لإجراء تجارب ممتدة خارج الجسم الحي . يؤكد هذا البروتوكول على جعل هذا النهج المتطلب تقنيا متاحا للباحثين الذين يرغبون في الاستفادة من سبل البحث التي يوفرها الحفاظ على الخلايا الدبقية في الشبكية في الموقع في الأنسجة الحية.

نريد أن نفهم الالتهاب العصبي في الجلوكوما ، السبب الرئيسي للعمى الذي لا رجعة فيه في جميع أنحاء العالم. على وجه التحديد ، نحن ندرس كيفية تأثير الخلايا الدبقية الداعمة في شبكية العين على فقدان الخلايا العصبية أثناء تطور المرض.

يعتقد أن الخلايا الدبقية مثل الخلايا النجمية والخلايا الدبقية الصغيرة تؤثر على تطور الجلوكوما ، ولكن العديد من الأدوات المستخدمة لدراسة وظيفة الخلايا العصبية في نماذج الحية غير مناسبة لهذه الخلايا. تستخدم مستخلصات الشبكية لدراسة الالتهاب العصبي ووظيفة الدبق ، لكن منحنى التعلم حاد. يجعله بروتوكولنا أكثر سهولة ونأمل أن يتيح التبني الأوسع للتقنية.

بالمقارنة مع زراعة الخلايا التقليدية في المختبر ، فإن نهج الزرع الخاص بنا يحافظ بشكل أفضل على البيئة الطبيعية للخلايا في شبكية العين الداخلية ، مما يتيح إجراء تحقيق أكثر دقة في وظائفها الفسيولوجية.

[الراوي] للبدء ، ضع عين الفأر المستخرجة في طبق تشريح مليء ب PBS معقم بدرجة حرارة الغرفة. حدد نقطة التثبيت المناسبة وامسكها بالملقط بزاوية ، ثم ضع العين برفق على منديل المختبر المغمور مع التأكد من وضع المحور الأمامي الخلفي من القرنية إلى العصب البصري أفقيا. مع الحفاظ على ثبات قوي باستخدام ملقط بزاوية ، استخدم طرف مشرط رقم 11 لعمل شق مواز وحوالي 0.5 ملم خلف الأطراف حيث تنتقل القرنية إلى الصلبة. أدخل شفرة واحدة من مقص الزنبرك داخل الكرة الأرضية واقطعها بشكل دائري حول العين ، وأعد وضعها حسب الحاجة باستخدام الملقط. بعد الانتهاء من القطع المحيطي ، قم بإزالة الجزء الأمامي والعدسة باستخدام الملقط. إذا بقيت قطعة طويلة من العصب البصري ، فقم بقصها بطول من ملليمتر إلى ملليمترين باستخدام مقص ناعم. ثم قم بتدوير كوب العين بحيث يكون متجها لأعلى لتمكين الفحص البصري وتسهيل إزالة الجسم الزجاجي. استمر في استخدام ملقط بزاوية لتثبيت كوب العين وفحص شبكية العين بحثا عن تلف مرئي وفحص الحجرة الزجاجية بحثا عن بقايا الخلايا المصطبغة من ظهارة صبغة الشبكية أو المشيمية. باستخدام ماصة نقل معدلة، اغسل الغرفة الزجاجية باستخدام PBS، مع الحفاظ على طرف الماصة مغمورا لمنع فقاعات الهواء. بعد ذلك ، باستخدام فرشاة ألوان مائية دقيقة ، قم بإزالة الحطام الأكبر برفق مع تقليل ملامسة شبكية العين. بالنسبة للحطام المستمر، استخدم ملقطا رفيع الرؤوس بعناية، وتجنب ملامسة المعدن المباشرة لشبكية العين. بعد إزالة الحطام المرئي ، اغسل الغرفة الزجاجية باستخدام PBS من ماصة النقل ثلاث إلى خمس مرات واستخدم الفرشاة الدقيقة للفحص بالقرب من المحيط بحثا عن عناصر الجسم الهدبي المتبقية ، والكشف عن الجسم الزجاجي عن طريق السحب على ألياف الفرشاة. إذا بقيت جيوب من الجسم الزجاجي ، فقم بتمريرها للخارج باتجاه المحيط بالفرشاة ، مع الحفاظ على الألياف متأخرة بزاوية ضحلة لمنع تلف الشبكية. امسك زوجا من الملقط في وضع مغلق مع لمس الأطراف وأدخلها برفق بين شبكية العين والمشيمية باستخدام أي فجوات طبيعية تشكلت أثناء المناولة. استخدم الأذرع المسطحة للملقط لتوسيع المسافة بين شبكية العين والمشيمية تدريجيا حتى يتم تحقيق الفصل الكامل. استمر في تثبيت العينة باستخدام زوج واحد من الملقط أثناء استخدام زوج ثان لسحب كوب العين برفق ، بما في ذلك الصلبة والمشيمية ، لأسفل. إذا نزلت شبكية العين مع كوب العين ، فاستخدم الملقط للفحص برفق وفصل أي نقاط اتصال متبقية ، وتجنب رأس العصب البصري. ثم مع استمرار تثبيت شبكية العين في رأس العصب البصري ، استمر في تثبيت الأنسجة واستخدم الزوج الثاني من الملقط لتجميع كوب العين أسفل رأس العصب البصري. افحص للتأكد من أن محيط الشبكية غير مطوي بسبب الجسم الزجاجي المتبقي ، خاصة في المواقع التي يبقى فيها الجسم الهدبي. إذا لزم الأمر، اغسل الغرفة باستخدام PBS باستخدام ماصة نقل واستخدم الفرشاة لفك أي شبكية مطوية برفق وإزالة الجسم الزجاجي الزائد. بعد تعرض شبكية العين من كلا الجانبين ، استخدم المقص الزنبركي لعمل سلسلة من الجروح المخففة بزاوية 90 درجة تقريبا من محيط الشبكية باتجاه رأس العصب البصري. أثناء الإمساك بالأنسجة المغمورة ، استخدم الملقط لسحب منديل المختبر بشكل جانبي بعيدا عن العينة وإزالته من الطبق دون لمس شبكية العين. أثناء تثبيت شبكية العين في مكانها ، استخدم المقص الزنبركي لقطع العصب البصري أسفل شبكية العين مباشرة. ثم ارفع بعناية وقم بإزالة أنسجة كوب العين المتبقية من الطبق. الآن املأ طبق بتري مقاس 35 ملم ب PBS واستخدم الملقط لوضع مربع مرشح في الأسفل بحيث يكون الجانب الخشن غير اللامع متجها لأعلى ، وتجنب أي تجاعيد. بعد ذلك ، باستخدام ماصة النقل ، قم بشفط شبكية العين برفق ونقلها إلى طبق بتري. استخدم الفرشاة لتوجيه شبكية العين بحيث يكون السطح الداخلي متجها لأعلى وضعه مباشرة فوق مربع المرشح. قم بشفط PBS ببطء لخفض شبكية العين على الفلتر. بمجرد وضع شبكية العين على الفلتر ، استخدم الفرشاة لفتح أي طيات طرفية برفق. اضبط مستوى PBS لتحقيق التوازن بين استقرار الشبكية والترطيب ، مما يسمح بحركة الفرشاة بسلاسة دون تجفيف الأنسجة. استخدم الآن ماصة النقل لتقطير PBS من حوالي سنتيمتر واحد أعلاه لشطف السطح وفحص شبكية العين مرة أخرى بحثا عن الحطام. أغلق غطاء الطبق مقاس 35 ملم واحمله إلى خزانة السلامة الحيوية. ضع الطبق المغلق داخل خزانة السلامة الحيوية دون ملامسة أي أسطح أو معدات داخلية. قم بتعقيم القفازات أو استبدالها عند الانتقال إلى العمل المعقم ونقل اللوحة المكونة من ستة آبار المحملة مسبقا بوسائط الزرع من الحاضنة إلى خزانة السلامة الحيوية. داخل الخزانة ، قم بإزالة غطاء الطبق مقاس 35 ملم واستخدم ملقطا بزاوية لرفع مربع المرشح دون لمس شبكية العين. ثم افتح اللوحة المكونة من ستة آبار وقم بخفض الفلتر برفق في وسط الملحق في بئر واحد ، واغمره ببطء في الوسائط. بمجرد فصل شبكية العين عن الفلتر ، حرك الفلتر جانبا ببطء وقم بإزالته من البئر باستخدام ملقط بزاوية. استخدم ماصة سعة مليلتر واحد لشفط 500 ميكرولتر من الوسائط من الملحق ، مما يؤدي إلى حبس شبكية العين بين الملحق وواجهة الهواء السائل. أخيرا ، استبدل الغطاء الموجود على اللوحة المكونة من ستة آبار وأعده إلى الحاضنة ، مع التأكد من بقاء شبكية العين متمركزة داخل البئر. لفحص التغيرات واسعة النطاق في الخلايا الدبقية في الشبكية ، تمت مقارنة شبكية العين المزروعة لمدة ثلاثة أيام مع النباتات الزائفة التي تم إصلاحها مباشرة بعد العزل بدلا من زراعتها. أظهرت الخلايا الدبقية الصغيرة في شبكية العين الزائفة نمط توزيع منتظم وغير متداخل ، بينما بحلول اليوم الثالث ، أصبح تنظيم شبكية العين غير منتظم مع ظهور الخلايا العنقودية ، مما يعني الهجرة. أظهرت الخلايا النجمية في شبكية العين الزائفة محاذاة وثيقة مع الأوعية الدموية ، والتي تضاءلت بشكل كبير بعد ثلاثة أيام في المختبر. كان تعبير GFAP في خلايا مولر باهتا أو غائبا في شبكية العين الزائفة ولكنه أصبح مرئيا بوضوح بحلول اليوم الثالث في المختبر ، خاصة بالقرب من حواف الأنسجة. بعد يوم واحد في المختبر ، أظهرت الخلايا الدبقية الصغيرة تراجعا في العملية وعلامات مبكرة للتنشيط والتي تطورت إلى مورفولوجيا أميبيويد مدمجة بحلول اليوم الثالث. عند علامة 24 ساعة ، أظهرت كثافة الخلايا العقدية الشبكية التي تم تحديدها كميا باستخدام Brn3a انخفاضا متواضعا ولكنه ملحوظ في المستنخاسات المستخرجة على المستنخاسات الزائفة. تم التعبير عن TMEM119 ، وهي علامة دبقية صغيرة متجانسة ، بشكل كبير في شبكية العين الزائفة ولكن كان من غير الممكن اكتشافها تقريبا بعد ثلاثة أيام في المختبر. ظل تعبير CD206 ، الذي يشير إلى خلايا الهيالويات ، مستقرا بعد ثلاثة أيام من الزراعة في المختبر. كشف تلطيخ GFAP عن تفاعل الخلايا النجمية وخلايا مولر حول مواقع الإصابة الميكانيكية التي لحقت بها أثناء التشريح والتعامل.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

هذا الشهر في JoVE العدد 221

Related Videos

Electroporation في الجسم الحي وخارج الرحم للتعبير الجينات في خلايا الشبكية العقدة ماوس

25:06

Electroporation في الجسم الحي وخارج الرحم للتعبير الجينات في خلايا الشبكية العقدة ماوس

Related Videos

19.3K Views

في الجسم الحي مثل الفئران عضوي النمط الثقافة Wholemount الشبكية

25:26

في الجسم الحي مثل الفئران عضوي النمط الثقافة Wholemount الشبكية

Related Videos

18.2K Views

إنشاء مزرعة الخلايا الدبقية في مولر التي تم الحصول عليها من شبكية العين الفئرانية

05:09

إنشاء مزرعة الخلايا الدبقية في مولر التي تم الحصول عليها من شبكية العين الفئرانية

Related Videos

556 Views

التصوير في الجسم الحي للدبقية الصغيرة في الشبكية في نموذج فأر من الجلوكوما

04:55

التصوير في الجسم الحي للدبقية الصغيرة في الشبكية في نموذج فأر من الجلوكوما

Related Videos

613 Views

الغلوتامات ونقص الأكسجة نموذجا الإجهاد لمعزولة perfused لالفقارية الشبكية

07:48

الغلوتامات ونقص الأكسجة نموذجا الإجهاد لمعزولة perfused لالفقارية الشبكية

Related Videos

8.3K Views

ثقافة الكبار المعدلة وراثيا الزرد الشبكية إإكسبلنتس التصوير خلية حية من قبل Multiphoton المجهر

11:55

ثقافة الكبار المعدلة وراثيا الزرد الشبكية إإكسبلنتس التصوير خلية حية من قبل Multiphoton المجهر

Related Videos

9.1K Views

الكبار الماوس DRG Explant ونأت بنماذج الخلية للتحقيق في أعصاب والردود على الإهانات البيئية بما في ذلك العدوى الفيروسية

09:23

الكبار الماوس DRG Explant ونأت بنماذج الخلية للتحقيق في أعصاب والردود على الإهانات البيئية بما في ذلك العدوى الفيروسية

Related Videos

22.8K Views

Ex Vivo Choroid فحص من تكوين الأوعية الأوعية الدموية الدقيقة

06:10

Ex Vivo Choroid فحص من تكوين الأوعية الأوعية الدموية الدقيقة

Related Videos

6.3K Views

على المدى الطويل، زراعة خالية من المصل من النباتات الشبكية الماوس Organotypic مع ظهارة صبغة الشبكية سليمة

05:52

على المدى الطويل، زراعة خالية من المصل من النباتات الشبكية الماوس Organotypic مع ظهارة صبغة الشبكية سليمة

Related Videos

9.7K Views

توصيف رواية الإنسان Organotypic تقنية ثقافة الشبكية

05:51

توصيف رواية الإنسان Organotypic تقنية ثقافة الشبكية

Related Videos

4.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code