أغسطس 19, 2025
تتوفر البيانات البروتينية القائمة على قياس الطيف الكتلي في قواعد البيانات المفتوحة ويمكن الوصول إليها باستخدام أدوات مجانية. نظرا لتعقيد عمليات البحث في قواعد البيانات وأوصافها ، يفتقر العديد من علماء الأحياء إلى المعرفة اللازمة لاستخدام مجموعات البيانات هذه. هنا ، نقدم دليلا حول استخدام الأدوات المجانية للبحث عن البيانات البروتينية الأساسية.
يوفر عملنا دليلا لعلماء الأحياء لتحليل البيانات البروتينية المعقدة باستخدام أدوات مجانية. نحن نهدف إلى تمكينهم من التحقق من صحة النتائج واستكشاف مجموعات البيانات العامة. لا يستطيع العديد من علماء الأحياء استخدام بيانات البروتينات العامة بسبب عدم وجود دليل واضح.
يعمل عملنا على سد هذا ، مما يتيح التحقق من الصحة دون أي تجارب جديدة للحياة البرية. يستخدم عملنا أحدث البرامج المجانية التي لا تعتمد على البائع. هذه الأدوات أسرع وأكثر حساسية وتوفر اكتشافا أكثر دقة للبروتينات من العديد من الأدوات التقليدية.
للبدء ، قم بتنزيل ملف FASTA المرجعي من قاعدة بيانات UniProt. انقر فوق الزر "إضافة FASTA" لتحميل ملف البروتين المرجعي في برنامج DIA-NN. حدد الخيارين ، ملخص FASTA لإنشاء مكتبة البحث المجانية في المكتبة ، والأطياف المستندة إلى التعلم العميق ، والتنبؤ ب RTs ، والمراسلات الفورية ضمن قسم توليد أيونات السلائف.
ثم انقر فوق زر التشغيل لإنشاء مكتبة طيفية متوقعة. قم بإلغاء تحديد الخيارين ضمن قسم توليد أيونات السلائف. انقر فوق زر النوع الذي يتوافق مع تنسيق الملف ضمن قسم الإدخال لتحميل بيانات DIA.
الآن ، اضبط كل من دقة الكتلة ودقة MS1 على صفر جزء في المليون ضمن قسم الخوارزمية. اضبط إعدادات نطاق كتلة السلائف والتجزئة ضمن قسم توليد أيونات السلائف وفقا للإعداد التجريبي. احتفظ بإعدادات البرامج الأخرى دون تغيير.
بعد ذلك ، انقر فوق زر التشغيل. انتظر حتى يتم عرض الانتهاء على واجهة التشغيل، مما يشير إلى اكتمال التحليل. انقر فوق رمز أنبوب الشظاة الموجود في مجلد bin بعد التثبيت.
انتقل إلى علامة التبويب التكوين لعرض جميع الإعدادات التابعة. تحقق مما إذا كانت وحدات MSFragger وIonQuant وdiaTracer وDIA-NN وPython متوفرة على نظامك. إذا كانت أي وحدات مفقودة ، فانقر فوق تنزيل التحديث أو التنزيل لاستردادها.
الآن ، قم بالتبديل إلى علامة تبويب سير العمل. حدد افتراضيا من القائمة المنسدلة لسير العمل وانقر فوق تحميل سير العمل. ثم انقر فوق إضافة ملفات لإدخال مسارات الملفات.
قم بتعيين اسم التجربة ورقم النسخ المتماثل البيولوجي ضمن تعيين الملفات أو اتركها فارغة. بعد ذلك ، انقر فوق علامة تبويب قاعدة البيانات للتبديل إليها. قم بتحميل ملف FASTA من القرص أو قم بتنزيل ملف يتوافق مع أنواع العينة.
أثناء التنزيل ، حدد الخيارات التي تمت مراجعتها فقط ، وأضف الأفخاخ ، وأضف الملوثات الشائعة لتشغيل بسيط. انقر فوق علامة التبويب MSFragger لتغيير طريقة العرض. حدد التكوين الافتراضي للبحث المغلق وانقر فوق تحميل.
ضمن إعدادات مطابقة الذروة، احتفظ بجميع القيم الافتراضية. لكل من المعايرة والتحسين، حدد لا شيء لتقليل وقت المعالجة. لهضم البروتين، اضبط المعلمات بناء على متطلبات تجربتك وحافظ على الإعدادات الافتراضية المتبقية.
الآن ، قم بالتبديل إلى علامة التبويب التحقق من الصحة. قم بإلغاء تحديد التنبؤ ب RT والتنبؤ بأطياف، حيث أن هذه الخيارات مخصصة لسير عمل الاستحواذ المستقل عن البيانات. انقر فوق علامة التبويب MS1 الكمية.
حدد تشغيل MS1 quant ثم انقر فوق تحميل الإعدادات الافتراضية الكمية. اختر كمية الأيونات واترك جميع الإعدادات الأخرى عند القيم الافتراضية. أخيرا ، انقر فوق علامة التبويب تشغيل للمتابعة.
حدد دليل الإخراج المطلوب وانقر فوق تشغيل لبدء تحليل البيانات. في المرضى الذين يعانون من سرطان غدي في قناة البنكرياس ، أو PDAC ، أظهر SERPINA5 و HPSE انخفاضا ملحوظا في التعبير ، بينما أظهر FGB زيادة في التعبير في المصل مقارنة بالأفراد العاديين. في عينات ورم سرطان الخلايا الكبدية ، أظهر ENO3 و PLS3 و MTAP و SERPINB9 و ITPR2 انخفاضا في التعبير بالنسبة للأنسجة المقترنة ، بينما زادت ME1 و CYP27A1 و RPS16 و ATP5PF بشكل ملحوظ.
كشف تصور الخريطة الحرارية عن تعبير بروتين مرتفع باستمرار في مصل مرضى PDAC مقارنة بالأفراد العاديين. كشف تحليل تخصيب الأنطولوجيا الجينية لمصل PDAC عن تنظيم كبير للعمليات المتعلقة بالتخثر والإرقاء. حدد تحليل GO لأورام سرطان الخلايا الكبدية التخصيب في عمليات النوكليوتيدات والتمثيل الغذائي ، بما في ذلك استقلاب نيوكليوتيدات البيورين ومسارات التمثيل الغذائي NAD.
كشف تحليل تخصيب مسار KEGG لمصل PDAC عن تنشيط كبير لمسار شلالات التكملة والتخثر ، جنبا إلى جنب مع تدهور الجليكوزامينوجليكان. حدد تحليل KEG في عينات ورم سرطان الخلايا الكبدية الإثراء في إشارات PPAR ، واستقلاب الكربون ، ومسارات الأمراض التنكسية العصبية ، على الرغم من انخفاض الأهمية الإحصائية. كشفت شبكة تفاعل البروتين والبروتين لبروتينات مصل PDAC المنظمة عن مجموعة مركزية تتضمن عامل التخثر 11 ، وسلسلة فيبرينوجين بيتا ، ومثبط بروتياز سيرين البلازما ، بالإضافة إلى العديد من البروتينات المعزولة ، بما في ذلك HPSE ، وشبه مستضد CD5 ، و CRISP3.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
توفر هذه الدراسة دليلًا شاملًا لعلماء الأحياء لتحليل البيانات البروتيومية المعقدة باستخدام أدوات مجانية وحديثة.
Mass spectrometry-based proteomics is increasingly central to early discovery and translational research, yet data complexity and lack of accessible workflows limit its broader adoption in biopharma R&D. This article demonstrates how free, vendor-agnostic computational tools enable robust interrogation and validation of public proteomic datasets, supporting hypothesis-driven research without new experimental burden. Streamlined data analysis workflows enhance predictive confidence and facilitate cross-study comparisons, directly impacting target validation and biomarker discovery pipelines.
This workflow positions mass spectrometry data analysis from early discovery through lead identification and translational research, leveraging public repositories and free computational tools.