ديسمبر 30, 2025
تظهر خلايا سرطان الثدي Hs578T التي تحمل طفرة P53 V157F تألق أعلى بشكل ملحوظ من ثيوفلافين T مقارنة بخلايا MCF7، مما يشير إلى تحسن تجمع البروتينات. تحسن قياسات التألق متعدد النقاط دقة الكشف والموثوقية في تحديد التجمعات الغنية بصفائح β، مما يؤكد أهمية طفرات p53 المعرضة للتجمع في أبحاث السرطان وتطوير استراتيجيات علاجية.
تفحص هذه الدراسة ميل التجمع للطفرة p53 V157F في خلايا سرطان الثدي وتقيم قراءة الصفائح متعددة النقاط للكشف. تشمل التحديات التجريبية الحالية الكشف الدقيق عن تجمع p53، وقياس الهياكل الشبيهة بالأميلويد، وضمان قياس متسق عبر أسطح التحليل المعتمدة على الخلايا. للبدء، خذ 10 ميكرولترات من تريبان بلو في أنبوب طرد مركزي دقيق.
أضف 10 ميكرولترات من الخلايا المعلقة في DPBS إلى نفس الأنبوب وامزج المحتويات جيدا لضمان التجانس. قم بتحميل 10 ميكرولترات من الخليط المحضر على شريحة عداد لعدد الخلايا الحية باستخدام عداد الخلايا الآلي. استنادا إلى عدد القابلية للحياة، قم بزرع 30,000 خلية صالحة لكل بئر في صفيحة زراعة تحتوي على 96 بئرا.
خصص بئرا واحدة كجهاز تحكم غير مصبوغ وخصص الآبار الثلاثة المتبقية للتلوين. زن 0.02 جرام من مسحوق ثيوفلافين T أو THT باستخدام موازن. أضف المسحوق إلى خمسة ملليتر من الماء منزوع الأيونات وامزجه جيدا حتى يذوب المسحوق تماما.
ثم أضف مكونات التلوين إلى ملليلتر واحد من DPBS. أضف محاليل مخزن THT وHoechst إلى الأنبوب وامزج بلطف لضمان التجانس. الآن أزل وسط الزراعة من كل بئر في صفيحة الزراعة ذات 96 بئرا.
أضف 100 ميكرولتر من محلول التلوين THT وHoechst المحضر إلى كل بئر صبغ، ثم 100 ميكرولتر من DPBS إلى بئر التحكم غير المصبوغ. ضع طبق الزراعة في مكان مظلم بدرجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة. استنشق أو تخلص من محلول التلوين من كل بئر بحذر دون إزعاج طبقة الخلية الأحادية.
ثم أضف 100 ميكرولتر من DPBS لكل بئر واتركه لمدة 30 ثانية. ثم تخلص من DPB. بعد تكرار خطوة الغسيل، أضف 100 ميكرولتر من DPBS الطازج إلى كل بئر.
قم بإزالة الغطاء من لوحة زراعة البئر 96 قبل قراءة إشارة الفلورسنت. ضع لوحة زراعة 96 بئر في قارئ الميكرولوحة. قس فلورة THT مع الإثارة عند 450 نانومتر ومهمة عند 490 نانومتر، وقيس فلورة هوخست 33342 مع إثارة عند 360 نانومتر ومهمة عند 460 نانومتر.
اختر منطقة القراءة المطلوبة ثم اضبط معلمات القارئ، بما في ذلك الاهتزاز لمدة خمس ثوان قبل إعادة توجيه القراءة من الأعلى وزمن دمج يبلغ 140 مللي ثانية. بعد الحصول على بيانات التألق، قم بإجراء حسابات للحصول على قيم تجميع البروتينات. وأخيرا، تطبيع شدة الفلورة THT عن طريق ضبط النسبة في خلايا MCF7 كواحدة لتكون نقطة التحكم الأساسية. تم إجراء القياسات باستخدام كل من طريقة نقطة واحدة وطريقة أربع نقاط عبر الآبار الملونة وغير الملونة في خلايا MCF7 وHs578T.
أظهرت خلايا سرطان الثدي Hs578T زيادة بمقدار 3.2 ضعف في شدة فلورية ثيوفلافين T مقارنة بخلايا MCF7 باستخدام طريقة القراءة ذات النقطة الواحدة. عند استخدام طريقة القراءة المتوسطة ذات الأربع نقاط، أظهرت خلايا Hs578T زيادة بمقدار 3.86 ضعف في فلورة ثيوفلافين T مقارنة بخلايا MCF7. كان فلورة ثيوفلافين T في خلايا Hs578T مرتفعة بشكل ثابت في جميع نقاط القياس الأربع مقارنة بخلايا MCF7.
يتيح هذا البروتوكول الكشف الدقيق عن تجميع البروتينات في السياقات الخلوية باستخدام صبغة ثيوفلافين T، مع طرق قراءة ألواح فلورية متعددة النقاط موثوقة.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تبحث هذه الدراسة في ميل البروتين p53 V157F الطافر إلى التجمع في خلايا سرطان الثدي، مع تسليط الضوء على التحديات التي تواجه الكشف الدقيق عن تجمع p53 وقياس البنى الشبيهة بالأميلويد كمياً. ويؤكد البحث على أهمية استخدام قياسات الفلورة متعددة النقاط لتحسين دقة الكشف.
يُعالج الكشف الدقيق عن طفرات p53 المعرضة للتجمع في خلايا سرطان الثدي تحدياً حرجاً في الاكتشافات المبكرة في علم الأورام، حيث يمكن للغموض الميكانيكي أن يعيق التحقق من الأهداف وتقييم المخاطر. يتيح التحديد الكمي لفلورة Thioflavin T متعدد النقاط قياساً قوياً وقابلاً للتكرار للتجمعات الشبيهة بالأميلويد، مما يدعم الثقة التنبؤية في الدراسات الوظيفية للطفرات المسرطنة. وتعزز هذه القدرة من عملية فرز المحافظ الدوائية وتدعم قرارات المضي قدماً أو التوقف في البرامج التي تستهدف الأورام الخبيثة المدفوعة ببروتين p53.
تتكامل طريقة الفلورة متعددة النقاط هذه ضمن التسلسل الممتد من مرحلة الاكتشاف إلى المرحلة قبل السريرية، مما يربط بين الدراسات الميكانيكية المبكرة والأبحاث الانتقالية حول الأهداف المعرضة للتجمع.