أبريل 3, 2026
هنا، نقدم بروتوكولا للحصول على تعليق خلية واحدة عالية الجودة من قرنيات الفأر الكاملة من خلال الهضم المتسلسل باستخدام الكولاجيناز A والتريبسين. تنتج هذه الطريقة خلايا مفردة قابلة للحياة ذات سلامة RNA عالية، مما يجعلها متوافقة مع التطبيقات اللاحقة مثل تسلسل الحمض النووي الريبي أحادي الخلية وقياس خلية التدفقy.
يقدم هذا البروتوكول بشكل أساسي طريقة للحصول على خلايا منفردة عالية الجودة من قرنيات الفئران السليمة. طريقتنا هي خلايا منفردة قابلة للحياة ذات سلامة RNA عالية، مما يجعلها متوافقة مع التطبيقات اللاحقة مثل خلية واحدة على طبقة سميكة وقطر تدفق الجسم. للبدء، ضع فأرة أنثى C57BL6 عمرها بين ستة إلى ثمانية أسابيع تم إعدادها على طاولة تشريح معقمة.
بعد شطف الجفون المغلقة ب PBS، استخدم مقص العيون لعمل شق على القطب الخلفي لكرة العين، وضع العين المعزولة بعناية في طبق بتري يحتوي على وسط ظهاري هرموني بارد جدا. بعد شطف كرة العين ثلاث مرات باستخدام 1XPBS مع 5٪ من البنسلين ستربتوميسين، استخدم مقص العيون والملاقط لعمل شق من القطب الخلفي نحو الطول القرني. افصل القرنية بلطف عن الصلبة والملتحمة على طول الحافة الليمبلية، ثم استخدم زوجين من الملقط، قم بإزالة العدسة والقزحية بالكامل.
بعد غسل نسيج القرنية ثلاث مرات باستخدام PBS، انقل النسيج النظيف إلى أنبوب جديد. أضف ملليتر واحد من خمسة ملليغرام لكل محلول كولاجناز، وقم بتقطيع الأنسجة إلى قطع بحجم حوالي 0.5 × 0.5 مليمتر باستخدام مقص العيون. حضن الأنبوب الذي يحتوي على شظايا القرنية بمحلول الكولاجيناز A في حاضنة زراعة الخلايا عند درجة حرارة 37 درجة مئوية لمدة ساعة.
افحص الأنسجة كل 10 دقائق أثناء الهضم. عندما لا تبقى شظايا كبيرة من الأنسجة، قم بعمل الطرد المركزي للعينة بحرارة 300 جرام لمدة خمس دقائق في درجة حرارة الغرفة، ثم استنشق السوبرناتينت بعناية. بعد ذلك، أعد تعليق الحبيبة في محلول 200 ميكرولتر من محلول EDTA بنسبة 0.25٪ تريبسين.
ضع الأنبوب في حاضنة زراعة الخلايا مضبوطة على 37 درجة مئوية لمدة 10 دقائق لهضم شظايا الأنسجة المتبقية. وأخيرا، استخدم ماصة P1000 مزودة برأس واسع لتسخين الخليط بلطف للحصول على تعليق خلية واحدة. قم بالطرد المركزي لتعليق الخلية كما تم شرحه سابقا، وإعادة تعليق حبيبات الخلية في PBS التي تحتوي على 0.04٪ BSA.
عند عد خلايا القرنية المعزولة باستخدام جهاز قياس الدم الخلوي، وجد أن ما مجموعه 1.05 مضروبا في 10 إلى قوة خمس خلايا تم الحصول عليها من ثماني قرنيات بمتوسط بقاء خلوي بلغ 94.6٪ ونسبة خلية واحدة تجاوزت 96.3٪، مما يؤكد ملاءمة التعليق للتطبيقات اللاحقة. أظهر تحليل التألق المناعي أن تعليق الخلايا يتكون من 83.5٪ خلايا ظهارية إيجابية لبان-CK، و13.5٪ خلايا سترومال إيجابية للقرنية، وحوالي 3٪ خلايا سلبية لكلا العلامتين. أظهر الحمض النووي الريبي المستخرج من تعليق الخلية الواحدة رقم سلامة RNA مرتفع حوالي 8.8 ونسبة RNA ريبوسومية 28S × 18S تبلغ حوالي 2.15، مما يؤكد جودة RNA ممتازة.
بعد الحصول على خلايا مفردة، يمكننا توصيف وظيفة خلايا القرنية واستكشاف العلامات السطحية. هذا المنطق هو دراسة التفاعلات بين الخلية. التحدي في هذه الطريقة هو فصل القرنية عن الأنسجة الأخرى عمليا.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تقدم هذه المقالة بروتوكولاً قوياً لعزل معلقات خلوية أحادية عالية الجودة من قرنيات الماوس الكاملة. تدمج هذه الطريقة بين التشريح الدقيق للأنسجة والهضم الإنزيمي المتسلسل، مما يسمح بتحضير خلايا مفردة حيوية مناسبة للتطبيقات اللاحقة مثل تسلسل الحمض النووي الريبي للخلية الواحدة (scRNA-seq) وقياس التدفق الخلوي. يوفر هذا البروتوكول أعداداً كبيرة من الخلايا، وحيوية ممتازة، ويحافظ على سلامة الـ RNA، مما يسهل التحليل التفصيلي للتغاير الخلوي في القرنية.
تعد المعلقات الخلوية الأحادية عالية الجودة من قرنيات الفئران ضرورية لدفع عجلة الأبحاث العينية في مرحلة الاكتشاف وتمكين التوصيف الخلوي عالي الدقة. يتناول هذا البروتوكول عقبة حرجة في تحضير خلايا أحادية حية وسليمة الحمض النووي الريبوزي (RNA) من الأنسجة العينية الكثيفة، مما يؤثر بشكل مباشر على موثوقية تحليلات الخلايا الأحادية اللاحقة. ويعزز التحضير الخلوي القوي من الثقة التنبؤية في التحقق من الأهداف ويدعم الاستمرارية الانتقالية عبر مسارات الاكتشاف وما قبل السريرية.
يدمج هذا البروتوكول بين مرحلة الاكتشاف المبكر والأبحاث قبل السريرية، مما يتيح انتقالاً سلساً من تفكيك الأنسجة إلى تحليل الخلايا المفردة والدراسات الوظيفية اللاحقة.