يونيو 23, 2026
يصف هذا البروتوكول عزل الحويصلات الصغيرة خارج الخلية من عضلات الهيكل العظمي والنخاع العظمي للفئران باستخدام الهضم الإنزيمي والكروماتوغرافيا بإزالة الحجم، مما يتيح استعادة الكسور الغنية بالحويصلات من أنسجة بنية معقدة منخفضة الإنتاج لتحليل جزيئي لاحق.
تركز أبحاثنا على عزل الحويصلات الصغيرة خارج الخلية عن عضلات الفئران ونخاع العظم لفهم كيفية تبادل الأنسجة للإشارات. يمكن تطبيق هذا البروتوكول على الدراسات المتعلقة بالشيخوخة، وتجديد العضلات، وفسيولوجيا التمارين، والدراسات الفيزيولوجية المرضية لنخاع العظم في نماذج الفئران. للبدء، ضع عينات الفخذ والساق والفأر في خزانة أمان بيولوجي.
قم بوزن أنابيب الطرد المركزي بحجم 1.5 ملليتر مسبقا ووضع علامة عليه. بعد ذلك، ثقب أسفل أنبوب بسعة 0.2 ملليلتر باستخدام إبرة معقمة عيار 16 مقيدة مثبتة عموديا على القاعدة، مما ينتج فتحة واحدة موحدة. أدخل الأنبوب المثقوب في أنبوب الطرد المركزي بوزن 1.5 ملليلتر مع تركيب محكم لتحضير إعداد الأنبوب المثقوب.
ضع عظام الساقين في طبق بترى معقم. افصل عظم الفخذ عن عظم الساق عن طريق قطع المسافة المفصلية. اقطع طرفي عظم الفخذ والساق لكشف النخاع الأحمر.
ضع العظام في أنبوب PCR المثقوب، الموضوع داخل أنبوب 1.5 ملليلتر، وأغلق التجميع باستخدام باراغليم. قم بعمل الطرد المركزي للعينة لمدة 10 ثوان في جهاز طرد مركزي على طاولة عند حوالي 8,000 جرام في درجة حرارة الغرفة. تحقق من نجاح استخراج النخاع من خلال وجود عظام بيضاء واضحة، خالية من النخاع الأحمر المتبقي في الأنبوب العلوي، والحبيبات الحمراء الداكنة والمضغوطة في أسفل الأنبوب السفلي.
ثم قم بوزن أنبوب 1.5 ملليلتر مرة أخرى لتحديد كتلة النخاع المستخرج لضمان أنه يقع ضمن النطاق المتوقع حوالي 15 إلى 30 ملليغرام لكل فأر. أضف 250 ميكرولتر من RPMI 1640 إلى كل أنبوب يحتوي على نخاع العظم وضع العينات على الثلج. أعد تعليق النخاع عن طريق التوصيل بلطف للأعلى والأسفل من 10 إلى 15 مرة باستخدام ماصة P1000 حتى يتم الحصول على تعليق متجانس دون تبقية كتل أو شظايا نسيج سليمة.
قم بطرد العينة على حرارة 300 جرام لمدة 10 دقائق عند أربع درجات مئوية لإزالة الحطام غير المهضوم، والخلايا السليمة، وقطع الأنسجة المتبقية. انقل المادة الفائقة بحذر إلى أنبوب طرد مركزي دقيق جديد بسعة 1.5 ملليلتر دون الإزعاج بالرصاصة. قم بالطرد المركزي بدفع المادة الفائقة المنقولة على 2,000 جرام لمدة 15 دقيقة لإزالة الحطام الكبير.
اجمع المادة الفائقة في أنبوب جديد وجهاز طرد مركزي جديد مرة أخرى عند 10,000 جرام لمدة 30 دقيقة عند أربع درجات مئوية. ثم اجمع على الأقل 200 ميكرولتر من المادة الفائقة النهائية في أنبوب جديد. توازن عمود كروماتوغرافيا استبعاد الحجم عن طريق تنظيفه بستة ملليتر من PBS المفلتر، مع الحفاظ على العمود وPBS عند درجة حرارة الغرفة.
اسمح للحجم الكامل أن يمر عبر العمود بالجاذبية. ثم تحميل 150 ميكرولتر من المادة الفائقة المفلترة على العمود والسماح للعينة بالدخول إلى الراتنج بالكامل. تصل النقطة النهائية عندما يصل الغضروف الهلالي السائل إلى سطح طبقة الراتنج دون أن يبقى سائل مرئي فوق الراتنج الرطب.
أضف فورا 550 ميكرولتر من PBS لبدء الغسل وجمع حجم الفراغ البالغ 700 ميكرولتر. تخلص من حجم الفراغ أو احتفظ به كجزء من الحويصلات خارج الخلية. ابدأ بجمع الجزء الغني بالحويصلة خارج الخلية فور انتهاء حجم الفراغ البالغ 700 ميكرولتر.
تأكد من جمع 850 ميكرولتر من النسيج المغني بالحويصلة خارج الخلية. لتركيز الحويصلة خارج الخلية، يتم تحميل العينة في مرشح طرد مركزي مغطى مسبقا مع حسم وزن جزيئي يبلغ 100 كيلو دالتون. قم بطرد العينة على حرارة 4,000 جرام عند أربع درجات مئوية، مع الفحص كل دقيقتين إلى ثلاث دقائق حتى الوصول إلى الحجم النهائي المطلوب.
ثم استرجع الريتنات عن طريق التوصيل اللطيف بالماصة. احتفظ بالأجزاء الغنية بحويصيرية خارج الخلية على الجليد لإجراء الفحوصات الفورية، مثل المجهر الإلكتروني الناقل. أظهر تحليل البقعة الغربية وجود حويصلات صغيرة خارج الخلية، أو علامات SEV في الكسور المبكرة.
تم تجميع الأجزاء من واحد إلى خمسة لتوصيف الحويصلات الصغيرة خارج الخلية لاحقا. غياب الكالنكسين وإشارات بروتين الغلوبولين المناعي المرتبط في هذه الكسور استبعد التلوث من الأغشية داخل الخلايا ومكونات الشبكة الإندوبلازمية. كشف المجهر الإلكتروني الناقل للأجزاء المخصبة من SEV من F1 إلى F5 عن حويصلات دائرية سليمة ذات طبقات غشائية ثنائية محددة بوضوح وأقطار أقل من 200 نانومتر.
أظهر تحليل تتبع الجسيمات النانوية للعينة المجمعة توزيع حجم أحادي النمط مركزه تحت 200 نانومتر مع متوسط قطر جسيمات يبلغ 147.8 نانومتر. كان تركيز الجسيمات المعدل إلى كتلة الأنسجة هو الأعلى في الكسور الغنية ب SEV من F1 إلى F5 عند 3.7 مضروبة في 10 لقوة ثمانية جسيمات لكل مليليتر لكل ملليغرام من النسيج، وانخفض قليلا في الأجزاء اللاحقة من F6 إلى F8 بمعدل 3.7 مضروبا في 10 إلى قوة ثمانية جسيمات لكل ملليلتر لكل ملليغرام نسيج. يتيح هذا البروتوكول للباحثين قياس حجم وتركيز والحويصلات خارج الخلايا من العضلات ونخاع العظم.
يمكن للأبحاث المستقبلية توسيع هذا البروتوكول ليشمل نماذج الأمراض واستخدام الحويصلات المعزولة لتحديد العلامات الحيوية والأهداف العلاجية.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
يفصل هذا البروتوكول سير عمل قابل للتكرار لعزل الحويصلات خارج الخلوية الصغيرة (sEVs) من أنسجة العضلات الهيكلية (SkM) ونخاع العظم (BM) لدى الفئران. تخضع العضلات الهيكلية للهضم الإنزيمي، بينما يتم معالجة نخاع العظم مباشرة، يليه عملية الطرد المركزي التفاضلي والكروماتوغرافيا باستبعاد الحجم (SEC) للحصول على أجزاء غنية بالحويصلات خارج الخلوية. تتيح هذه الطريقة عزل الحويصلات خارج الخلوية الصغيرة بنقاء عالٍ من كمية ضئيلة من الأنسجة، مما يدعم التحليلات الجزيئية والوظيفية اللاحقة.
لا يزال عزل الحويصلات خارج الخلوية الصغيرة (sEVs) من الأنسجة الصلبة، مثل العضلات الهيكلية ونخاع العظم، يمثل عقبة في اكتشاف المؤشرات الحيوية والدراسات الميكانيكية بسبب انخفاض الإنتاجية وحدوث التلوث. يتيح هذا البروتوكول عزل sEVs بنقاوة عالية وقابلية للتكرار من كميات محدودة من الأنسجة، مما يدعم التحقق من الأهداف والمسح المظهري في نماذج الأمراض العضلية الهيكلية وأمراض الدم. ومن خلال تقليل الضجيج البيولوجي وتحسين نقاوة الحويصلات، تعزز هذه الطريقة الثقة التنبؤية في تحليلات الأوميكس (omics) والمقاييس الوظيفية اللاحقة.
تندرج هذه الطريقة ضمن تسلسل الاكتشاف بدءاً من التحقق الأولي من الهدف وصولاً إلى الدراسات الميكانيكية قبل السريرية، مما يتيح عزل الحويصلات خارج الخلوية الصغيرة (sEVs) المشتقة من الأنسجة بشكل موثوق لاختبار الفرضيات وتوضيح المسارات.