所有涉及动物的实验程序均已通过当地机构动物护理委员会和JoVE兽医审查委员会的审核。
1. 透明小鼠皮肤组织的制备
注意:本研究中使用的所有小鼠均为 C57BL/6 遗传背景
- 小鼠皮肤组织的采集。
- 通过颈椎脱位法人道处死小鼠。
- 使用修剪器小心去除目标皮肤区域的毛发,注意避免损伤皮肤。
- 用磷酸盐缓冲液(PBS)中配制的70%乙醇清洗皮肤以去污。
- 用镊子提起背部颈区皮肤,并用剪刀做切口。
- 解剖获取较大面积的背部小鼠皮肤(约1.5 × 4 cm)。
- 将皮肤展平,真皮面朝下置于滤纸上,并标记样本的前后方向。
- 沿解剖所得皮肤修剪滤纸,然后将其放入盛有新配制的PBS中4%多聚甲醛(PFA)溶液的15 mL离心管中。
- 在室温下固定1小时,或在4 °C冰箱中过夜固定。
- 在15 mL离心管中用PBS洗涤皮肤2次,每次5分钟。
注意:以下步骤(1.1.10–1.1.12)为组织长期保存的可选步骤。
- 在15 mL离心管中,使用浓度递增的乙醇(25%、50%、70%)在PBS中对解剖后的皮肤进行脱水处理,每次洗涤1小时,室温操作。
- 将脱水后的皮肤保存在含PBS的70%乙醇中,置于15 mL离心管内,4 °C保存直至后续使用。
- 在透明化处理前4小时,于15 mL离心管中使用浓度递减的乙醇(70%、50%、25%、0%)在PBS中对皮肤组织进行再水化处理,每次洗涤1小时,室温操作。
- 小鼠皮肤活检组织的透明化处理
- 通过在60–70 °C加热条件下,将3.85 g尿素和3.85 g N,N,N',N'-四(2-羟丙基)乙二胺溶于5.38 mL蒸馏水中,配制CUBIC1透明化溶液。使用加热磁力搅拌器。
- 待溶液澄清并冷却至室温后,加入2.31 g聚乙二醇单对异辛基苯基醚/Triton X-100。
- 用锋利的剃须刀片将小鼠皮肤切成约0.2 × 0.5 cm大小的活检样本,并浸入装有5 mL CUBIC1透明化溶液的15 mL离心管中。为优化毛囊的可视化效果,应确保活检样本的长边沿样本的前后方向切割。
- 将离心管置于37 °C杂交炉中的旋转平台上。
- 7天后更换透明化溶液。使用前需预先配制新鲜的CUBIC1溶液。
- 7天后检查组织的透明度。如有必要,继续将活检样本保留在CUBIC1透明化溶液中,直至组织完全透明。
- 当皮肤活检样本完全透明后,移除CUBIC1溶液,并加入4 mL 1× PBS,在37 °C下洗涤组织4次,每次6小时。
- 在15 mL离心管中,用含20% w/v蔗糖的PBS溶液在37 °C下洗涤皮肤组织4小时。
- 将组织置于包埋剂OCT(Optimal Cutting Temperature Compound)中,放入15 mL离心管,在-80 °C超低温冰箱中过夜冷冻。
注意:此步骤将提高后续步骤中抗体对活检组织的渗透性。
2. 免疫荧光染色
- 将组织(步骤 1.2.9)在室温下解冻 2 - 3 小时。
- 在 15 mL 离心管中用 5 mL PBS 清洗组织,室温下振荡 8 小时,以去除 OCT 包埋剂。
- 将组织活检样本转移至 2 mL 离心管中,加入 1 mL 兔抗 Keratin14 抗体或兔抗 Ki67 抗体(均用 PBST(PBS + 0.1% Triton-X100)按 1:100 稀释),在 37 °C 培养箱中振荡孵育 3 天。
- 将组织活检样本转移至 15 mL 离心管中,用 5 mL PBST 在 37 °C 培养箱中振荡清洗 4 次,每次 6 小时。
- 将组织活检样本转移至 2 mL 离心管中,加入 1 mL Alexa594 标记的抗兔二抗(用 PBST 按 1:100 稀释),在 37 °C 培养箱中振荡孵育 3 天。
- 将组织活检样本转移至 15 mL 离心管中,用 5 mL PBST 在 37 °C 培养箱中振荡清洗 4 次,每次 6 小时。
- 将组织活检样本转移至 2 mL 离心管中,加入 1 mL DAPI(4',6-二脒基-2-苯基吲哚)核复染溶液(1:1,000 稀释于 PBST 中),在 37 °C 培养箱中振荡孵育过夜。
- 移除 DAPI 复染液,向 2 mL 离心管中加入 1 mL PBST,在 37 °C 培养箱中振荡清洗 4 次,每次 6 小时。
注意: 可选步骤:组织活检样本可在含 0.02% 叠氮化钠的 1×PBS 中避光保存,至少可保存 3 周。
3. 成像
- 配制CUBIC2透明化溶液,其中包含50% (w/v) 蔗糖、25% (w/v) 尿素、10% (w/v) 2,2′,2′′-三羟乙基氨基甲烷和0.1% (v/v) Triton X-100。
- 将皮肤组织置于2 mL离心管中,加入1 mL CUBIC2溶液,在37 °C培养箱中振荡孵育24小时。此步骤可使组织的折射率均一化。
- 检查组织的透明度。一旦组织变得透明,将整块皮肤活检样本(0.2 × 0.5 cm)沿其长边放置在玻璃盖玻片上,使毛囊的长度方向与盖玻片表面平行(#1,24 × 60 mm)。
注意: 可选步骤:经抗体染色的活检样本可在CUBIC2溶液中保存约7天;经Nile Red染色的活检样本在CUBIC2溶液中最多只能保存1天,应尽快成像。
- 制备成像室(图1).
注意: 成像室制备所需的耗材包括:蓝丁胶、橡皮泥或类似材料,以及2片盖玻片(24 × 50 mm)图1A).
- 准备两条细长的蓝色橡皮泥条(直径约 1 mm × 2 cm),以及两块盖玻片(图1B).
- 在一张盖玻片上放置蓝色橡皮泥条,预留出足够的空间用于皮肤活检图1C,步骤 3.4.3)。
- 将皮肤活检组织置于盖玻片上两层条带之间的 CUBIC2 溶液液滴中(图1C).
- 用第二块盖玻片覆盖皮肤活检样本(图1D).
- 将装有皮肤活检组织的成像腔室置于共聚焦显微镜载物台上,并移动组织至光路中。
- 使用汞灯或卤素光源以及标准的落射荧光滤光片扫描样品(例如, DAPI/GFP/CY3/CY5)以鉴定荧光标记的目标区域。
- 使用10倍和20倍物镜(NA 0.75)以及标准共聚焦荧光成像技术选取图像感兴趣区域(例如,DAPI 染色样品使用 405 nm 激光激发,并收集 425–475 nm 范围内的荧光信号;Alexa Fluor 594 或 Nile Red 染色样品使用 561 nm 激光激发,并收集 570–620 nm 范围内的荧光信号。
- 使用显微镜Z轴层扫图像采集软件,对每个感兴趣区域生成图像Z轴层扫数据例如,使用下文所述的NIS Elements成像软件4.13版本。
- 确保激光功率处于最佳状态,并选择合适的PMT高压/偏移设置以采集样品荧光。
- 打开 "ND采集" 工具栏来自 "采集控制".
- 选择 "Z系列设置" 标签(确保所有其他标签均未选中)。
- 扫描过程中,将焦距对准样品顶部并按下 "顶部" 按钮
- 聚焦于样品底部并按下 "底部" 按钮
- 输入所需的步长(或点击优化步长按钮)。
- 按压 "立即运行" 按钮。
- 将得到的Z轴层叠图像保存为单独的Tiff图像栈(每幅图像栈对应一种荧光染料)。
- 使用图像Z轴堆栈,通过3D分析软件重建感兴趣区域的三维体积例如,使用 Imaris x64 7.2.3 进行分析,具体方法如下所述。
- 启动分析软件。
- 选择 "超越" 工具栏中的按钮用于生成三维体积图像。
- 打开第一个彩色图像Z轴序列(Z-stack)例如,DAPI)。
- 使用“添加通道”工具添加额外的颜色通道,每种荧光染料对应一个通道。因此,含有 DAPI 和 Alexa Fluor 594 荧光染料的样本需要两个通道。
- 使用 "图像属性" 用于设置正确的像素(体素)尺寸(XYZ),具体参数依据上述步骤 3.7 确定。
- 使用 "显示调节" 根据需要更改通道颜色的工具(例如, 将DAPI通道设为蓝色,Alexa Fluor 594通道设为红色。
- 在图像窗口中调整三维图像的位置时,可根据需要使用计算机鼠标点击并拖动图像。
- 使用 "快照" 使用工具栏中的工具生成3D图像的屏幕截图。
- 使用 "动画" 使用工具栏中的工具生成三维样本旋转的动画。