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间皮细胞分离:一种从人网膜组织标本中分离原代间皮细胞的技术

2023年4月30日

本文内容

摘要

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来源:Peters, P. N. et al. 在人体腹膜腔的器官型培养中模拟卵巢癌播散的早期步骤。J. Vis. Exp.(2015 年)

该视频描述了从人网膜标本中分离原代人间皮细胞的方案。间皮细胞可用于建立体外卵巢癌模型,以研究卵巢癌细胞的粘附、侵袭和增殖。

方案

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所有涉及人类参与者的程序均已按照机构、国家和国际人类福利指南执行,并已由当地机构审查委员会审查。

1. 原代未转化基质细胞的分离和培养

  1. 人体组织采集和制备。
    1. 获取在腹部手术中去除的人网膜标本,2 cm3,并立即将组织浸入 RT 磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 中(图 1A)。一块 3 cm x 2 cm 的网膜通常产生 100 万个原代人间皮细胞 (HPMC) 和 200,000 个原代人成纤维细胞或正常网膜成纤维细胞 (NOF)。
    2. 收集后尽快将 PBS 离心,将组织以 0.5 x g 的浓度浸入 3 分钟(在 PBS 中< 2 小时),然后将组织转移到 50 ml 锥形管中的新鲜 20 ml PBS 中。用手术刀在直径为 15 cm 的无菌培养皿中切碎,将组织切成 5mm 3 的块(图 1B)。
  2. 原代人间皮细胞分离
    1. 为了分离 HPMC,将切碎的组织转移到 50 ml 锥形管中,等待 1 分钟,让固体块漂浮到顶部(图 1C & D)。HPMC 和红细胞 (RBC) 将存在于底部的液体中。使用移液管将液体从试管底部取出,并放入新的锥形管中。将液体以 0.5 x g 离心 3 分钟,然后从 HPMC/RBC 沉淀中吸出上清液。
      1. 重复该过程 3 次:向切碎的组织中添加 20 ml PBS,让组织上升,用移液管从底部除去液体并进入 HPMC/RBC 管,离心,并去除上清液。在所有旋转完成并吸出上清液后,沉淀将含有 HPMC 和 RBC。
    2. 将沉淀中的所有细胞接种到 75 cm2 烧瓶中,溶于 15 ml 全生长培养基(含 10% 胎牛血清 [FBS]、1% MEM 维生素 [93 mg/L]、1% MEM 非必需氨基酸 [81.4 mg/L]、1% 青霉素链霉素 [Pen-Strep、100 U/ml 青霉素和 100 μg/ml 链霉素])中。
    3. 进行二次 PBS 洗涤以分离其他 HPMC。
      1. 对于二次 PBS 洗涤,在 20 ml PBS 中以 200 rpm、37 °C 摇动剩余的实体组织 10 分钟,然后等待 1 分钟,让组织漂浮到顶部。将液体从试管底部取出到新试管中,以 0.5 x g 离心 3 分钟,然后吸出上清液。
      2. 将来自二级 PBS 洗涤液的所有 HPMC/RBC 接种在单独的 75 cm2 烧瓶中,溶于 15 ml 全生长培养基中。
    4. 为了分离任何剩余的 HPMC,在 20 ml 1:1 0.25% 胰蛋白酶 25 mM EDTA:PBS 溶液中以 200 rpm、37 °C 的速度摇动切碎的组织 10 分钟。让组织上升,将管底部的液体收集到新的 50 ml 管中,并以 0.5 x g 的速度旋转 3 分钟。
      1. 吸出上清液,将所有 HPMC/RBC 接种在单独的 75 cm2 烧瓶中,溶于 15 ml 全生长培养基中。
    5. 在潮湿的环境中,在 37°C 和 5% CO2 下培养铺板的细胞。通过在第 3 天和第 5 天加入 15 ml 全生长培养基来喂养铺板的细胞,而不去除用过的培养基。HPMC 可以在分裂前培养 5-7 天。
      1. 在所有实验中使用低传代 HPMC(直至第 2 代),以尽量减少原始表型的去分化和修饰。使用宽视场显微镜,最好配备具有塑料微分干涉对比功能的 20 倍物镜或具有相差功能的 4-20 倍物镜(显微镜上的相差滤光片)来拍摄细胞的所有图像,并使用明场中的 10 倍物镜 () 来分析免疫组织化学 3,3'-二氨基联苯胺 (DAB) 染色。
    6. 通过进行免疫组织化学确认 HPMC 是立方体并表达细胞角蛋白 8 和波形蛋白(图 2A、C、E)。

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结果

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图 1.原代人网膜细胞的分离。(A) 在手术时在 PBS 中收集一块网膜并运送到实验室。将组织以 0.5 x g x 3 分钟沉淀并转移至新鲜 PBS 中。(B) 将网膜片转移到 10 cm 培养皿中,用 PBS 洗涤,用手术刀将网膜切成小块 (0.5 cm3)。(C-D)使用 25 ml 血清移液管收集组织块并转移到 50 ml 锥形管中以分离 HPMC。从管中取出PBS,并在37°C下从PBS中沉淀0.5 x g HPMC。(MC,间皮细胞,红细胞,红细胞,Fib,成纤维细胞)(E)与透明质酸酶和III型胶原酶孵育后,从剩余的网膜组织中分离NOF。该图像显示了消化 6...

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材料

<表格border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"> 本文使用的材料清单 姓名 公司 目录编号 评论 PBS 系列 Fisher Scientific 公司 SH3001304 单刃剃须刀片 Fisher Scientific 公司 12-640 15 厘米培养皿 BD生物科学公司 353025 胎牛血清 (FBS) Life Technologies 公司 16000044_3616914956 含 L-谷氨酰胺的 DMEM 康宁 10-013-CV MEM 维生素 康宁 25-020-氯 MEM 非必需氨基酸 康宁 25-025-CI 青霉素-链霉素 康宁 30-002-CI 振动筛 赛默飞世尔 MaxQ 4450 系列 离心机 Eppendorf 埃本多夫 5702 元 孵化器 赛默飞世尔 Forma 系列 II 水套式 CO2 培养箱 型号 3100 T-75 培养瓶 BD生物科学公司 353136 T-175 培养瓶 BD生物科学公司 353112 移液器吸头 瑞宁 P2、P10、P20、P200 和 P1000 显微镜 蔡司 Axiovert 200 米 抗整合素 αVβ3 抗体,克隆 LM609 EMD 米利波尔 MAB1976 测试版 1 Oncosynergy 作系统2966 Alpha 5 [CD49e] ID Pharmingen 555615 贝塔 4 [CD104] EMD 米利波尔 MAB 2058 (英文) 移液器吸头 康宁 带滤芯的吸头 P2、P10、P20、P200 和 P1000 玻璃烧瓶

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