来源:Anker, J. F. 等. 雄激素依赖性和去势抵抗性前列腺癌的生物发光与荧光同基因小鼠原位模型。J. Vis. Exp. (2018)
在本视频中,我们演示了将前列腺癌细胞注射到小鼠前列腺内的操作步骤。原位小鼠模型可用于在非侵入性且具有临床相关性的环境中研究疾病的发生机制以及对治疗方案的反应。
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2023年4月30日
来源:Anker, J. F. 等. 雄激素依赖性和去势抵抗性前列腺癌的生物发光与荧光同基因小鼠原位模型。J. Vis. Exp. (2018)
在本视频中,我们演示了将前列腺癌细胞注射到小鼠前列腺内的操作步骤。原位小鼠模型可用于在非侵入性且具有临床相关性的环境中研究疾病的发生机制以及对治疗方案的反应。
所有涉及动物模型的操作均已被当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会审核。
1. 术前小鼠准备
注意:手术前至少将家鼠饲养于大学动物饲养设施中一周,以确保其充分适应并尽量减少动物应激。步骤 1.1–1.6 由外科医生的助手完成。所有后续手术步骤均由外科医生使用无菌手套和无菌器械,遵循无菌技术进行。
2. 前列腺内注射
注意:所有手术步骤均须在无菌条件下进行。调节显微镜、小鼠体位或任何其他非无菌物品时,必须由额外人员协助完成。
3. 小鼠术后护理
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图1: 前列腺前叶、引流淋巴结及前列腺内细胞注射的代表性技术。图示(A) 右侧前列腺前叶(黑色,*)、附着的右侧精囊(白色)、右侧睾丸及脂肪垫(绿色)和膀胱(黄色);(B) 双侧前列腺引流的腹主动脉旁淋巴结(橙色);(C) 显微解剖剪、格拉夫镊子、格拉夫组织镊、带剪线器的持针器,以及装有28号针头的50 µL注射器(从左到右);(D) 正中切口;(E) 精囊和前列腺前叶的外翻;(F) 前列腺内注射;以及(G) 前列腺前叶...
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| Myc-CaP 细胞系 | ATCC | CRL-3255 | 使用前需验证无支原体污染 |
| 显微解剖剪 | Roboz | RS-5910 | |
| Graege 组织镊 | Roboz | RS-5135 | |
| Graefe 组织镊 | Roboz | RS-5150 | |
| Olsen-Hegar 带剪刀功能的持针钳<br/> | FST | 12002-12 | |
| 50 µL 注射器 705 RN SYR | Hamilton | 7637-01 | 使用环氧乙烷气体灭菌 |
| 28 号针头 小接头 RN H | Hamilton | 7803-02 | 尖端类型 4,角度 45°,长度 0.75 英寸。使用环氧乙烷气体灭菌 |
| RPMI | Gibco | 18875-093 | |
| FBS | Gibco | 10437-028 | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | 15140-122 | |
| PBS | Gibco | 14190-144 | |
| Matrigel 基底膜<br/> 基质,无酚红,无 LDEV | Corning | 356237 | 使用前在冰上解冻,或于 4°C 过夜<br/> |
| 异氟烷 | Henry Schein | 11695-0500-2 | 由美国西北大学比较医学中心(CCM)获取 |
| 盐酸布托啡诺 0.3<br/> mg/mL | 12496-0757-5 | 管制药品,由美国西北大学 CCM<br/> 获取 | |
| 26 5/8 号注射器 | BD | 309597 | 用于美洛昔康和布托啡诺注射 |
| 眼用润滑软膏 | Akron | 17478-162-35 | |
| 聚维酮碘外科消毒液(7.5%) | Purdue Products | 67618-151-16 | |
| 无菌不粘敷料垫 | Moore Medical | 10775 | |
| 无菌酒精擦拭巾 | Fisher Scientific | 22-363-750 | |
| 手术显微镜 Stemi DV4 | Zeiss | ||
| 无菌聚酯棉签 | Puritan | 25-806 1PD | |
| 5-0 Vicryl 可吸收反向切割缝合针线 | eSutures | J493G | |
| 4-0 尼龙单丝不可吸收反向切割缝合针线 | eSutures | 699H | |
| 玻璃珠灭菌器 | 细科学工具公司(Fine Science Tools) | 18000-45 | |
| 无菌生理盐水 0.9% 氯化钠 | Hospira | 0409-4888-02 |