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方法文章

膀胱肿瘤类器官模型:将膀胱类器官原位移植至受体小鼠膀胱的方法

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2023年4月30日

本文内容

摘要

来源:Kim, Y. . 小鼠膀胱肿瘤类器官的培养、操作及原位移植J. Vis. Exp. (2020)

在本视频中,我们描述了将培养的膀胱肿瘤类器官原位移植到小鼠膀胱中,以研究器官微环境对肿瘤发生发展的作用。

方案

所有涉及动物模型的操作均已被当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会审核。

1. 膀胱肿瘤类器官的传代培养

注意:建议在膀胱肿瘤类器官直径达到100–150 µm时进行传代。

  1. 在含有肿瘤类器官的24孔板的类器官培养基中加入500 µL胶原酶/分散酶。用移液器反复吹打基底膜基质和培养基。在37 °C孵育20分钟,然后将细胞收集至15 mL离心管中。
    注意:在显微镜下观察从基底膜基质中分离的类器官。如果类器官未从基底膜基质中脱离,可延长孵育时间或增加吹打次数。
  2. 加入5 mL预热的DMEM,于4 °C以400 × g离心3分钟,并吸除上清液。
  3. 用1 mL预热的0.25%胰蛋白酶-EDTA和10 µM Y-27632重悬沉淀。在37 °C水浴中孵育5分钟。剧烈吹打细胞数次,然后加入5 mL含10%胎牛血清(FBS)的DMEM以中和胰蛋白酶。
  4. 于4 °C以400 × g离心3分钟,并吸除上清液。
  5. 用1 mL预热的类器官培养基重悬沉淀,并计数单个肿瘤细胞的数量。

2. 膀胱类器官的原位移植(图1A)

  1. 准备膀胱肿瘤类器官用于原位移植
    1. 移植前,按照上述方法将膀胱肿瘤类器官培养 5–7 天。
    2. 在含有肿瘤类器官的 24 孔板中加入 500 µL 胶原酶/分散酶溶液,反复吹打基底膜基质和培养基。于 37 °C 孵育 20 分钟,将细胞收集至 15 mL 离心管中。
    3. 加入 5 mL 预热的 DMEM 培养基,于 4 °C 以 400 × g 离心 3 分钟,吸除上清液。
    4. 用 1 mL DMEM 重悬沉淀,将悬液转移至 90 mm 培养皿中。
    5. 在显微镜下,使用 P200 微量移液器挑取 10–100 个肿瘤类器官,收集至预冷的微量离心管中。
    6. 于 4 °C 以 400 × g 离心 3 分钟,小心弃去上清液。
    7. 将细胞沉淀置于冰上保存,直至小鼠准备就绪进行手术。
  2. 膀胱壁黏膜下移植
    1. 实验前至少 1 周准备 8 至 10 周龄的雄性裸鼠(CAnN.Cg-Foxn1nu/Crl),使其适应新环境。术前 24 小时皮下注射恩诺沙星(5 mg/kg)。
    2. 用肥皂和水清洁操作台面。手术前对所有手术器械进行高压灭菌,并在无菌条件下使用无菌器械进行操作。
    3. 将 29 G 胰岛素注射器、移液器吸头和基底膜基质置于冰上。麻醉前皮下注射酮洛芬(5 mg/kg)。
    4. 在诱导舱中使用 4% 异氟烷麻醉小鼠。达到全身麻醉后,将小鼠仰卧位固定,并通过面罩吸入 2% 气化异氟烷维持麻醉。
      注意:若麻醉时间超过 30 分钟,需使用棉签将眼膏涂抹于双眼,防止角膜干燥。
    5. 使用无菌纱布蘸取聚维酮碘消毒,再用 70% 乙醇擦拭。每次更换新的纱布或棉签,重复此步骤 3 次。
    6. 使用一次性无菌手术巾覆盖肛门及手术区域。
    7. 在解剖显微镜下放大视野,使用无菌手术剪在下腹正中腹壁皮肤和肌层做一小的横向切口(小于 1.5 cm)。将膀胱从腹腔中暴露,并用生理盐水浸湿的棉签支撑。
      注意:若膀胱充满尿液,可轻压膀胱以适度减压。
    8. 将类器官沉淀重悬于 80 µL 含 50% 高浓度基底膜基质的类器官培养基中(表 1 和 材料表)。
    9. 在解剖显微镜下,使用 29 G 胰岛素注射器将类器官悬液注射至膀胱顶部前侧。
    10. 使用抗菌可吸收缝线缝合腹壁内层,再用 4-0 尼龙缝线缝合外层。用聚维酮碘和 70% 乙醇对术区进行消毒。
    11. 术后将小鼠置于红外线照射器下恢复 10–15 分钟。持续监测直至其恢复意识和自主活动能力。
    12. 术后第一天检查小鼠的一般状况及吻合口有无渗漏。术后连续 3 天每日皮下注射酮洛芬(5 mg/kg),术后连续 10 天每日皮下注射恩诺沙星(5 mg/kg)。
    13. 当切口愈合后(术后 10–14 天),拆除缝线。在类器官注射后 2–3 周内监测小鼠膀胱肿瘤的生长情况。
    14. 若观察到膀胱肿瘤生长,采用二氧化碳吸入法处死小鼠,并完整取出膀胱肿瘤组织。用冷 DPBS 冲洗组织(图 1B)。
    15. 为分析膀胱肿瘤组织学特征,对石蜡包埋组织切片进行苏木精-伊红(H&E)染色(图 1B)。
小鼠膀胱肿瘤类器官培养基
高级DMEM/F-12(基础培养基)10 mM HEPES(pH 7.4)
10 mM 烟酰胺0.5x 无血清添加剂
2 mM L-丙氨酰-L-谷氨酰胺二肽1% 青霉素/链霉素
1 mM N-乙酰-L-半胱氨酸50 ng/mL 小鼠表皮生长因子
1 µM A 83-01

表1:膀胱肿瘤类器官培养基的成分。

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结果

膀胱肿瘤类器官过程;示意图显示移植到裸鼠,涉及孵育。
图 1:膀胱肿瘤类器官的原位移植。A)膀胱肿瘤类器官原位移植至裸鼠的示意图。(B)接受膀胱肿瘤类器官原位移植的小鼠膀胱及其H&E染色切片的代表性图像。中间图中框选区域的放大视图显示在左侧图中。比例尺 = 500 µm。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
15 mL 锥形管 SPL 50015
24 孔板 Corning 3526
29 G 1/2 胰岛素注射器 SHINA B299473538
50 mL 锥形管 SPL 50050
A8301 Tocris 2939 储存浓度:25 mM
无水乙醇 Daejung 4023-2304
可吸收缝合线 Henry Schein 039010
高级 DMEM/F-12 Thermo 12634028
CAnN.Cg-Foxn1nu/Crl(裸鼠) Charles River 194
I 型胶原酶 Thermo 17100017 储存浓度:20 mg/mL
II 型胶原酶 Thermo 17100015 储存浓度:20 mg/mL
胶原酶/分散酶 Sigma 10269638001 储存浓度:1 mg/mL
DMEM(Dulbecco 改良最低必需培养基) Gibco 11965-118
DMSO(二甲基亚砜) Sigma D8418
DPBS(Dulbecco 磷酸盐缓冲液) Welgene LB 001-02
生长因子减少型 Matrigel(GFR) Corning 354230 用于板中类器官培养
高浓度 Matrigel(HC) Corning 354248 用于类器官移植
1.5 mL 微量离心管 Axygen MCT-150-C
剃须刀片
生理缓冲液 JW Pharmaceutical
胰蛋白酶-EDTA(0.25%) Gibco 25200072
超速离心管 Beckman Coulter 331372
Y-27632 二盐酸盐 Abmole M1817 储存浓度:10 mM

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