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生成肾细胞癌模型:通过肾内植入癌细胞开发原位 RCC 小鼠模型的方案

2023年4月30日

本文内容

摘要

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来源:Murphy, KA 等人 转移性肾细胞癌的同基因小鼠模型,用于临床前治疗的定量和纵向评估。J. Vis. Exp. (2017 年)

在本视频中,我们开发了肾细胞癌的原位小鼠模型。该模型导致注射肾脏中可重复的原发性肿瘤和肺部转移性肿瘤,从而可以评估疾病进展和治疗。

方案

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1. 细胞植入

要在肾内植入 Renca 细胞,请在 Hank 平衡盐溶液 (HBSS) 中以 2 x 106 个细胞/mL 的浓度将 Renca 细胞制备到单细胞悬液中。

  1. 使用 HBSS 中的 0.25% 胰蛋白酶从组织培养瓶中去除贴壁的 Renca 细胞。~5 分钟后,向培养瓶中加入完全 RPMI 以中和胰蛋白酶,并将细胞转移到离心管中进行洗涤。在 25 °C 下以 300 相对离心 g 力 (rcf x g) 离心细胞 5 分钟。
  2. 倒出上清液并将细胞重悬于 HBSS 中。使用血细胞计数器对细胞进行计数,并用 HBSS 调节体积以产生 2 x 106 个细胞/mL。
  3. 将细胞吸入装有 18 号针头的 1 mL 注射器中,以防止细胞受到剪切应力。在注射肿瘤细胞之前,用 18 号针头更换 28 号针头。注射 0.1 mL 将 2 x 105 个细胞输送到肾脏中。

2. 手术区域准备

  1. 通过在加热垫上放置无菌手术单,在生物安全柜中准备无菌手术区域。收集所有用品,包括镊子、手术刀、剪刀、滴眼液、5% 聚维酮碘消毒剂和无菌纱布。使用前对所有仪器进行高压灭菌。
  2. 使用无菌尖端技术进行手术。使用珠子灭菌器对动物之间的器械进行再消毒。戴无菌手套、穿实验服和戴口罩。

3. 动物准备

  1. 根据机构指南,用氯胺酮/甲苯噻嗪(分别为 87.5 mg/kg 和 12.5 mg/kg,ip)麻醉小鼠。通过执行脚趾捏来确定麻醉深度。
  2. 当动物被认为没有反应时,通过拔 (用手指) 或剃须 (使用剪子) 皮毛来准备 Balb/c 小鼠的注射部位(例如,左侧)。
  3. 将小鼠从手术准备区域(例如,笼子)移动到手术区域,并在眼睛上涂抹兽医软膏以防止干燥。用 5% 聚维酮碘消毒剂充分擦拭准备好的切口部位。
  4. 将盐酸布比卡因(0.1 mL 2.5 mg/mL 溶液,sc)注射到将要做切口的区域作为术前镇痛。
  5. 使用无菌手术刀或剪刀小心地在动物的左侧侧面做一个切口(~1.0 至 1.5 厘米),以免穿透腹膜。用无菌剪刀将真皮与腹膜分开。用无菌棉纱布轻拍切口部位以去除任何血液。
  6. 双手握住鼠标,用左手握住头部,用右手支撑侧翼。
  7. 通过腹膜识别脾脏,然后用右手的一根手指从下面触诊小鼠;现在应该通过腹膜可以看到肾脏。牢牢抓住动物,在腹膜和肾脏中提供张力。
  8. 让第二个人使用装有 1 号针头的 1 mL 注射器将肿瘤细胞(在第 1.2 节中制备)通过完整的腹膜注射到肾脏中心。缓慢输送 0.1 mL (2 x 105) 细胞。注射细胞后,将针头固定 5-10 秒以减少细胞回流。重要的是要注意在此步骤中需要格外小心,因为注射细胞的人会将针头靠近拿着鼠标的人的手指。
  9. 取下针头并用一层薄薄的氰基丙烯酸酯组织粘合剂闭合切口。
  10. 用无菌纸巾将动物放回干净的笼子中。让动物在加热垫上恢复。在恢复期间,不要让动物无人看管。在动物直立和胸骨之前,不要将动物放回标准饲养条件。在使用实验动物的所有程序中遵循机构指南。

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材料

<表格border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"> 本文使用的材料清单 姓名 公司 目录编号 评论 人工泪液眼药膏 阿科恩 NDC 17478-162-35 Vetbond 组织胶粘剂 3M 公司 CBGBIW011019 优碘溶液(聚维酮碘,5%) NDC 普渡产品公司 67618-155-32 0.25% 马卡因(盐酸布匹伐因注射液) 赫升瑞 0409-1587-50 加热垫 阳光 BD 注射器 309659 纱布 冒险 908291 氯胺酮 凤凰制药 NDC 57319-609-02 甲苯噻嗪 阿科恩 NDC 邮编:59399-111 Hank's 平衡盐 西格玛-奥德里奇 H2387 剪刀 钳子 伦卡 ATCC 编号 CRL-2947

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Renca

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