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循环游离DNA(cfDNA)的分离:一种基于二氧化硅膜的方法从癌症患者血浆中提取cfDNA 关键词:循环游离DNA,cfDNA,血浆,癌症,二氧化硅膜,提取

2025年7月8日

本文内容

摘要

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来源:Palande, V. . 癌症患者血浆样本中游离DNA的检测J. Vis. Exp. (2020)

本视频介绍了一种基于二氧化硅膜的方法,用于从人血浆样本中分离循环游离DNA(cfDNA)。cfDNA是癌症诊断和评估的一种有前景的生物标志物。 

方案

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所有涉及人类受试者的实验程序均按照机构、国家及国际有关人类福利的指南进行,并已通过当地机构审查委员会的审核。

1. 从 1 mL 血浆中纯化循环游离 DNA

注意:此步骤使用商业试剂盒进行(参见材料表)。所有缓冲液均由试剂盒提供。

  1. 缓冲液和试剂的准备
    注意:切勿将酸性溶液或漂白剂直接加入样本制备废液中。裂解缓冲液、结合缓冲液和洗涤缓冲液-1 中含有的胍盐,若与漂白剂或酸混合,可能产生高反应性化合物。
    1. 结合缓冲液:将 300 mL 结合缓冲液浓缩液与 200 mL 100% 异丙醇混合,配制成 500 mL 工作浓度的结合缓冲液。室温保存。
      注意:结合缓冲液可促进循环核酸与硅胶膜的最佳结合。500 mL 结合缓冲液足以分别处理 1、2、3、4 或 5 mL 血浆样本各 276、138、92、69 或 55 个,并可在室温下稳定保存 1 年。
    2. 洗涤缓冲液-1:将 19 mL 洗涤缓冲液-1 浓缩液与 25 mL 96–100% 乙醇充分混合,配制成 44 mL 工作浓度的洗涤缓冲液-1。室温保存。
      注意:洗涤缓冲液-1 可去除结合在硅胶膜上的杂质。44 mL 工作浓度的洗涤缓冲液-1 足以处理约 73 个 1/2/3/4/5 mL 血浆样本,并可在室温下稳定保存 1 年。
    3. 洗涤缓冲液-2:将 13 mL 洗涤缓冲液-2 浓缩液与 30 mL 96–100% 乙醇充分混合,配制成 43 mL 工作浓度的洗涤缓冲液-2。室温保存。
      注意:洗涤缓冲液-2 可去除结合在硅胶膜上的杂质。43 mL 工作浓度的洗涤缓冲液-2 足以处理约 56 个 1/2/3/4/5 mL 血浆样本,并可在室温下稳定保存 1 年。
    4. 向含有 310 μg 冻干载体 RNA 的离心管中加入 1,550 μL 洗脱缓冲液,配制成浓度为 0.2 μg/μL 的载体 RNA 溶液。充分溶解载体 RNA 后,将其分装为适当体积的分装液,于 -30 °C 至 -15 °C 保存。分装液冻融次数不得超过 3 次。按照表 1所示,将洗脱缓冲液中重悬的载体 RNA 加入裂解缓冲液中。
      注意:由于载体 RNA 无法直接溶解于裂解缓冲液中,需先在洗脱缓冲液中溶解,再加入裂解缓冲液。首先,当样本中目标分子含量极低时,载体 RNA 可增强核酸在硅胶膜上的结合效率;其次,大量载体 RNA 的存在可降低 RNA 降解的风险。
  2. 开始提取前,将离心柱和样本恢复至室温,必要时用无菌磷酸盐缓冲液(PBS)将样本体积调整至 1 mL。预热两个水浴锅或加热块,分别放置 50 mL 离心管和 2 mL 收集管,温度分别设定为 60 °C 和 56 °C。
  3. 向一个 50 mL 离心管中加入 100 μL 蛋白酶 K、1 mL 血浆以及 0.8 mL 含有 1.0 μg 载体 RNA(按步骤 1.1.4配制)的裂解缓冲液。盖紧离心管盖,脉冲式涡旋振荡 30 秒,确保管内液体形成明显涡流。充分混匀对有效裂解至关重要。
    注意:涡旋振荡后应立即进入步骤 1.4,不得延迟。
  4. 将溶液在 60 °C 下孵育 30 分钟。
  5. 打开管盖,向管中加入 1.8 mL 结合缓冲液,盖上管盖后脉冲式涡旋振荡 15–30 秒,充分混匀。
  6. 将所得混合液置于冰上孵育 5 分钟,然后将硅胶膜离心柱插入连接真空泵的真空装置中。随后,将一个 20 mL 管延长器牢固插入敞开的离心柱中,以防止样本泄漏。
  7. 小心将孵育后的混合液倒入离心柱的管延长器中,开启真空泵。待所有裂解液完全通过离心柱后,关闭真空泵,将压力释放至 0 mbar,取下并弃去管延长器。
    注意:为避免交叉污染,应小心弃去管延长器,防止其内容物溅到相邻离心柱上。
  8. 将离心柱从真空装置中取出,插入收集管中,在室温下以 11,000 x g 离心 30 秒,以去除残留的裂解液。弃去穿流液。
  9. 向离心柱中加入 600 μL 洗涤缓冲液-1,在室温下以 11,000 x g 离心 1 分钟,弃去穿流液。
  10. 向离心柱中加入 750 μL 洗涤缓冲液-2,在室温下以 11,000 x g 离心 1 分钟,弃去穿流液。
  11. 向离心柱中加入 750 μL 乙醇(96–100%),在室温下以 11,000 x g 离心 1 分钟,弃去穿流液。
  12. 将离心柱放入一个洁净的 2 mL 收集管中,以 20,000 x g 离心 3 分钟。
  13. 将离心柱放入一个新的 2 mL 收集管中,打开管盖,在 56 °C 下孵育 10 分钟,彻底干燥膜组件。
  14. 将离心柱放入一个洁净的 1.5 mL 洗脱管中。向离心柱膜中心加入 20–150 μL 洗脱缓冲液,盖上管盖,在室温下孵育 3 分钟。
    注意:确保洗脱缓冲液已平衡至室温。若使用少于 50 μL 的洗脱缓冲液,应小心将其加至膜中心,以确保结合的 DNA 完全洗脱。洗脱体积并非固定,可根据下游应用调整。回收的洗脱液最多可达 5 μL,且通常少于加入离心柱的洗脱体积。
  15. 将回收的洗脱液在微量离心机中以 20,000 x g 离心 1 分钟,以完成核酸的洗脱,并于 -20 °C 保存。
样本编号裂解缓冲液 (mL)洗脱缓冲液中的载体RNA (μL)
10.95.6
21.811.3
32.616.9
43.522.5
54.428.1
65.333.8
76.239.4
8745
97.950.6
108.856.3
119.761.9
1210.667.5
1311.473.1
1412.378.8
1513.284.4
1614.190
171595.6
1815.8101.3
1916.7106.9
2017.6112.5
2118.5118.1
2219.4123.8
2320.2129.4
2421.1135

表1. 处理1 mL血浆样本所需的裂解缓冲液和载体RNA(溶于洗脱缓冲液中)的体积。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
Agilent 高灵敏度 DNA 试剂盒Agilent Technologies, Inc.5067-4626高灵敏度 DNA 检测试剂常用于下一代测序文库的样本质量控制。
cf-DNA/cf-RNA 保存管Norgen Biotek Corp.63950Norgen 的 cf-DNA/cf-RNA 保存管是封闭式真空塑料管,用于在储存和运输过程中采集并保存人全血样本中的游离 DNA(cfDNA)、循环肿瘤 DNA、游离 RNA(cf-RNA)以及循环肿瘤细胞。
QIAamp 循环核酸提取试剂盒Qiagen55114QIAamp 循环核酸提取试剂盒可高效纯化来自人血浆、血清及其他无细胞体液中的循环核酸。
QIAvac 24 Plus 真空抽滤装置Qiagen19413QIAvac 24 Plus 真空抽滤装置专为并行处理 QIAGEN 离心柱的真空操作而设计。
QIAvac 连接系统Qiagen19419与 QIAvac 连接系统配合使用时,QIAvac 24 Plus 真空抽滤装置可用作流穿系统。含有潜在感染性物质的样本流穿液将被收集至独立的废液瓶中。
QIAvac 连接系统Qiagen19419与 QIAvac 连接系统配合使用时,QIAvac 24 Plus 真空抽滤装置可用作流穿系统。含有潜在感染性物质的样本流穿液将被收集至独立的废液瓶中。
其他材料
50 mL 离心管
碎冰
乙醇(96–100%)
56 °C 的加热块或类似设备(可容纳 2 mL 收集管)
异丙醇(100%)
微量离心机
磷酸盐缓冲液(PBS)
移液器(可调式)
无菌移液器吸头(建议使用带气溶胶屏障的吸头,以防止交叉污染)
可容纳 50 mL 离心管且温度可达 60 °C 的水浴锅或加热块

重印与许可

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标签

DNA K RNA

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