所有涉及动物模型的操作均已经过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。
1. 脊髓的采集
注意:所有器械均应进行高压灭菌(135 °C、30 psi,4 次循环,每次 7 分钟)以确保无菌。
- 将1至3日龄的C57BL/6小鼠幼崽置于异氟烷麻醉舱中实施安乐死。在动物停止活动后等待30秒,并轻捏腿部以确认无反应。
- 将小鼠俯卧固定,使用剪刀分离头部与躯体。
- 将小鼠的后肢或尾部及前肢固定在操作台上,使背部朝向操作者。
- 使用弯头虹膜剪剪除皮肤。
- 从髋部上方的腰段开始切断脊髓,并沿胸腔两侧剪开,将脊柱部分与躯体分离。
注意:此步骤需小心分离脊髓与内脏器官,以避免意外损伤其他组织(图1a)。
- 将组织依次浸入三个盛有5 mL经0.2 μm滤膜过滤除菌的磷酸盐缓冲液(PBS)的10 cm培养皿中,每皿洗涤10秒,以去除多余组织。
- 将装有5 mL过滤除菌PBS的22G针头和注射器插入脊柱尾端,向头侧冲洗,使脊髓冲出并落入第四个培养皿中(图1b)。
- 将脊髓收集至含有5 mL HABG(表1)的15 mL离心管中,置于冰上。操作时注意避免挤压损伤脊髓。
- 对同窝每只幼崽重复步骤1.1–1.8。
注意:理想情况下,每根脊髓的处理时间应少于30分钟,以确保获得健康的神经元分离效果。
2. 分离神经元
注意:以下步骤应在超净工作台中进行。操作者应熟悉基本的无菌技术。
- 组织切碎
- 取含有脊髓的离心管,轻轻振荡以悬浮组织。
- 将管中的组织倒入60 mm玻璃培养皿中,用刀片切碎,制成约0.5 mm大小的细小组织块。
- 用宽口移液管将组织转移至含有5 mL HABG的15 mL离心管中。
- 将离心管置于30 °C水浴中30分钟,使细胞在此温度下达到平衡。保持细胞在轻微振荡条件下,以确保其悬浮于液体中。
注意:此步骤旨在避免细胞从冰上直接转移到消化液时受到温度冲击。将细胞维持在30 °C有助于降低因在37 °C时代谢增强而导致的细胞死亡。
- 制备消化液(表1)。
- 制备密度梯度(表1)。
- 按照 表1中所述,在4个独立的15 mL离心管中分别制备4层梯度液。
- 从每一层中各取1 mL,依次加入一个新的15 mL离心管中。从底部开始加入第1层,依次叠加至顶部的第4层。添加过程中避免扰动各层。
- 清洗PDL包被的培养板。先用无菌水清洗数分钟,然后去除残留水分,并静置干燥1小时。
- 将组织转移至消化液中。
- 从30 °C振荡水浴中取出含组织的离心管,静置数分钟使组织沉降。
- 从37 °C水浴中取出消化液管,用鲁尔锁接头注射器吸取消化液。
- 吸除含组织管中的过量HABG。
- 在注射器上安装鲁尔锁接头的0.2 μm滤器,将消化液加入含组织的离心管中。
- 将离心管置于30 °C水浴中30分钟。保持轻微振荡,使细胞悬浮于液体中。
注意:必须避免细胞在消化液中停留过久或温度过高,否则可能导致过度消化,使组织悬浮于胶状混合物中。
- 在此期间,包被层粘连蛋白(laminin)。
- 进行吹打处理(即 将细胞从组织中分离)。
- 从30 °C振荡水浴中取出离心管,静置数分钟使组织沉降。
- 吸除多余的消化液。
- 用2 mL HABG重悬组织。
- 使用细口移液管,吹打10次,持续45秒。
注意:这可能是最关键的一步,若操作不当会显著降低细胞得率。
- 将组织吸入移液管后立即全部排出。
- 避免引入空气,否则会显著降低活细胞得率。
注意:理想的移液管为9英寸玻璃移液管。移液管尖端应经火焰抛光以消除粗糙表面,随后进行硅化处理:将移液管置于二氯二甲基硅烷(DMDCS)与氯仿按1:20配制的溶液中过夜。之后取出移液管,使其自然晾干,再进行高压灭菌以实现灭菌。
注意:DMDCS和氯仿高度易燃,硅化过程必须在通风橱中进行。
- 吸出上层2 mL上清液,转移至新标记为“收集”的15 mL离心管中。
- 重复步骤2.7.3–2.7.5两次(最终细胞收集管中应有6 mL液体)。
- 缓慢将收集管中的内容物转移至在步骤2.2中制备好的梯度管中,注意避免破坏梯度结构。
- 此时,从冰箱中取出先前配制的Neurobasal培养基(表1),放入37 °C水浴中预热。
- 纯化神经元。
- 将梯度管在22 °C下以800 x g 离心15分钟。
- 用移液管收集目标层(图2),转移至新的15 mL离心管中。若需最高纯度的神经元分离(即 >90%),收集第3层;若追求更高得率而接受较低纯度(即 >70–80%),则收集第2层和第3层。
- 加入5 mL HABG以稀释密度梯度液。
- 在22 °C下以200 x g 离心2分钟。
- 弃去上清液,用5 mL HABG重悬沉淀,并轻弹管底以充分悬浮细胞。
- 在22 °C下以200 x g 离心2分钟。
- 弃去上清液,用3 mL Neurobasal培养基重悬细胞,并轻弹管底使细胞重新悬浮。
| 培养基 | 保存条件 | 成分 | 制备方法 |
| HABG | 4 °C/24小时 | | 100 mL | - 将B27在4 °C冰箱中过夜解冻
- 过滤除菌(0.22 µm) |
| Hibernate A | 97.8 mL |
| B27 [2%] | 2 mL |
| GlutaMAX [0.5 mM] | 0.25 mL |
| Neurobasal 培养基 | 4 °C/1周 | | 100 mL | - 将B27在4 °C冰箱中过夜解冻
- 过滤除菌(0.22 µm)
- 分装为每管50 mL至50 mL离心管中(4 °C保存) |
| Neurobasal A | 97 mL |
| B27 [2%] | 2 mL |
| GlutaMAX [0.5 mM] | 0.25 mL |
| Pen/Strep [1%] | 1 mL |
| 消化培养基 | 分离当天使用 | | 10 mL | - 剧烈震荡混匀
- 置于37°C水浴中30分钟(建议在使用前30分钟配制)
- 过滤除菌(0.22 µm) |
| HA-Ca | 10 mL |
| Papain | 25 mg |
| GlutaMAX [0.5 mM] | 0.025 mL |
| 密度梯度液 | 分离当天使用 | | 1个梯度 | |
| 层级 | OptiPrep | HABG |
| (0.13 mL) | (5.29 mL) |
| 1 底层 | 0.26 mL | 1.24 mL |
| 2 | 0.19 mL | 1.31 mL |
| 3 | 0.15 mL | 1.35 mL |
| 4 顶层 | 0.11 mL | 1.39 mL |
表1:本实验方案中所用培养基与溶液的配制。