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基于拭子的结膜共生细菌分离技术:一种从小鼠模型结膜中分离共生细菌的方法

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2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Smith-Page, K. 小鼠结膜共生菌的分离与鉴定J. Vis. Exp. (2021)

本视频介绍了一种基于拭子的技术,用于从眼结膜中分离可存活的共生细菌。该技术可用于分析结膜共生细菌微生物组,这些微生物组在抵御病原体方面发挥着防御作用。

方案

所有涉及动物模型的操作均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。

1. 眼部拭子制备、操作区域设置、小鼠眼部拭子采集及样本富集

  1. 准备无菌眼拭子
    注意:无菌眼拭子为自制,由薄层脱脂棉包裹的细木签制成。
    1. 根据需采样的小鼠数量,将适量脱脂棉和木签放入高压灭菌器中灭菌。
    2. 用拇指和食指夹取约半厘米长的脱脂棉条,再用双手拇指和食指轻轻拉扯棉条边缘,使其展开成一层扁平、多孔的单层结构,注意避免完全撕裂(拉伸过程中有少量棉絮散落是可接受的)。
    3. 将展开的脱脂棉轻轻缠绕在木签尖端,一手握住棉条末端并随木签旋转捻动,见图1。最终制成的眼拭子应在尖端覆盖一层极薄的棉层,向外延伸约0.5至1厘米。
    4. 将“完成”的拭子以棉端朝下插入小烧杯中,盖上盖子后进行高压灭菌。
  2. 设置工作区
    1. 在无菌50 mL离心管中配制麻醉剂:加入2 mL氯胺酮(100 mg/mL)、400 µL赛拉嗪(100 mg/mL)和27.6 mL无菌生理盐水(0.9% NaCl in dH₂O)。经滤器除菌后分装,供立即使用(可于4 °C保存1个月;使用前须恢复至室温)。
    2. 用消毒剂清洁工作区域,以减少污染风险。
    3. 将0.5 mL无菌脑心浸出液培养基(BHI)分装至已标记的1.5 mL无菌微量离心管中(每只小鼠及对照各一管),置于冰上的微量离心管架中。
    4. 按以下顺序布置工作流程(从左至右):小鼠麻醉区(实验小鼠笼、空的无菌笼、室温麻醉剂、25 G针头和1 mL注射器)、眼拭子采样区(冰上放置的分装BHI、灭菌眼拭子、洁净纸巾、70%异丙醇喷雾)和接种区(室温5%羊血Trypticase大豆琼脂平板、10 µL移液器、10 µL无菌一次性吸头、生物危害废物容器)。
  3. 眼拭子采样
    1. 按每克体重10 µL剂量,分别给予成年小鼠腹腔注射氯胺酮和赛拉嗪混合麻醉剂,并将小鼠放入已灭菌的笼中。通过捏压后肢足垫检测麻醉效果;无反应表示麻醉充分。
    2. 指定一只手仅用于处理麻醉后小鼠,另一只手仅用于操作眼拭子和培养管。采样时,取出完全麻醉的小鼠,侧卧于洁净操作台面,使左眼暴露。用异丙醇喷洒戴手套的手,并用洁净纸巾擦干。
    3. 用专用于处理培养基的手打开对应标记的BHI微量离心管,随后将管放回冰上的离心管架。将眼拭子的棉头浸入BHI培养基中,取出时在管内壁轻轻旋转2次,以去除多余液体。
    4. 用处理小鼠的手轻轻抓住小鼠颈背部皮肤固定。另一只手将眼拭子棉头轻抵左眼内侧结膜部位,见图2A。轻压眼球,并在下眼睑与眼球之间以“擦窗”方式来回移动拭子10次(图2B),保持均匀压力。
    5. 避免接触毛发,垂直取出拭子,直接将棉头朝下放入标记好的含BHI培养基的微量离心管中。在采样眼滴入润滑性眼药水。
    6. 将小鼠放回笼中。
    7. 让拭子在冰上静置10至15分钟,随后用已灭菌的手套手持手套轻柔混匀管内液体10次。取出拭子时,在微量离心管内壁旋转5次,以充分释放微生物。将拭子丢弃至生物危害废物容器中。
    8. 对每只小鼠及对照样本(皮肤或毛发拭子)重复步骤1.3.2至1.3.7。每次采样之间应对手套进行适当灭菌处理。
  4. 增菌培养
    1. 将样本在37 °C静置培养1小时以进行增菌。
    2. 培养期间,为每只小鼠准备一个室温的含5%羊血的Trypticase大豆琼脂平板(TSA平板),并将平板均分为两半。
    3. 眼拭子培养结束后,从培养箱中取出增菌样本,置于冰上。
    4. 短暂涡旋混匀样本,然后按照图3A所示示意图进行接种。取10 µL样本滴加于TSA平板一侧,倾斜平板形成条带,重复2次。
    5. 在平板分界线另一侧,将10 µL样本以点状方式接种于琼脂表面,共点9次。
    6. 将平板在37 °C培养18小时、2天和4天(置于洁净环境中,防止琼脂干燥)。计数条带中的菌落,记录形态特征,并计算每拭子的菌落形成单位(CFUs),针对形态相似的分离株进行统计。通过点样区域观察是否出现条带中未捕获的独特微生物。

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结果

戴手套的手使用牙签进行纤维采集过程;实验装置特写。
图 1:自制眼拭子。
(A) 将一小段约 1 cm 长的拉伸棉絮夹在无菌牙签尖端与食指之间,然后在保持对食指轻微压力的同时旋转牙签,直至棉絮完全缠绕在牙签尖端上。(B) 眼拭子示例。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
0.1 至 10 μl 移液器吸头 USA Scientific 1110-300 使用前高压灭菌
0.5 至 10 μl Eppendorf 移液器 Fisher Scientific 13-690-026
1 ml 注射器 Fisher Scientific BD309623 每组眼拭子使用一支注射器
1.5 ml Eppendorf 离心管 USA Scientific 1615-5500 使用前高压灭菌
1000 μl 移液器吸头 USA Scientific 1111-2021 使用前高压灭菌
200 至 1000 μl Gilson 移液器(P1000)Fisher Scientific F123602G
25 G 针头 Fisher Scientific 14-826AA 每组眼拭子使用一根针头
3 % 过氧化氢 Fisher Scientific S25359
37 ° C 培养箱 实验设备
70 % 异丙醇Fisher Scientific PX1840-4
Ana-Sed 注射液(赛拉嗪 100 mg/ml)Santa Cruz Animal Health SC-362949Rx
本生灯 实验设备
洁净纸巾 实验设备
棉絮/无菌卷棉 CVS
氯胺酮(100 mg/ml) Henry Schein9950001
小鼠 Jackson LabsC57/BL6J
培养皿 Fisher Scientific 08-757-12 用于甘露醇盐琼脂平板
RPI 脑心浸出液培养基 Fisher Scientific 50-488525 按说明配制并进行高压灭菌
SteriFlip(0.22 μm 孔径聚酯砜滤膜)EMD/Millipore, Fisher ScientificSCGP00525 用于麻醉剂的除菌
无菌小鼠笼实验设备
牙签(圆形竹制) Kitchen Essentials 使用前高压灭菌,并在制备拭子前进行擦拭消毒
胰蛋白胨大豆琼脂 II 加 5% 羊血平板Fisher Scientific 4321261使用前于 4 °C 保存
一次性眼药水 CVS Pharmacy Bausch and Lomb Soothe 润滑眼药水,28 支,每支 0.02 fl oz

重印与许可

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