需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

细菌性眼内炎小鼠模型:通过玻璃体内注射细菌悬液建立小鼠细菌性眼内炎的方法 关键词:细菌性眼内炎,小鼠模型,玻璃体内注射,细菌悬液,眼感染,实验性眼病

3.8K 次观看

2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Mursalin, M. H. 细菌性眼内炎小鼠模型中玻璃体内注射及感染参数的定量分析J. Vis. Exp. (2021)。

本视频介绍了一种通过将细菌悬液注射到小鼠眼内玻璃体腔中,建立模拟细菌性眼内炎的小鼠模型的方法。细菌性眼内炎是一种由细菌侵入眼内玻璃体腔引起的内部感染。该小鼠模型有助于研究疾病的发病机制并评估潜在的治疗方法。

方案

所有涉及动物模型的实验程序均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。

1. 无菌玻璃针

  1. 打开针式移液器拉制仪的电源。
  2. 调节加热器旋钮,直至显示屏显示数值为12.6。
  3. 打开门,手动将5 μL毛细管穿过上部夹具并穿过加热丝,使管子的一半长度延伸至加热丝下方(图1A)。
  4. 确认毛细管已置于上部夹具的“V”形槽内,然后拧紧上部夹具。
  5. 在下部夹具打开的状态下,手动向上调节垂直滑块,直至下部夹具达到其上限位置。确认毛细管位于下部夹具的“V”形槽内,然后拧紧下部夹具。
  6. 关闭门,确认“准备就绪”指示灯亮起。按下启动按钮,以启动加热和拉制程序(图1B)。
  7. 确保加热器在加热和重力作用将毛细管拉断后自动关闭(图1C),且滑块向下移动。
  8. 打开门,握住毛细管上端,松开上部夹具,取下上段毛细管并放置一旁。
  9. 握住底部滑块中的毛细管,松开下部夹具,取下下段毛细管并放置一旁。
  10. 使用配备0.05 μm氧化铝研磨板的微电极斜面研磨仪,对拉制后的毛细管进行斜面打磨,以制成注射针头。
  11. 将足量水滴加到研磨板上,使其覆盖整个表面(图1D)。
  12. 打开研磨仪电源,使其以60 rpm转速开始旋转。将拉制后的毛细管放入“V”形槽中的移液管夹具内,拧紧夹具,并将移液管夹具的角度调节至30°。
  13. 将毛细管尖端调整至距离研磨板旋转中心约三分之二半径的位置。
  14. 通过调节操纵器顶部的粗调控制旋钮,降低已夹紧的毛细管。持续下移毛细管,直至其尖端伸入水面以下并接触研磨板的研磨表面。
  15. 使用连接在研磨仪上的显微镜监测斜面打磨过程。5分钟后,调节微调控制装置,将玻璃针头从研磨板表面抬起。
  16. 取下玻璃针头,置于10倍放大镜下检查毛细管尖端(图1E,F)。
  17. 为确保无堵塞,将玻璃针头插入连接注射器的移液管 holder 中,向装有1 mL 99%乙醇的试管内推动空气。若针尖处形成气泡,则表明针头无堵塞,可用于显微注射。此过程同时可确保玻璃针头的无菌性。
  18. 一根毛细管最多可容纳5 μL液体。将毛细管均分为10段,以计算针管上对应0.5 μL体积的刻度间距。标记出每0.5 μL对应的长度,以便后续使用。对于5 μL针管,每0.7 mm的间距相当于0.5 μL(图1G)。

2. 小鼠玻璃体内注射

  1. 本节所有操作均须在生物安全二级条件下进行。
  2. 在手术台上放置医用垫巾以准备操作区域。
  3. 转动 开启 打开连接至显微注射仪的压缩空气罐上的气体阀门。调节气罐调压阀,使气体输送压力约为60 psi。
  4. 在显微注射仪上按下 模式 直到屏幕显示 平衡. 按压 平衡 将计算机鼠标放置在手术台上。将不锈钢移液管架连接到与注射器“填充/输出”端口相连的管路上。该管路始终与注射器保持连接。
  5. 将毛细玻璃针插入移液器 holder 的另一端,通过拧紧移液器 holder 连接头固定针头。
  6. 打开眼科显微镜,将光源强度调至50%。调整显微镜至手术台操作区域上方,并调节显微镜至所需焦距。
  7. 在开始操作前,通过检测小鼠的足底回缩反射确认其已充分麻醉。务必遵循经IACUC批准的麻醉操作规程。
  8. 将麻醉后的小鼠置于医用垫巾上,使其鼻部朝右,左侧身体侧倾倚靠。
  9. 通过眼科显微镜观察小鼠右眼,并用反向持针钳夹住眼睛两侧的镊柄张开眼睑,以暴露注射部位(图 2C).
  10. 用毛细管针吸取 Bacillus cereus (ATCC 14579)菌液(200 CFU/μL 稀释度),通过点击显微注射仪连接的鼠标左键图 2D).
  11. 用左手固定动物头部,将针头尖端置于眼睛的角膜缘处。针头斜面朝上,与眼球呈45°角刺入小鼠眼内,注射时确保仅针头锐利部分(约0.5 mm)插入眼内。
  12. 针尖插入后,将左手从鼠头移至鼠标垫,右键点击鼠标垫以注入 0.5 μL 的 B. cereus 用脑心浸液(BHI)肉汤制备的稀释液。为防止渗漏,在拔出前将针头尖端留在小鼠眼内2-3秒。 2E).
  13. 松开镊子,将小鼠放入置于加热垫上的笼子中。持续观察小鼠,直至其从麻醉状态恢复图2F).
  14. 小鼠从麻醉中恢复后,将鼠笼放回相应的架位。若小鼠需接受视网膜电图检测以分析视网膜功能,应将鼠笼放回暗室,以确保充分的暗适应。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

结果

显微注射装置、针头制备及测量过程,用于精确递送样品。
图1:制备斜面玻璃针。 玻璃针由一次性微毛细移液管通过拉针仪和微移液管斜面仪制成。(A) 将玻璃毛细管夹持在拉针仪中。(B,C) 使用设定电压拉制玻璃针。(D) 对玻璃微移液管进行斜面加工。(E,F) 斜面处理前后的玻璃微移液管。(E) 玻璃针的刻度:两个黑点之间的空间容纳 0.5 µL。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
细胞显微注射仪 MicroData Instrument, Inc. PM2000 NA
5 微升微量毛细移液管 Kimble 71900-5 NA
微量移液管斜面研磨仪 Sutter Instrument Co. BV-10NA
OPMI Lumera 显微镜 Zeiss NA
反向操作镊子 Katena K5-8228NA

标签

蜡样芽孢杆菌玻璃体腔视网膜感染微量注射器使用眼科显微镜角膜缘穿刺炎症反应