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兔模型机械通气气管插管术:一种将气管导管插入兔气管的操作方法

2025年7月8日

本文内容

摘要

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来源:Marger, L. 用于评估骨替代材料中骨生长与新生血管形成的兔颅骨骨增量模型J. Vis. Exp. (2019)

在本视频中,我们演示了气管插管——一种通过口腔将气管导管插入兔模型体内的侵入性操作。该操作可实现肺部的机械通气。

方案

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所有涉及动物模型的操作均已经过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。

1. 麻醉与插管

  1. 对动物(三个月大的新西兰白兔,雄性或雌性,每只体重约2.5 kg)进行肌内注射氯胺酮(25 mg/kg,50 mg/mL,0.5 mL/kg)和赛拉嗪(3 mg/kg,20 mg/mL,0.15 mL/kg)以达到镇静效果。等待约20分钟,直至动物进入睡眠状态
    深度(完全肌肉失张力)。
    注意: 这种预用药将实现简单、快速且无痛的插管过程。深度镇痛和麻醉的诱导方法如步骤1.1.8所述。
  2. 从耳缘静脉插入静脉(IV)导管,并在气管插管完成前保持关闭。
    注意: 该静脉通路将用于输注芬太尼和丙泊酚,分别实现深度镇痛和麻醉(见步骤1.8)。
  3. 通过纯氧中供给5%七氟烷维持麻醉,直至完成插管。
    注意: 仅当动物出现苏醒迹象(如眼球运动、肌肉收缩)时,才需要执行此步骤。
  4. 用10%利多卡因喷雾对气管进行局部麻醉。将兔置于俯卧位,并保持其头部垂直后伸。
  5. 将第一根小直径(2.5 mm)气管插管插入兔气管,直至可听到管内有气流声。此操作可打开喉部,便于后续插入正式气管插管。
  6. 在导管中插入引导管(插管导管),以固定导管在气管内的位置。移除细径导管,并沿引导管插入最终的气管内导管(4.9 mm)。
  7. 移除引导器,充胀气管导管末端的气囊,以封闭并固定装置于气管内。导管可保持原位,也可用系于前额的系带加以固定。立即使用纯氧中含3%七氟烷对动物进行通气(7 mL/kg,频率40次/分钟)。
  8. 持续经耳静脉灌注芬太尼(0.01 mg/mL,2–4 mL/h)以诱导镇痛,2–4 mg/kg 的丙泊酚(2%,20 mg/mL,4–8 mL/h)以诱导麻醉,并以 4 mL/kg/h 的醋酸林格液维持等容状态。
  9. 放置直肠温度探头。在整个过程中持续监测心功能、体温和血氧饱和度。
  10. 通过监测自主呼吸来控制麻醉深度;若动物出现自主呼吸迹象,给予小剂量的丙泊酚和芬太尼。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
手术托盘
Shiley 气管插管,直径 2.5 mmCovidien86233用于插管
Shiley 气管插管,直径 4.9 mmCovidien107-35G用于插管
插管导管Cook Medical插管引导用
Ketalar 50 mg/mlPfizer麻醉用氯胺酮
Rompun 2%Bayer麻醉用赛拉嗪
七氟烷 5%Abbvie用于麻醉
利多卡因 10% 喷雾Astra Zeneca用于插管

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