需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

Msp1提取实验用于研究错误定位的尾锚定蛋白的去除

715 次观看

⸱

2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Fresenius, H. L., Wohlever, M. L. 使用完全纯化组分重建 Msp1 提取活性。J. Vis. Exp. (2021)。

本视频演示了一种 体外 研究Msp1介导的从脂质体双层膜中清除错位整合的TA蛋白的实验方案。将Msp1与TA蛋白共同重组至脂质体中,通过亲和纯化验证ATP依赖性的TA蛋白转位过程。

方案

1. 脂质体的制备

  1. 按适当比例混合脂质的氯仿贮存液,以模拟线粒体外膜。
    1. 准备25 mg脂质混合物。我们使用一种先前建立的模拟线粒体膜的脂质混合物,其摩尔比为48:28:10:10:4的鸡卵磷脂酰胆碱(PC)、鸡卵磷脂酰乙醇胺(PE)、牛肝磷脂酰肌醇(PI)、合成的1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷脂酰-L-丝氨酸(DOPS)和合成的1',3'-双[1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷脂]-甘油(TOCL)。样品计算如下所示 表1.
    2. 将所有脂质储备液恢复至室温后再打开,以减少冷凝。由于大多数实验室缺乏精确测定脂质浓度的方法,氯仿储备液吸收的任何水分都会改变脂质储备液的浓度,从而影响检测中所用脂质的比例。
    3. 由于脂质储存于玻璃安瓿瓶中,使用1 mL注射器将所需量的脂质转移至玻璃小瓶。向小瓶中加入2 mg二硫苏糖醇(DTT)以防止脂质氧化。操作应迅速,因为氯仿挥发会改变脂质浓度。
    4. 将剩余的脂质转移至一个单独的玻璃小瓶中,并配以聚四氟乙烯(PFTE)垫片密封。向小瓶中加入2 mg DTT,用Parafilm封口膜包裹,于-20 °C保存以防止脂质氧化。建议在脂质转移至小瓶后的3个月内使用完毕。为避免记号笔墨水污染氯仿储存液,应将原始安瓿上的标签贴纸转移至玻璃小瓶,而非使用记号笔直接标记。
  2. 在通风橱中,用手持续旋转玻璃小瓶,同时用极微弱的氮气流吹扫....

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
生物珠Bio-Rad 1523920
牛肝磷脂酰肌醇Avanti 840042C PI
鸡卵磷脂酰胆碱Avanti 840051C PC
鸡卵磷脂酰乙醇胺Avanti 840021C PE
滤膜支撑板Avanti 610014
玻璃小瓶VWR 60910L-1
谷胱甘肽自旋柱Thermo Fisher PI16103
微型挤出器Avanti 610020
合成 1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷脂酰-L-丝氨酸Avanti 840035C DOPS
合成 1',3'-双[12-二油酰基-sn-甘油-3-磷脂]-甘油Avanti 710335C TOCL
1 mL 注射器Norm-Ject 53548-001
1 mL 注射器  气密型 Avanti 610017

探索更多文章

TA蛋白去除脂质体重组ATP依赖性转位亲和纯化GST标签SDS-PAGE分析谷胱甘肽旋转柱线粒体ATP酶蛋白质转位实验