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所有涉及动物模型的程序均已由当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会审查。
1. 鼻皮层-海马切片的制备
注意:鼻皮层海马切片的制备使用 P6-7 Sprague-Dawley 大鼠。
- 培养设置和培养基制备
- 在培养前一天,准备所需的培养基并将其置于 4 °C。
- 准备解剖培养基:Gey 平衡盐溶液 (GBSS) 中的 25 mM 葡萄糖。
- 准备培养基:50% Opti-MEM、25% HBSS、25% 马血清 (HS)、25 mM 葡萄糖、30 μg/mL 庆大霉素。
- 准备维持培养基:Neurobasal-A (NBA)、2% B27、1 mM L-谷氨酰胺、30 μg/mL 庆大霉素、HS(15%、10%、5% 和 0%)。
- 大脑收集
- 在开始培养之前,用 P1000 移液器向 6 孔板的每个孔中加入 1.1 mL 培养基,并将其置于 37 °C。
- 将所有设备(解剖显微镜、组织切碎机、解剖灯、解剖工具、电极、板、插入物和滤纸)放入生物安全柜内,并在紫外线下消毒 15 分钟。
- 将切片厚度调整为 350 μm。
- 从冰箱中取出 GBSS。将 5 mL GBSS 添加到六个培养皿中。每只动物需要 6 个培养皿。
- 对老鼠幼崽实施安乐死。用锋利的剪刀在动物的脑干底部进行斩首。
- 在冷 GBSS 中清洗动物头部 3 次,然后将其放入安全柜内。
- 组织分离和切片制备
- 将锋利的镊子牢固地插入眼窝以固定头部。
- 用细剪刀沿中线从椎孔开始切开皮肤/头皮,直到额叶,然后将其放在一边。
- 以相同的方式切割颅骨并沿着大脑横裂(大脑和小脑之间的空间)。用弯曲的长镊子将其分开。
- 用抹刀丢弃嗅球。从头部取出大脑,将其置于冰冷的 GBSS 中,背表面朝上(图 1A)。
- 将细镊子插入小脑,沿着中线移动,刮刀非常小心地打开每个半球(图 1B)。
- 用短曲线镊子小心地去除覆盖海马体的多余组织,不要接触海马体结构。然后用刮刀在每个海马体下方切开(图 1C)。
- 拿起一个半球,将其放在滤纸上,海马体朝上。对另一个半球重复该过程,并将其与第一个半球平行放置在滤纸中。将滤纸放在组织切碎机上,使半球垂直于刀片,并将半球切成 350 μm 切片(图 1D)。
- 将切片的组织放入装有冷 GBSS 的培养皿中(图 1E)。
- 使用圆头电极小心地分离切片(图 1F)。仅保留具有结构完整的鼻皮层和海马体的切片。DG 和 CA 区域以及内嗅和鼻周围皮层都应该得到完美定义(图 1G)。
- 将每个切片放在插入物上(图 1H-I),用刮刀和圆尖电极。用 P20 移液器去除每个切片周围多余的解剖培养基(图 1J)。四个鼻皮层海马切片可以在单个插入片段中培养(图 1K)。
- 培养物维护
- 每隔一天更换一次培养基。
- 在 37 °C 下加热培养基。
- 从培养箱中取出板。用镊子握住塑料边缘,拿起每个插入物(图 1L)。
- 用另一只手从孔中吸出培养基。将插入物放回孔中,用 P1000 移液器加入 1 mL 新鲜加热的培养基(图 1M)。对所有插入重复此作。确保膜和介质之间没有气泡。
注意:癫痫样切片在培养基中逐渐且受控地剥夺血清。从 9 Days In Vitro (DIV) 开始,切片将保留在 NBA 中,没有 HS。
2. 电生理记录
>注意:在界面型腔室中以 7、14 和 21 DIV 在鼻皮层-海马器官型切片中进行电生理记录。使用放大器获取记录,进行数字化,并使用软件进行分析。所有录音都经过带通滤波(60 Hz 的八极点贝塞尔滤波器和 600 Hz 的高斯滤波器)。
- 设置准备
- 用 1 mL B27 和 250 μL L-谷氨酰胺制备 50 mL NBA 培养基。在 37 °C 下预热。
- 在闭路中设置电生理学设置。验证流速是否为 2 mL/min。
- 打开车箱 (5% CO2/95% O2) 阀并检查系统中的水位。
- 将滤纸放入界面记录室中以排出多余的介质,并将镜头清洁纸放入镜框下方,为切片提供介质。
- 打开温度控制器、放大器和显微作器。
- 在开始记录之前,让界面室中的温度稳定在 37 °C。
- 制备人工脑脊液(aCSF:124 mM NaCl、3 mM KCl、1.2 mM NaH2PO4、25 mM NaHCO3、10 mM 葡萄糖、2 mM CaCl2、1 mM MgSO4 pH 值为 7.4)并用它用注射器填充玻璃电极。将其放入接收电极中。
- 自发活动的记录
- 温度稳定后,从培养箱中取出板,并用高度锋利的刀片从插入物上切下一片。将其放入装有一滴培养基的 60 mm 板中。把它带到界面记录室。
- 将切片放入界面室中,海马体位于右下角。将接收电极置于 CA3 金字塔形电池层中。
- 继续进行连续采集协议并记录 30 分钟。