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基于脑电图的记录技术记录癫痫样活动

July 8th, 2025

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Abstract

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来源:Carvalho, M. et al.鼻皮层-海马器官型切片培养物中癫痫发生的模型。J. Vis. Exp. (2021 年)。

该视频描述了使用电生理学或 EEG 设置在体外记录鼻皮层-海马器官型切片癫痫样活动的技术。这有助于研究癫痫发生的动力学和进展,并筛选治疗癫痫的潜在治疗靶点。

Protocol

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所有涉及动物模型的程序均已由当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会审查。

1. 鼻皮层-海马切片的制备

注意:鼻皮层海马切片的制备使用 P6-7 Sprague-Dawley 大鼠。

  1. 培养设置和培养基制备
    1. 在培养前一天,准备所需的培养基并将其置于 4 °C。
    2. 准备解剖培养基:Gey 平衡盐溶液 (GBSS) 中的 25 mM 葡萄糖。
    3. 准备培养基:50% Opti-MEM、25% HBSS、25% 马血清 (HS)、25 mM 葡萄糖、30 μg/mL 庆大霉素。
    4. 准备维持培养基:Neurobasal-A (NBA)、2% B27、1 mM L-谷氨酰胺、30 μg/mL 庆大霉素、HS(15%、10%、5% 和 0%)。
  2. 大脑收集
    1. 在开始培养之前,用 P1000 移液器向 6 孔板的每个孔中加入 1.1 mL 培养基,并将其置于 37 °C。
    2. 将所有设备(解剖显微镜、组织切碎机、解剖灯、解剖工具、电极、板、插入物和滤纸)放入生物安全柜内,并在紫外线下消毒 15 分钟。
    3. 将切片厚度调整为 350 μm。
    4. 从冰箱中取出 GBSS。将 5 mL GBSS 添加到六个培养皿中。每只动物需要 6 个培养皿。
    5. 对老鼠幼崽实施安乐死。用锋利的剪刀在动物的脑干底部进行斩首。
    6. 在冷 GBSS 中清洗动物头部 3 次,然后将其放入安全柜内。
  3. 组织分离和切片制备
    1. 将锋利的镊子牢固地插入眼窝以固定头部。
    2. 用细剪刀沿中线从椎孔开始切开皮肤/头皮,直到额叶,然后将其放在一边。
    3. 以相同的方式切割颅骨并沿着大脑横裂(大脑和小脑之间的空间)。用弯曲的长镊子将其分开。
    4. 用抹刀丢弃嗅球。从头部取出大脑,将其置于冰冷的 GBSS 中,背表面朝上(图 1A)。
    5. 将细镊子插入小脑,沿着中线移动,刮刀非常小心地打开每个半球(图 1B)。
    6. 用短曲线镊子小心地去除覆盖海马体的多余组织,不要接触海马体结构。然后用刮刀在每个海马体下方切开(图 1C)。
    7. 拿起一个半球,将其放在滤纸上,海马体朝上。对另一个半球重复该过程,并将其与第一个半球平行放置在滤纸中。将滤纸放在组织切碎机上,使半球垂直于刀片,并将半球切成 350 μm 切片(图 1D)。
    8. 将切片的组织放入装有冷 GBSS 的培养皿中(图 1E)。
    9. 使用圆头电极小心地分离切片(图 1F)。仅保留具有结构完整的鼻皮层和海马体的切片。DG 和 CA 区域以及内嗅和鼻周围皮层都应该得到完美定义(图 1G)。
    10. 将每个切片放在插入物上(图 1H-I),用刮刀和圆尖电极。用 P20 移液器去除每个切片周围多余的解剖培养基(图 1J)。四个鼻皮层海马切片可以在单个插入片段中培养(图 1K)。
  4. 培养物维护
    1. 每隔一天更换一次培养基。
    2. 在 37 °C 下加热培养基。
    3. 从培养箱中取出板。用镊子握住塑料边缘,拿起每个插入物(图 1L)。
    4. 用另一只手从孔中吸出培养基。将插入物放回孔中,用 P1000 移液器加入 1 mL 新鲜加热的培养基(图 1M)。对所有插入重复此作。确保膜和介质之间没有气泡。
      注意:癫痫样切片在培养基中逐渐且受控地剥夺血清。从 9 Days In Vitro (DIV) 开始,切片将保留在 NBA 中,没有 HS。

2. 电生理记录

>注意:在界面型腔室中以 7、14 和 21 DIV 在鼻皮层-海马器官型切片中进行电生理记录。使用放大器获取记录,进行数字化,并使用软件进行分析。所有录音都经过带通滤波(60 Hz 的八极点贝塞尔滤波器和 600 Hz 的高斯滤波器)。

  1. 设置准备
    1. 用 1 mL B27 和 250 μL L-谷氨酰胺制备 50 mL NBA 培养基。在 37 °C 下预热。
    2. 在闭路中设置电生理学设置。验证流速是否为 2 mL/min。
    3. 打开车箱 (5% CO2/95% O2) 阀并检查系统中的水位。
    4. 将滤纸放入界面记录室中以排出多余的介质,并将镜头清洁纸放入镜框下方,为切片提供介质。
    5. 打开温度控制器、放大器和显微作器。
    6. 在开始记录之前,让界面室中的温度稳定在 37 °C。
    7. 制备人工脑脊液(aCSF:124 mM NaCl、3 mM KCl、1.2 mM NaH2PO4、25 mM NaHCO3、10 mM 葡萄糖、2 mM CaCl2、1 mM MgSO4 pH 值为 7.4)并用它用注射器填充玻璃电极。将其放入接收电极中。
  2. 自发活动的记录
    1. 温度稳定后,从培养箱中取出板,并用高度锋利的刀片从插入物上切下一片。将其放入装有一滴培养基的 60 mm 板中。把它带到界面记录室。
    2. 将切片放入界面室中,海马体位于右下角。将接收电极置于 CA3 金字塔形电池层中。
    3. 继续进行连续采集协议并记录 30 分钟。

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Results

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图 1:制备鼻皮层-海马器官型切片的详细程序。A) 从头部取出大脑,将其放入冰冷的 GBSS 中,背表面朝上。(B) 将镊子插入小脑。通过中线打开大脑,去除海马体上多余的组织。(C) 用刮刀在海马体下方切开,如箭头所示。(D) 将海马体面朝上并彼此平行放在滤纸上,并在组织切碎机上切下 350 μm 切片。(E) 将切片的海马体放入冰冷的 GBSS 中。(F) 在圆头玻璃电极的帮助下分离切片。(G) 仅选择描绘完整鼻皮层和海马体的切片。(H, I)在圆头玻璃电极的帮助下,将每片推到刮刀上并将其放在插入物上。(J

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Materials

<表格border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"> List of materials used in this article Name Company Catalog Number Comments 人工脑脊液 (aCSF) 自制 B-27™ 添加剂 (50X),无血清 赛默飞世尔科技 编号 17504-044 手术刀手柄刀片 精细科学工具 编号 10011-00 牛血清白蛋白 (BSA) NZYTech 公司 MB04602 5% BSA 用于稀释一抗。在 10 mL PBS 中加入 0.5 g BSA。 脑/组织切片室系统 华纳仪器 细胞培养小室,30 mm,亲水性 PTFE 米利波尔 SAS PICM03050 常规培养箱 Thermo Scientific 贺利氏 BB15,功能系列 设置为 37 °C 和 5% CO2 Gey's 平衡盐溶液 (GBSS) 生物工业 01-919-1A 玻璃电极 科学产品 GB150F-10 自制圆头 接口室 华纳仪器 BSC-HT Haas 顶部 Iris Spatula Curved 鸢尾花抹刀 精细科学工具 编号 10092-12 镜头清洁纸 蒂芬 L-谷氨酰胺溶液 200 mM (Q) 赛默飞世尔科技 编号:25030-024 组织切碎机 The Mickle Laboratory Engineering CO., LTD. 米克尔实验室工程有限公司 MTC/2 设置为 350 μm

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