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所有涉及动物模型的操作均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。
1. 试剂与材料准备
- 配制含有2%胎牛血清(FBS)和1 mM乙二胺四乙酸(EDTA)的500 mL磷酸盐缓冲液(PBS)。
注意:为获得最佳效果,整个操作过程中应将缓冲液置于冰上。
- 配制50 mL完全RPMI培养基,包含RPMI 1640、10% FBS和1%青霉素-链霉素。在进行THGM细胞分化时,使用含有50 µM β-巯基乙醇的完全RPMI培养基。添加β-巯基乙醇时应在通风橱中进行。
- 通过将抗CD3e浓缩液用PBS稀释至3 μg/mL,配制7.5 mL抗CD3e抗体混合液。向48孔板的每孔中加入150 μL抗体混合液以包被平板,并在37 °C孵育至少1小时,或在4 °C过夜孵育。
- 将一把剪刀和镊子灭菌,并在每次解剖操作间隙将其保存于70%乙醇中。
2. 小鼠脾细胞的制备
- 使用机构批准的 CO2 窒息法或颈椎脱位法处死小鼠(6–8 周龄)。用 70% 乙醇喷洒小鼠,并将其仰卧固定在聚苯乙烯板上。将小鼠转移至生物安全柜中,以进行后续操作。
- 用镊子夹住皮肤,使用剪刀在左侧肋骨下方约 4 cm 处剪开皮肤。打开腹膜囊以暴露脾脏,并用无菌镊子取出脾脏。
- 将 70 μm 细胞滤筛置于 50 mL 离心管上,并用 2 mL 缓冲液预润湿。将脾脏置于细胞滤筛上(每个滤筛放置 2–3 个脾脏),用 5 mL 注射器活塞末端研磨组织。
- 用 1–2 mL 细胞分离缓冲液多次冲洗滤筛和离心管,直至所有细胞均被冲洗至管中。弃去细胞滤筛,将细胞在 4 °C 条件下以 350 x g 离心 5 分钟。弃去上清液。
- 用 5 mL 冷(4 °C)氯化铵-氯化钾(ACK)裂解缓冲液(150 mM NH4Cl,10 mM KHCO3,0.1 mM Na2EDTA;pH 7.2–7.4)重悬细胞沉淀,轻轻混匀 2 分钟。加入 10 mL 完全 RPMI 培养基以中和 ACK 缓冲液,立即在 4 °C 条件下以 350 x g 离心 5 分钟。离心后弃去上清液。
3. 使用磁性CD4微珠和细胞分离柱分离CD4+ T细胞
- 将细胞沉淀重悬于 5 mL 细胞分离缓冲液中。使用预分离滤器(30 μm)将细胞悬液过滤至新的 15-mL 离心管中,以去除任何碎片。
- 取 10 μL 细胞悬液,加入 90 μL 缓冲液进行 10 倍稀释。取 10 μL 稀释后的细胞悬液,与 10 μL 台盼蓝混合用于细胞计数。使用血细胞计数板对细胞进行计数,以确定活细胞的得率。
- 在 4 °C 条件下,以 350 x g 离心 5 分钟,弃去上清液。
- 按每 107 个细胞加入 90 μL 缓冲液的比例重悬细胞。按每 107 个细胞加入 10 μL 磁性 CD4 微珠的比例加入微珠。在 4 °C 条件下孵育 15 分钟。为获得最佳效果,孵育期间每 5 分钟轻轻混匀细胞悬液一次。
- 在细胞孵育期间,将分离柱置于磁力架上,并用 2 mL 缓冲液预润湿柱子。
- 细胞与微珠孵育结束后,用 5 mL 缓冲液洗涤细胞,在 4 °C 条件下以 350 x g 离心 5 分钟,弃去上清液。
- 将细胞重悬于 1 mL 缓冲液中,将样品加载至细胞分离柱中,使其自然流过。使用 15-mL 离心管收集 CD4- 细胞组分。在储液室变干前,加入 1 mL 缓冲液洗涤一次。重复洗涤步骤 2 次。
- 将细胞分离柱从磁力架上取下,置于新的 15 mL 离心管上。向细胞分离柱中加入 2 mL 细胞分离缓冲液,并用力插入推杆,将细胞从柱中推出。
- 在 4 °C 条件下,以 350 x g 离心 5 分钟,获得 CD4+ 细胞。弃去上清液。
4. 通过荧光激活细胞分选法纯化初始CD4+ T细胞(CD4+CD25-CD44loCD62Lhi)及THGM分化
- 重悬所获得的 CD4+ 用500 µL缓冲液重悬细胞沉淀,加入含CD4-PerCp(2.8 µg/mL)、CD44-APC(2.4 µg/mL)和CD25的荧光标记抗体混合物,混匀细胞。-PE(2 µg/mL)和CD62L-FITC(10 µg/mL)(表1将细胞置于冰上孵育20–30分钟,期间避光。
注意: 抗体的浓度已在实验室中预先优化。所列抗体数量适用于1–2只小鼠的细胞。
- 孵育结束后,用 5 mL 缓冲液洗涤细胞,并在 350 x g 4 °C下离心5分钟。
- 弃去上清液,将细胞重悬于500 µL缓冲液中。使用尼龙滤网再次过滤细胞。
- 将细胞悬液转移至FACS管中用于细胞分选。预先在收集用FACS管中加入500 µL缓冲液进行预包被。
- 获取 CD4+CD25-CD44loCD62L你好 群体(初始CD4)+ T细胞)通过FACS分选。圈选CD4+CD25- 首先,然后选择 CD44loCD62L你好 该群体中的细胞。
- 分离初始CD4+ 将T细胞组分转移至新的15 mL离心管中。以350 x g离心细胞。 g 4 °C下离心5分钟,弃去上清液。
- 重悬初始CD4+ 浓度为10⁶个细胞/mL的T细胞,置于含有50 µM β-巯基乙醇的完全RPMI培养基中。
- 吸弃用于预包被48孔板的抗CD3e抗体。每孔接种0.25×10⁶个细胞(250 µL),并加入IL-7(2 ng/mL)、抗CD28(1 µg/mL)和抗IFNγ(10 µg/mL)表1).
注意: 细胞因子和抗体的浓度此前已在实验室中针对THGM细胞分化
- 在 37 °C、5% CO₂ 条件下培养细胞2 孵育期间3天内不更换培养基。
5. 小鼠T细胞分析HGM细胞的生成 体外
- 使用显微镜在分化后第3天观察细胞分化情况。收集细胞,以350 x g离心 g 4 °C下离心5分钟。用完全RPMI培养基洗涤细胞2次。
注意: 分化后的细胞体积大于初始型CD4细胞+ T细胞
- 将细胞重悬于1 mL完全RPMI培养基中。取10 μL细胞悬液,与10 μL台盼蓝充分混合,用血细胞计数板测定细胞数量。将分化后的细胞分为三份,用于再刺激和分析。
注意: 细胞内细胞因子染色需要≥0.5×10⁶个细胞。
- 对于细胞内细胞因子染色,使用佛波酯12-肉豆蔻酸13-乙酸盐(PMA)(100 ng/mL)和离子霉素(1 μg/mL)重新刺激细胞,并在蛋白转运抑制剂(1 µL/mL)存在的条件下孵育4–6小时。
- 收集细胞,加入抗CD4抗体(PerCP偶联,0.2 mg/mL,1:100稀释;或FITC偶联,0.5 mg/mL,1:100稀释),避光孵育30分钟。
- 使用200 μL固定缓冲液固定细胞20–60分钟。固定后,用1 mL破膜缓冲液洗涤细胞2次。
- 使用抗GM-CSF(PE标记,0.2 mg/mL,1:100稀释)、抗IL-17A(FITC标记,0.5 mg/mL,1:100稀释;APC标记,0.2 mg/mL,1:100稀释)、抗IL-4(APC标记,0.2 mg/mL,1:100稀释)和抗IFNγ(APC标记,0.2 mg/mL,1:100稀释;PE标记,0.2 mg/mL,1:100稀释)抗体在避光条件下进行细胞内染色,孵育30分钟。
表1:使用的细胞因子和抗体。
| 名称 | 储存浓度 | 工作浓度 | 稀释倍数 | 500 μL 染色缓冲液中的体积 |
| CD4-PerCp | 0.2 mg/mL | 2.8 μg/mL | 1:71 | 7 μL |
| CD44-APC | 0.2 mg/mL | 2.4 μg/mL | 1:83 | 6 μL |
| CD25-PE | 0.2 mg/mL | 2 μg/mL | 1:100 | 5 μL |
| CD62L-FITC | 0.5 mg/mL | 10 μg/mL | 1:50 | 10 μL |
| GM-CSF-PE | 0.2 mg/mL | 2 μg/mL | 1:100 | |
| IL-17A-FITC | 0.5 mg/mL | 5 μg/mL | 1:100 | |
| IL-17A-APC | 0.2 mg/mL | 2 μg/mL | 1:100 | |
| IFNγ-APC | 0.2 mg/mL | 2 μg/mL | 1:100 | |
| IFNγ-PE | 0.2 mg/mL | 2 μg/mL | 1:100 | |
| IL-4-APC | 0.2 mg/mL | 2 μg/mL | 1:100 | |
| CD4-FITC | 0.5 mg/mL | 5 μg/mL | 1:100 | |
| IL-7 | 20 μg/mL | 2 ng/mL | 1:10000 | |
| Anti-CD28 | 0.5 mg/mL | 1 μg/mL | 1:500 | |
| Anti-IFNγ | 1 mg/mL | 10 μg/mL | 1:100 | |