所有涉及动物模型的实验程序均已通过当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会的审核。
1. 动物处理、准备及炎症诱导
- 使用4至6周龄的雄性小鼠,体重范围为16至20 g。注意:若小鼠年龄较大或体重较重,则血管周围脂肪过多,会限制显微镜下的观察。
- 手术前对所有器械和显微镜操作台进行灭菌处理。
- 在显微观察前4小时,向活体小鼠腹腔注射20 mg/kg的LPS(脂多糖),以诱导细菌性炎症。
- 将0.9%生理盐水溶液置于37 °C水浴中预热,用于湿润塑料腔室和肠系膜组织。
- 在显微观察前立即通过腹腔注射给予氯胺酮(100 mg/kg)和赛拉嗪(5 mg/kg)对小鼠进行麻醉。也可使用其他麻醉方法,例如,吸入2%异氟烷。通过检测反射刺激(用力捏压脚趾或尾巴)无反应来确认麻醉效果。
- 使用剃毛器去除腹部毛发,并用70%乙醇浸湿的纱布清除松散的毛发。
- 在麻醉期间,于小鼠眼部涂抹兽用眼膏,以防角膜干燥。
2. 手术
- 使用70%乙醇对腹部进行消毒。该方法并非无菌操作,实验结束时可能对动物造成致命影响。
- 行正中剖腹术:使用小型弯头镊子和小剪刀切开腹部皮肤。辨认剑突下血管,并在白线区域切开腹膜,以保护这些血管。
- 向腹腔内滴加数滴预热的生理盐水,以保持组织湿润。
- 通过眶后注射50 µl罗丹明6G(1 mg/ml)对白细胞和血小板进行荧光标记。
- 外置一段回肠袢并置于直径为10 cm的培养皿中;每隔一分钟滴加一次37 °C预热的生理盐水(0.9%),确保组织保持湿润。
3. 活体显微成像
- 将小鼠置于显微镜下,使直径为 200 - 300 µm 的肠系膜静脉位于视野中央。选择周围无明显脂肪组织的血管。
- 避免触碰肠系膜血管,以防止刺激内皮细胞。小心操作回肠袢。
- 使用倒置或正置显微镜配合相机及显微镜软件,观察血细胞与内皮细胞的相互作用。每只小鼠在 4 条不同的静脉中各记录 1 分钟的血细胞-内皮细胞相互作用。
- 成像实验完成后,通过颈椎脱臼法处死小鼠。
4. 分析
- 对所有参数进行离线且盲法分析。使用任何合适的软件程序进行分析。
- 在高时间分辨率的动态影像片段(最高帧率)中,聚焦管腔内血细胞流动,确认血流状态稳定且个体间具有可比性。
- 定量滚动白细胞的数量。为此,在静脉中画一条垂直线,统计1分钟内通过该线的所有白细胞数量。
- 通过测量单个白细胞在内皮上稳定滚动时通过50 µm距离所需的时间,确定其滚动速度。操作时,在静脉中画两条相距50 µm的垂直线。
- 测量一个代表性白细胞从一条线移动到另一条线所需的时间。通过将50 µm除以所需时间,计算白细胞的滚动速度(µm/s)。
- 在0.04 mm2的视野范围内测量白细胞黏附数量。为此,在静脉内绘制一个边长为200 µm的正方形。
- 统计该正方形内牢固黏附的白细胞数量,定义为在30秒内无可见移动的白细胞。
- 计数结合在单个白细胞上的血小板数量,以定量血小板-白细胞相互作用。