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方法文章

一种用于评估CAR T细胞效力的实时体外细胞溶解检测方法

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2025年7月8日

本文内容

摘要

来源:Xi, B. 等,靶向实体瘤和血液系统肿瘤细胞的嵌合抗原受体T细胞实时效价检测方法 J. Vis. Exp. (2019)

本视频展示了一种通过实时电学阻抗测量来监测CAR T细胞对癌细胞活性的方法。通过追踪阻抗变化,可评估CAR T细胞诱导癌细胞裂解的效果,从而深入了解其细胞毒性能力。

方案

1. CAR编码慢病毒的制备

注意: 特异性嵌合抗原受体(CAR)T细胞质粒构建完成后(如CD47及其他),按照所述方法,使用293 FT细胞、慢病毒包装混合物和转染试剂(参见 材料表)通过标准流程生成慢病毒CAR。随后,使用定量反转录聚合酶链式反应(RT-PCR)试剂盒和热循环仪(参见 材料表),根据制造商说明书通过测定慢病毒RNA含量来确定病毒滴度。所有慢病毒操作必须严格遵守安全要求进行。

  1. 在150 mm培养皿中接种15 × 106 HEK293FT细胞,使用杜尔贝科改良伊格尔培养基(DMEM),于37 °C、5%二氧化碳(CO2)恒温培养箱中孵育过夜。
  2. 准备两个15 mL离心管用于转染复合物。第一个管中加入慢病毒载体质粒DNA(5 µg)和慢病毒包装混合物(22.5 µg),溶于2.5 mL转染稀释液中;第二个管中加入82.5 µL转染试剂,溶于2.5 mL转染稀释液中(参见 材料表)。
  3. 将1号管中的内容物用移液器转移至2号管中,室温下孵育15分钟。
  4. 将混合液逐滴加入HEK293FT细胞培养皿中,于37 °C、5%二氧化碳(CO2)恒温培养箱中继续孵育过夜 。
  5. 次日,将原有培养基更换为19 mL新鲜DMEM培养基,并在37 °C、5% CO2 恒温培养箱中继续孵育过夜。
  6. 将培养皿中的培养基转移至50 mL离心管中,将含有病毒的培养基管置于冰箱中保存。
  7. 重复上述操作,再次加入新鲜DMEM培养基,并在1天后收集培养基。
  8. 将两次收集的培养基合并至同一离心管中,在4 °C条件下以2,000 × g 离心30分钟。
  9. 将大部分含慢病毒的上清液转移至超净离心管中,保留最小体积(约1 mL)的上清液,以避免扰动可能含有细胞和/或碎片的沉淀。
  10. 将上述澄清的上清液在4 °C下以110,000 × g 超速离心100分钟。
  11. 小心移除上清液,轻柔地向管底病毒沉淀中加入100 µL DMEM培养基,将离心管置于冰上15分钟。轻轻混匀溶液,并将慢病毒溶液分装至预冷的无菌管中。将病毒原液储存于-80 °C冰箱中。
  12. 使用定量RT-PCR试剂盒,根据制造商提供的操作说明检测慢病毒滴度,该方法通过提取并测定慢病毒RNA含量实现定量。

2. CAR T 细胞的制备与扩增

  1. 用1 mL CAR T细胞培养基重悬先前冻存的人外周血单个核细胞(PBMCs)(约1 x 106 至2 x 106 个细胞),加入等数量的CD3/CD28包被的微珠(见 材料表),在37 °C、含5% CO2 的湿润培养箱中孵育24小时。
  2. 将慢病毒原液分装样品置于冰上解冻。
  3. 向含细胞的孔中加入1 µL转导增强剂并混匀。
  4. 以感染复数(MOI)5:1的比例将慢病毒加入细胞中,轻轻混匀。次日重复此步骤(即首次转导后24小时)。
  5. 每2–3天监测T细胞生长情况,补充新鲜CAR T细胞培养基,使细胞密度维持在1 x 106 至2 x 106 个细胞/mL。
  6. 使用标准程序及冻存液(见 材料表)对CAR T细胞进行冻存。
  7. 采用标准方法解冻CAR T细胞,并在进行实验前,用含白细胞介素-2(IL-2,300单位/mL)的CAR T细胞培养基预培养约2–4小时。

3. 通过流式细胞术检测CAR表达

  1. 将 3 × 105 CAR T 细胞和未转导的 T 细胞分别转移至两个独立的 1.5 mL 微量离心管中。
  2. 在 300 × g 条件下离心 2 分钟,弃上清,用含 1% 人血清的荧光激活细胞分选(FACS)缓冲液将细胞重悬于 200 µL 体积中。
  3. 用移液器将 100 µL 细胞悬液分别加入两个 5 mL 聚苯乙烯 FACS 管中,冰上放置 5 分钟。
  4. 向每种细胞类型的其中一管中加入 1 µL 生物素标记的山羊抗小鼠 F(ab')2 抗体;向另一管中加入 2 µL 藻红蛋白(PE)标记的抗标签抗体(见 材料表)。充分混匀后,冰上孵育 30 分钟。
  5. 每管中加入 3 mL FACS 缓冲液洗涤细胞,在 300 × g 条件下离心 5 分钟;弃去上清液,短暂涡旋或轻轻振荡管底,利用残留液体重新悬浮细胞。
  6. 向每管中加入 2 µL 抗原呈递细胞(APC)标记的抗 CD3 抗体和 2 µL 7-氨基放线菌素 D(7-AAD)抗体溶液(见 材料表);对于已用抗 F(ab')2 抗体染色的细胞管,额外加入 1 µL PE 标记的链霉亲和素。短暂混匀后,冰上继续孵育 30 分钟。
  7. 按照步骤 3.5 所述方法,再次用 FACS 缓冲液洗涤细胞,并向每管中额外加入 200 µL FACS 缓冲液。
  8. 使用流式细胞术分析细胞:首先在前向散射光与侧向散射光图中圈选 T 细胞,然后在 CD3 与 7-AAD 图中圈选活细胞(7-AAD 阴性);最后分析抗标签抗体、抗 ScFv 抗体或抗 F(ab')2 抗体与 CD3 的共表达情况。

4. 实时细胞裂解效力检测(RTCA)

注意:请按照制造商推荐的条件进行 RTCA 检测。简言之,首先将靶细胞接种于 E-Plate 的孔中,次日加入 CAR T 细胞。通过实时监测 CAR T 细胞对靶细胞的裂解活性。以 T 细胞和模拟转导的 T 细胞(Mock CAR T 细胞)作为阴性效应细胞对照。以下方案描述了一种针对贴壁肿瘤细胞系的 体外 实时细胞裂解效力检测方法。

  1. 向 xCELLigence E-Plate 的每个孔中加入 100 µL 目标细胞培养基,将该板放入 xCELLigence 仪器中,获取背景读数。然后将 E-Plate 转移至组织培养罩内,用于接种细胞。
  2. 采用标准方案用胰蛋白酶消化从培养装置中收获目标癌细胞。随后将细胞转移至 15 mL 离心管中,并加入新鲜培养基至 15 mL。在 200 × g 条件下离心 5 分钟以收集细胞。弃去上清液,加入 5 mL 新鲜培养基,使用血清移液管轻轻重悬细胞沉淀。使用血细胞计数板和显微镜计数活细胞密度。
  3. 适当调整细胞密度,然后向 E-Plate 的每个孔中加入 100 µL 细胞悬液。对于贴壁细胞系(如 BxPC3、Hela-CD19 和 SKOV3),目标细胞数量通常约为 10,000 个/孔;对于悬浮细胞(如 Raji 细胞),则为 30,000 个/孔(有关使用抗体预包被孔以固定液体癌细胞的详细信息,请参见下文)。
  4. 将 E-Plate 在室温下平衡 30 分钟,使细胞均匀沉降到孔底(此步骤至关重要,请勿省略)。
  5. 将 E-Plate 放入细胞培养孵育箱内的 xCELLigence 仪器中,开始自动每 15 分钟测量一次阻抗,以细胞指数(Cell Index)随时间变化的形式显示。
  6. 次日,准备效应 CAR T 细胞。务必提前准备好适当的对照组(例如 Mock CAR T 细胞、非转导对照 T 细胞和/或无关 CAR T 细胞),以确保所有细胞同时准备就绪。将效应细胞和对照细胞调整至适当密度,并进行系列稀释,以确保在第 9 步向每孔加入 100 µL 效应细胞悬液时达到预期的效靶比(E:T 比)。
  7. 暂停 xCELLigence 数据采集,将 E-Plate 从孵育箱转移至细胞培养罩内。
  8. 从每个孔中移除 100 µL 培养基。此时每孔中残留的培养基体积为 100 µL。
  9. 向各孔中加入 100 µL 系列稀释的效应 CAR T 细胞或其他对照细胞(如 Mock CAR T 细胞),以达到预期的效靶比(E:T 比)。
  10. 将 E-Plate 在室温下平衡 30 分钟,使效应细胞沉降,然后将 E-Plate 放回 xCELLigence 仪器中,恢复数据采集。
  11. 如需要,可在关键时间点暂停 xCELLigence 数据采集,并将板取出,以便采集少量样品用于正交检测分析(例如通过酶联免疫吸附测定(ELISA)或流式细胞术检测细胞因子产生情况)。
  12. 在 EGFR-GITR-CD3 CAR T 细胞实验中,使用 ELISA 试剂盒检测干扰素-γ(IFNγ)产量(遵循制造商说明书;参见 材料表)。
    关于液体肿瘤应用的说明:在检测非贴壁性血液系统癌细胞时,需在接种细胞前先用特异性识别癌细胞表面抗原的抗体包被 E-Plate 的孔。对于 Raji B 细胞系,使用基于抗 CD40 的固定试剂(参见 材料表中的液体肿瘤杀伤检测试剂盒)。以下是包被操作步骤:
  13. 用固定缓冲液将固定试剂(抗 CD40)稀释至浓度为 4 µg/mL。
  14. 在组织培养罩内操作,向 E-Plate 的每个孔中加入 50 µL 稀释后的固定试剂。将 E-Plate 置于室温或 37 °C 培养箱中孵育 3 小时。
  15. 移除固定试剂,并用洗涤缓冲液至少清洗 E-Plate 2 次。此时 E-Plate 即可用于接种 Raji 目标细胞(30,000 个/孔)。
  16. 继续执行上述第 4.1 步,完成后续操作流程。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
7-AADBiolegend420404
抗CD40,液体肿瘤杀伤检测试剂盒ACEA Biosciences8100005
抗人F(ab')2Jackson Immunoresearch laboratories.109-116-088
APC抗CD3Biolegend317318
检测培养基RPMI1640life technologies.Corp11875-093
CAR-T细胞冻存液CryostorCS10Stemcell technologies#07930
ProMab提供的CAR-T细胞培养基AIM-V+300IFU/ml IL-212055-091
CD3/CD28包被微珠,DynabeadsThermofisher11131D
DMEMGElifesciences.comSH30243.02
FACS缓冲液Promab自制
FBSLonza.com14-503F
HEK293FTThermo FisherR70007
INFg ELISA试剂盒Thermo Fisher
慢病毒包装混合液System BiosciencesVP100
Lenti-X定量RT-PCR滴度测定试剂盒(Clontech)Takara631235
ProMab提供的靶细胞培养基随细胞系而异
实时细胞分析仪ACEA Biosciences
PCR仪Thermo Fisher
转导增强剂,Virus Transduction Enhancer(Alstem)Transplus, AlstemV020
转染稀释液,Opti-MEMThermo Fisher
转染试剂,NanoFect试剂AlstemNF100

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