所有涉及样本采集的操作均按照本机构的IRB指南进行。
1. 血液采集与血小板分离
- 在实验当天,通过静脉穿刺从知情同意的健康成年献血者体内采集血液,并使用3.8%枸橼酸钠抗凝。对于血小板计数接近250 × 103/μL的献血者,一支4.5 mL的采血管所采集的血液足以获得可用于20–25个实验条件的富血小板血浆(PRP)。
注意:避免使用细径针头(小于21 G)采血。
- 将血液在22 °C下以140 × g离心12分钟(使用长刹车),制备PRP。离心后将出现两层明显分离的液体,下层为红细胞,上层为浅色的富血小板血浆(PRP)。
- 使用剪成45°斜角的移液器吸头小心吸取上层浑浊的黄色PRP层,并通过全血细胞计数(CBC)测定血小板数量。
- 如有必要,在含有前列腺素E1(PGE1)的哌嗪-N,N'-二(2-乙磺酸)钠盐(PIPES)缓冲盐水(150 mM氯化钠,NaCl;20 mM PIPES)中洗涤血小板,然后将血小板重悬于含5 mM葡萄糖的Tyrode缓冲液(134 mM NaCl,0.34 mM磷酸氢二钠,Na2HPO4,2.9 mM氯化钾,KCl,1 mM氯化镁,MgCl2,5 mM葡萄糖,12 mM碳酸氢钠,NaHCO3,20 mM 4-(2-羟乙基)-1-哌嗪乙磺酸,HEPES,pH 7.35)中;否则直接进入步骤1.5。以下步骤简要描述洗涤过程:
- 用PIPES缓冲盐水将PRP体积调至10 mL,并加入0.6 μM PGE1。
- 在1,900 × g下离心8分钟,弃去上清液,将血小板沉淀物在400 μL Tyrode缓冲液与葡萄糖溶液中静置5分钟。
- 轻柔重悬血小板沉淀物,并静置30分钟,避免扰动。
- 使用混合人源血小板贫乏血浆(PPP)将血小板浓度调整至约250 × 103 个/μL,并将悬液在22 °C下静置或缓慢旋转保存,避免扰动。
2. 抗体与均匀剪切力处理
注意:第2节中所有需要移液的步骤均应缓慢操作,以避免引入任何剪切力。
- 将所需抗体加入PRP或洗涤血小板中,通过轻轻吹打或用移液枪头搅拌混匀。室温静置5-10分钟。向阴性对照中加入等体积的PPP或Tyrode's缓冲液。
- 开启锥板黏度计,将板温设置为22 °C,并留出足够时间使板达到该温度。
- 将处理后的PRP或洗涤血小板直接加至温控锥板黏度计的板中心位置。确保所有样品均沉积在锥与板接触点之间,而非锥边缘外侧。
- 以适当的速率和持续时间施加剪切力。
- 根据黏度计说明书或先前所述方法计算剪切力。
- 通过牛顿黏性定律从黏度和所需剪切应力确定剪切速率;
;血浆黏度为1.5-1.6厘泊(cP)。例如,人体循环中的正常剪切应力范围为5-30 dyn/cm2,剪切作用时间应在个位数分钟量级。
- 将锥略微抬起离开板面约2 mm,使样品仍与锥和板保持接触,使用加样枪头或其他长型移液枪头从样品中心吸取5-10 μL。
- 将经剪切处理的样品与所需标记物在室温下孵育20分钟。针对磷脂酰丝氨酸、β-半乳糖和P-选择素暴露的标记物,分别使用0.08 μM的乳酸脱氢酶C2结构域(LactC2)、6.25 μg/mL的刺槐凝集素(ECL)和20 µg/mL的抗P-选择素抗体。
- 在稀释或低温保存前,将样品于室温下用2%多聚甲醛固定20分钟,随后进行步骤3.1,或在4 °C保存不超过12小时。
3. 表面标志物的检测与交联 通过 流式细胞术
- 通过流式细胞术分析样品,每种条件下至少收集 20,000 个事件。
- 使用每种荧光染料的强度高度值或几何平均荧光强度(MFI)来定量荧光标记信号强度。
- 若旨在检测剪切处理后血小板的交联情况,则在具备成像功能的流式细胞仪上分析样品,并通过面积和长宽比参数定量交联程度。
- 绘制面积和/或长宽比的直方图。
- 使用牛血清白蛋白(BSA)或溶剂作为阴性对照,设定门控以排除大多数完全圆形的事件(该门控通常设置在长宽比约 0.8 处),并定量门控内事件所占百分比。长宽比较低的事件更可能为交联状态。