所有涉及动物模型的操作均已被当地机构动物护理委员会和 JoVE 兽医审查委员会审核。
1. 动物
- 将 C57BL6/J 雌性小鼠在带微隔离过滤器的独立通风笼具中饲养至 8 周龄。
注意:优先选用雌性小鼠,因其外泌尿生殖系统解剖结构使得导管插入操作较雄性更简便。
2. 细胞培养
- 在添加了10%热灭活胎牛血清和50 µg/ml庆大霉素的RPMI 1640培养基中,于37 °C、湿润的含5%二氧化碳(CO2)环境中培养小鼠膀胱移行细胞癌MB49细胞系。
- 将MB49细胞在T-75培养瓶中培养至80%汇合度。消化后,重悬于150 μl磷酸盐缓冲液(PBS)中,细胞密度为0.5 × 105 至0.5 × 106 个细胞,用于小鼠体内移植。
3. 膀胱内肿瘤移植
- 通过腹腔注射 zoletil 和 xylor 的混合麻醉剂(剂量分别为 33 mg/kg 和 20 mg/kg)对小鼠进行麻醉。
- 将动物置于仰卧位,并用透明胶带将其后肢固定在垫子上。足部需充分分开,以便尿道外口清晰可见且易于插入导管。
- 注意:导管插入时,24 G 儿科静脉导管适用于 8 至 10 周龄的小鼠。导管的选择至关重要,以避免液体在尿道壁与导管之间泄漏。对于体型较大或年龄较大的小鼠,必须使用内径更大的导管。
- 使用小型镊子夹住尿道外口的一侧边缘,并非常轻柔地向小鼠的“头部方向”扭转,以暴露尿道外口。
- 取出导管内的金属内芯,将导管以 45° 角插入尿道,方向略微朝向小鼠的“尾部方向”。切勿强行插入导管;若遇到阻力,只需非常轻柔地旋转导管,直至其滑入尿道。当导管插入深度约为 0.5–0.8 cm 时,小心地将导管调整至与小鼠尾部平行,并完全插入。
- 使用 1 ml 注射器,将针头插入导管,注入 200–300 μl 无菌 PBS 以冲洗膀胱内残留的尿液,并将所有液体从膀胱中吸出。
- 注意:注入 PBS 时,膀胱会充盈,并在小鼠后肢之间出现可见的肿胀;这表明导管插入位置正确。大多数导管存在死腔体积,在计算注射量时必须予以考虑。
- 使用无菌 1 ml 注射器,向膀胱内注入 200 μl 0.1 N 盐酸(HCl),使膀胱壁充分接触酸液。10 秒后,吸出全部酸液,并立即使用无菌注射器注入 200 μl 0.1 N 氢氧化钠(NaOH)进行中和。若注入细胞数量最多(0.5 × 106),则无需进行酸化步骤。
- 吸出所有残留液体,并立即用 300 µl 无菌 PBS 冲洗膀胱腔。
- 通过抽吸排空膀胱,然后注入含有 MB49 细胞(数量范围为 0.5 × 105 – 0.5 × 106)的 150 μl PBS。保持注射器与导管连接,以防止细胞泄漏。建议用透明胶带将注射器固定在垫子上,以确保稳定。
- 1 小时后,轻柔地将导管从小鼠尿道中拔出,并将小鼠置于笼中,在白炽 灯下保温直至苏醒:通常在处理结束后的 1 至 2 小时内苏醒。
4. 膀胱内递送 幽门螺杆菌 中性粒细胞激活蛋白(HP-NAP)
- 注意:在细胞接种后至少3天,即可开始治疗。
- 按照步骤 3.1 至 3.4 所述进行插管。在此阶段,无需使用 HCl 灼烧膀胱壁。
- 使用1 ml注射器,注入200–300 μl无菌PBS冲洗膀胱以去除残留尿液,并将膀胱内的所有液体吸出。
- 向膀胱内注射每150 μl PBS含50 μg的HP-NAP。保持注射器与导管连接,以避免蛋白溶液泄漏。使用透明胶带将注射器固定在垫子上以确保稳固。
- 1小时后,轻柔地从尿道中取出导管,将小鼠放回笼中,并置于白炽灯下 灯,直到他们醒来。